l`evaporation foliaire
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www.bioweb.lu Formation continue du 21 avril 2005 L’EVAPORATION FOLIAIRE But : Description et compréhension d’une démarche expérimentale, analyse et interprétation de résultats 1. Mise en évidence de l’évaporation foliaire 1.1 Matériel : • Interface Orphy portable (Micrelec) • Logiciel Visuel Orphy • Enceinte de mesure (Tube à 2 compartiments laissant passer l’air dans un sens) • 2 capteurs hygrométriques • Pompe à air • Plantes vertes (p.ex. : Laurier cerise (Prunus laurocerasus) ; Pervenche (Vinca minor) ) 1.2 Montage : Air Tuyau à air Hygromètre 1 Compartiment supérieur Paroi intermédiaire avec valve Compartiment inférieur (avec plantes) Hygromètre 2 Pompe à air Interface Orphy 1.3 Résultats : 1.4 Conclusion : L’enregistrement (2 compartiments vides) peut être interrompu (Pause), puis de nouveau être déclenché après l’introduction des plantes dans le compartiment inférieur 2. Facteurs influençant l’évaporation foliaire (Vinca minor) 2.1 Matériel: • Orphy portable • Capsule pression 20 hPa • Support inox + tuyaux + T + seringue 10 ml • Branches « Vinca minor » avec env. 8 feuilles • Vaseline • Scalpel + ciseaux 2.2 Montage et protocole: Couper obliquement la tige avec un scalpel Petit tube ( 8-10 cm) pour introduire la tige Remplir le tube avec env. 5 cm H2O Boucher le tube hermétiquement avec la vaseline Ajuster la pression (cf. graphique ci-dessous à 17,5 hPa) Mesurer (env. 100 sec.) Arrêter la mesure / couper la tige avec des ciseaux en laissant 2 feuilles Fermer la coupe avec un peu de vaseline Réajuster la pression à celle de départ (1re mesure) Mesurer Comparer les courbes (p.ex. en mesurant la pente = différence de pression par seconde) 2.3 Résultat : 2 21.4.05 (www.bioweb.lu) Variante en enlevant les feuilles Autres variantes possibles : • • • • Faire passer de l’air avec un sèche-cheveux au-dessus des feuilles (= simulation du vent) Enfermer les plantes dans un sachet plastique Plante à l’obscurité/lumière … 2.4 Conclusion : 3 21.4.05 (www.bioweb.lu) 3. Localisation de l’évaporation 3.1 Matériel: • Orphy portable • 2 Capsules hygromètres • 2 seringues coupées (10 ml) avec bouchons perforés • 2 clips • Branche de laurier cerise (Prunus laurocerasus L) 3.2 Montage : Programme Æ Mesure directe Ajuster éventuellement les valeurs des capteurs au même niveau (=variables) p. ex. H2=H2-4, avant de commencer les mesures 3.3 Résultats : 3.4 Conclusion : 4 21.4.05 (www.bioweb.lu) 4. Analyse microscopique des structures permettant /régulant l’évaporation 4.1 Matériel: • Microscope • Lames/Lamelles • H2O • Lame de rasoir • Moelle de sureau • Feuille de Laurier cerise (Prunus laurocerasus L) 4.2 Méthode: • Prélever un morceau d’épiderme supérieur et un morceau d’épiderme inférieur de la feuille de laurier à l’aide de la lame de rasoir Æ Montage entre lame et lamelle Æ Observation sous le microscope Comparaison des deux épidermes Schémas (photographies): Stomate Cellule épidermique Cellule épidermique Epiderme supérieur (400x) • Epiderme inférieur (630x) Faire une coupe transversale de la feuille de laurier à l’aide de la lame de rasoir Æ Montage entre lame et lamelle Æ Observation sous le microscope Schéma (photographie): Cuticule Epiderme supérieur Mésophylle pallissadique Mésophylle lacuneux Stomate Epiderme inférieur Coupe transversale de la feuille de Laurier cerise (400x) 4.3 Conclusion : 5 21.4.05 (www.bioweb.lu)
