l`evaporation foliaire

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Formation continue du 21 avril 2005
L’EVAPORATION FOLIAIRE
But : Description et compréhension d’une démarche expérimentale, analyse et interprétation de
résultats
1. Mise en évidence de l’évaporation foliaire
1.1 Matériel :
• Interface Orphy portable (Micrelec)
• Logiciel Visuel Orphy
• Enceinte de mesure (Tube à 2 compartiments laissant passer l’air dans un sens)
• 2 capteurs hygrométriques
• Pompe à air
• Plantes vertes (p.ex. : Laurier cerise (Prunus laurocerasus) ; Pervenche (Vinca minor) )
1.2 Montage :
1.3 Résultats :
1.4 Conclusion :
Tuyau à air
Hygromètre 1
Compartiment supérieur
Paroi intermédiaire avec valve
Compartiment inférieur (avec plantes)
Hygromètre 2
Pompe à air
Interface Orphy
L’enregistrement (2 compartiments
vides) peut être interrompu (Pause),
puis de nouveau être déclenché
après l’introduction des plantes dans
le compartiment inférieur
Air

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2. Facteurs influençant l’évaporation foliaire
(Vinca minor)
2.1 Matériel:
• Orphy portable
• Capsule pression 20 hPa
• Support inox + tuyaux + T + seringue 10 ml
• Branches « Vinca minor » avec env. 8 feuilles
• Vaseline
• Scalpel + ciseaux
2.2 Montage et protocole:
Couper obliquement la tige avec un scalpel
Petit tube ( 8-10 cm) pour introduire la tige
Remplir le tube avec env. 5 cm H2O
Boucher le tube hermétiquement avec la vaseline
Ajuster la pression (cf. graphique ci-dessous à 17,5 hPa)
Mesurer (env. 100 sec.)
Arrêter la mesure / couper la tige avec des ciseaux en laissant 2 feuilles
Fermer la coupe avec un peu de vaseline
Réajuster la pression à celle de départ (1re mesure)
Mesurer
Comparer les courbes
(p.ex. en mesurant la pente = différence de pression par seconde)
2.3 Résultat :

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Variante en enlevant les feuilles
Autres variantes possibles :
• Faire passer de l’air avec un sèche-cheveux au-dessus des feuilles (= simulation du vent)
• Enfermer les plantes dans un sachet plastique
• Plante à l’obscurité/lumière
• …
2.4 Conclusion :

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3. Localisation de l’évaporation
3.1 Matériel:
• Orphy portable
• 2 Capsules hygromètres
• 2 seringues coupées (10 ml) avec bouchons perforés
• 2 clips
• Branche de laurier cerise (Prunus laurocerasus L)
3.2 Montage :
3.3 Résultats :
3.4 Conclusion :
Programme Æ Mesure directe
Ajuster éventuellement les valeurs des capteurs au
même niveau (=variables) p. ex. H2=H2-4, avant de
commencer les mesures

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4. Analyse microscopique
des structures permettant /régulant l’évaporation
4.1 Matériel:
• Microscope
• Lames/Lamelles
• H2O
• Lame de rasoir
• Moelle de sureau
• Feuille de Laurier cerise (Prunus laurocerasus L)
4.2 Méthode:
• Prélever un morceau d’épiderme supérieur et un morceau d’épiderme inférieur de la feuille de
laurier à l’aide de la lame de rasoir Æ Montage entre lame et lamelle Æ Observation sous le
microscope
Comparaison des deux épidermes
Schémas (photographies):
Epiderme supérieur (400x) Epiderme inférieur (630x)
• Faire une coupe transversale de la feuille de laurier à l’aide de la lame de rasoir Æ Montage
entre lame et lamelle Æ Observation sous le microscope
Schéma (photographie):
Coupe transversale de la feuille de Laurier cerise (400x)
4.3 Conclusion :
Cellule épidermique
Stomate
Cellule épidermique
Epiderme supérieur
Mésophylle pallissadique
Mésophylle lacuneux
Epiderme inférieur
Cuticule
Stomate