O6.3 Oroian T - Publicatii USAMV Cluj

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Bulletin UASVM Animal Science and Biotechnologies, 65(1-2)/2008
pISSN 1843-5262; eISSN 1843-536x
PERFORMANCES DE REPRODUCTION CHEZ 15 COUPLES
PARENTAUX DE CYPRINUS CARPIO TRAITÉS
AVEC DE L’EXTRAIT HYPOPHYSAIRE ET OVOPEL
Oroian T.*, R.G. Oroian*, Simona Paşcalău*, L. Sasca*, Elvira Oroian*,
Vioara Mireşan*, I. Paşca*, D. Dronca**
*University of Agricultural Sciences and Veterinary Medicine, Faculty of Animal Science and
Biotechnology, 3–5 Manastur Street, 400372 Cluj-Napoca, Romania, [e-mail]
** Banat University of Agricultural Sciences and Veterinary Medicine, 119 Aradului Alley,
300645, Timişoara, Romania
Key words: Cyprinus carpio, Ovopel, hypophys
Abstract. The study presents some comparative results regarding the reproduction performances of 15
Cyprinus carpio families, originating from Lausitz and Galitian variety. The hormonal treatment was applied
after a schedule, which indicates the administration of 4 mg product/kg body weight. The results shown the fact
that Ovopel treatment has shorten the females eggs maturation time with 6 hours in comparison with the classic
treatment, with hypophysis extract. The maturation time average of the 8 females eggs treated with hypophysis
extract was of 12 hours and of those treated with Ovopel was of 6 hours (after the second inoculation, made 12
hours from the first one).
INTRODUCTION
Cet ouvrage représente une séquence des recherches déroulées dans le cadre du projet
CEEX 45/2005, qui s’est propose l’étude de la variabilité phénotypique et génétique d’une
population de Cyprinus Carpio du nord–ouest de la Transylvanie afin de créer des lignes par
l’utilisation des marqueurs génétiques pour la conservation durable du génofond.
MATÉRIEL ET MÉTHODES
Le matériel biologique a été représenté par 5 familles de la variété Galitienne et 2
familles avec des mâles de la variété Galitienne et des femelles de la variété Lausitz, traitées
avec Ovopel et 5 familles de la variété Lausitz, 3 familles mâles de la variété Lausitz et des
femelles de la variété Galitienne. Les poids corporels des mâles et des femelles utilisés dans la
reproduction sont mis en évidence dans les tableaux numéro 1 et 2.
Pour le traitement de maturation on a utilisé deux préparations. Une partie out été acquis
de la firme de profil de Hongrie, c’est-à-dire 50 morceaux d’hypophyse et 200 morceaux
d’Ovopel (une hormone synthétique identique à l’hormone hypophysaire pour la carpe), et
une autre partie de l’hypophyse utilisée est issue de la récolte directe sur 40 individus (ayant
le poids total de 125 kg).
Le traitement appliqué a été différencié avec les deux types d’hormones, en fonction
du poids corporel des individus et l’état de maturation des gonades, pour constater leur
efficacité et pour pouvoir faire des recommandations en ce qui concerne l’utilisation de l’un
ou de l’autre à la reproduction de la carpe en Roumanie.

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Fig. 1 Doses d’hormones hypophysaires et Ovopel
Fig. 2 Injection de la femelle
Fig. 3 Injection du mâle
RÉSULTATS ET DISCUSSIONS
Dans le tableau numéro un, on présente les résultats du traitement hormonal avec de
l’hypophyse broyée, traitement effectué sur 8 couples parentaux. On a effectué le traitement le

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20, 21 2t 23 mai 2008, dans les doses mentionnées dans le tableau, calculées en fonction du
poids corporel de chaque individu et administrés en deux doses chez les femelles, à 12 heures
intervalle, et une seule dose chez les mâles.
Le traitement avec de l’hypophyse a produit la maturation chez les 4 femelles soumises
au traitement à des intervalles compris entre 9,4–15 heures, avec des fluctuations
individuelles significatives.
La quantité d’oeufs de poissons récoltée varie entre 680 g et 1250 g, en ne pouvant pas
faire de corrélation entre la quantité d’oeufs expulsée et le poids de la femelle. Les oeufs ont
été partagés dans des quantités de 500 g, c’est-à-dire 250 g, pour l’éclosion sur des cadres de
type „Nucet” modifiés et Zug-Weiss. La quantité de laitance traite par mâle a oscillé entre 9
ml et 24 ml. Dans le tableau numéro deux, on présente les résultats du traitement hormonal
avec „Ovopel”, traitement effectué sur 5 couples parentaux de la variété Galitienne et 2
couples des variétés Galitienne et Lausitz. On a effectué le traitement aux mêmes dates, c’est-
à-dire, le 21 et 22 mai 2008 dans les doses mentionnées dans le tableau 52, calcules de la
même façon que dans le premier cas, en fonction du poids corporel de chaque individu et
administrées en deux doses chez les femelles et une seule dose pour les mâles. Le poids des
femelles soumises au traitement avec „Ovopel” a été compris entre 3900–6400 g et chez les
mâles entre 3400–7300 g. Le premier traitement avec „Ovopel” de 4 mg a été fait le matin,
entre 6h et 7h, et le rappel a été fait 12h après, avec une dose qui corresponde pour un
traitement total à 4 mg/kg corp. L’inoculation des mâles a été faite au moment du rappel des
femelles, avec une dose égale à la moitié de la quantité administrée chez les femelles/kg poids
vif. La récolté des oeufs a été faite à un intervalle compris entre 3 et 9,5 heures depuis le
dernier traitement. Dans ce cas également, la quantité des oeufs récoltée varie d’une femelle à
l’autre, et oscille entre 640 g (chez une femelle de 4100 g) et 1280 g (chez une femelle de
6400 g). On a fait l’éclosion, tout comme dans le cas précédent, à chaque couple parental, tant
sur des cadres de type „Nucet” modifiés, que sur des Zug-Weiss. Après la récolte, des oeufs
ont été distribués et soumis au processus de fécondation avec la laitance du mâle partenaire.
On a fait la fécondation sèche, en mélangeant les oeufs récoltés et la laitance sans ajouter de
l’eau ni d’autre liquide. Le mélange a été fait dans des pots en plastique à l’aide d’une plume
d’oie. Après avoir uniformisé le mélange laitance-oeufs (une minute environ), on a ajouté de
la solution de fécondation, 5/10 ml à 250 g oeufs. La solution de fécondation a été obtenue par
la dissolution en 1000 ml eau distillée de 6,2 g NaCl; 0,2 g CaCl
2
; 0,1 g NaHCO
3
et 0,1 g
KCl. Le mélange des gamètes avec le liquide fécondant a continué durant 1–2 minutes et
après on a procédé à étendre les oeufs fécondés sur le filet des cadres avec la dimension de
60/50 cm.
Tableau 1
Couples traitès avec de l’hormone hypophysaire
♂ ♀ Traitement ♀ Traitemen
t ♂ Récolte d’oeufs (g)
La famille Poids
(g) Poids (g) Dose I (mg) Dose II (mg) Dose I (mg) Total Portier I (cadres) Portrir II (zw)
Quantité
de
laitance
(ml)
Temps de
maturation
(h)
1 (L x L) 4300 5800 8 16 8 1050 500 250 18 9,4
2 (L x L) 4100 6600 8 20 8 1250 500 250 13 12,2
3 (L x L) 3900 6800 8 20 8 1010 500 250 10 10,5
4 (L x L) 5200 5200 8 12 12 960 500 250 20 11,0
5 (L x L) 4600 5000 8 12 10 920 500 250 24 14,5
1 (♂L x ♀G) 3900 3900 4 12 4 870 500 250 11 10,5
2 (♂L x ♀G) 3400 3500 4 9 4 750 500 250 12 12,5
3 (♂L x ♀G) 3100 3800 4 12 4 680 500 180 9 15,00

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Tableau 2
Couples traitès avec Ovopel
♂ ♀ Traitement ♀ Traitemen
t ♂ Récolte d’oeufs (g)
La famille Poids
(g) Poids (g) Dose I (mg) Dose II (mg) Dose I (mg) Total Portier I (cadres) Portrir II (zw)
Quantité
de
laitance
(ml)
Temps de
maturation
(h)
1 (G x G) 6800 6400 8 18 10 1280 500 250 33 6,5
2 (G x G) 7300 5800 8 16 12 1130 500 250 34 4,5
3 (G x G) 5500 5400 8 14 10 950 500 250 20 5,5
4 (G x G) 4000 4900 6 12 8 875 500 250 18 7,0
5 (G x G) 4600 4700 8 14 8 820 500 250 21 9,5
1 (♂G x♀L) 3800 3900 4 8 4 755 500 250 10 3,5
2 (♂G x♀L) 3400 4100 4 8 4 640 500 140 14 5,5
CONCLUSIONS
Le traitement avec Ovopel, qui est une hormone hypophysaire synthétique, donne une
efficience élevée, en raccourcissant le temps de maturation d’environ 6 heures, par rapport au
traitement classique hypophysaire.
Le raccourcissement du temps de maturation permet de surveiller plus attentivement
les reproducteurs injectés et évite les pertes dés oeufs par l’auto traite.
Le traitement avec Ovopel permet la récolte d’une quantité plus grande d’oeufs par kg
corps poids vif, par rapport au traitement classique.
Grâce à la maturation plus uniforme des oeufs chez les individus traits avec Ovopel, le
pourcentage de fécondité, comme celui d’éclosion est de 2 à 5% plus grand que le traitement
classique.
BIBLIOGRAFIE
1. Beaumont, A.R., K. Hoare, 2003, Biotechnology and Genetics in Fisheries and Aquaculture, Blackwell
Publishing, UK
2. Bud, I., Şt. Diaconescu, M. Mudure, 2004, Creşterea crapului şi a altor specii de peşti, Ed. Ceres, Bucureşti
3. Bura, M., A. Grozea, I. Cornea, I. Gergeni, 1995, Creşterea crapului în iazuri şi heleştee, Ed. Mirton,
Timişoara
4. Cărăuşu, S., 1952, Tratat de ichtiologie, Bucureşti;
5. Chourrout, D., 1990, Gene transfer in fish, Review paper in press in the proceedings of the 4
th
world
congress on genetics applied to livestock production, Edinburgh, Hill WG, Thompson R, Wooliams VA
eds., ISBN, XVI, 167 -171
6. Cighi, V., 2008, Elemente de tehnică experimentală, Ed. Risoprint Cluj-Napoca, ISBN 978-973-751-721-0;
7. Cornea, Călina PetruŃa, 2002, Inginerie genetică, Ed. Printech, Bucureşti, ISBN 973-652-694-1
8. Coşier, Viorica, A. Vlaic, 2004, The model system for transgenic research in fish, Lucr. Şt. „Zootehnie şi
Biotehnologii” USAMVB Timişoara, vol. XXXVII, p. 483 – 488
9. Cristea, Veronica, 1995, Genetica şi ameliorarea peştilor, vol. I, Ed. Edit-Press, GalaŃi
10. David, Lior, Rothbard Shamuel, Rubinstein Israel, Katzman Hila, Hulata Gideon, Hillel Jossi, Lavi Uri,
2004, Aspects of red and black color inheritance in the Japanese ornamental (Koi) carp (Cyprinus carpio L.),
Aquaculture, vol. 233, 129 – 147
11. Devlin, R.H., Y. Nagahama, 2002, Aquaculture, 191 – 364
12. Gomelssky, Boris, 2003, Chromosome set manipulation and sex control in common carp, Aquatic Living
Resources, 408 – 415
13. Griffiths, A.J.F., J.H. Muler, D.T. Suzuki, R.C. Lewontin, W.M. Gelbart, 1993, An Introduction to Genetic
Analysis, Fifth Edition, W.H. Freeman and Company, New York
14. Grozea, A., M. Bura, 2002, Crapul, Editura de Vest, ISBN 973-36-0359-7
15. Hall, C. Jeffrey, J.C. Dunlap, T. Friedmann, Veronica van Heyningen, 2006, Advances in Genetics,
Academic Press, USA

113
16. Hallerman, E.M., A.R. Kapuscinski, P.B. Hachett Jr., A.J. Faras, K.S. Guise, 1989, Gene transfer in fish, II
Aquaculture Biotechnology/Technology, Breeders Roundtable Proc., St. Louis, 35-51
17. Hill, W.G., Thompson R., Wooliams V.A., 1990, Gene Transfer in Fish, Proceedings of the 4
th
world
congress on genetics applid to liverstock production, Edinburgh, 167-171
18. Man, C., 1989, Apa – sănătatea şi producŃiile animalelor, Ed. Ceres, Bucureşti;
19. Miclea, V., M. Zăhan, 2006, ReproducŃia peştilor, Ed. Accent, Cluj-Napoca;
20. Mireşan Vioara, 2004, Fiziologia animalelor domestice, Ed. Risoprint Cluj-Napoca;
21. Oroian E. Teofil, 2006, SelecŃia asistată de markeri la crap, Ed. Risoprint, Cluj-Napoca, ISBN 973-751-
373-8
22. Oroian, T., A. Vlaic, Simona Paşcalău, R.G. Oroian, D. Dronca, V. Cighi, Viorica Coşier, 2006, Description
of an enlarged selection nucleus in a carp (Cyprinus carpio) population in North-Western Transylvania,
Buletin USAMV Cluj-Napoca, vol. 62, p. 164-169, ISSN 1454-2390
23. Oroian E. Teofil, 2007, Principii în ameliorarea peştilor, Ed. Risoprint, Cluj-Napoca, ISBN 978-973-751-
424-0
24. Vlaic, A., 2007, Genetica peştilor, Ed. Risoprint Cluj-Napoca, ISBN 978-973-751-46