TITRE :
DEVELOPPEMENT ET PREMIERES APPLICATIONS D’UNE METHODE DE TRI DE CELLULES BACTERIENNES
PAR MARQUAGE DE L’ADN AVEC DES NANOPARTICULES MAGNETIQUES POUR L’ETUDE DE LA DIVERSITE
BACTERIENNE ENVIRONNEMENTALE ET DES TRANSFERTS HORIZONTAUX DE GENES IN SITU.
II
Résumé : En dépit de leur importance, la caractérisation des communautés bactériennes dans l’environnement reste encore très
incomplète. Les principales raisons sont, d’une part, la difficulté d’appréhender la totalité de la communauté bactérienne quand
plus de 99% des bactéries demeurent récalcitrantes à la culture in vitro et ne peuvent donc être étudiées par les approches
classiques de microbiologie. D’autre part, la métagénomique, censée contourner cette méthode de culture en s’intéressant à
l’ensemble des génomes extraits des milieux d’études, demeure elle aussi imparfaite du fait de limitations techniques (biais
d’extraction de l'ADN, de clonage, de PCR, de séquençage et d’assemblage des génomes etc.) et conceptuelles, inhérentes à la
complexité et l’hétérogénéité des environnements. Pour compenser les limites de chacune de ces techniques, des méthodes de
tri cellulaire appliquées en conjonction avec les deux premières pourraient aider à un meilleur décryptage de la diversité
microbienne. Basée sur la sélection spécifique (taxonomique et/ou fonctionnelle) et l’isolement direct des cellules bactériennes
ciblées à partir d’un échantillon environnemental complexe, l’étude est restreinte à une population spécifique, voire à une
cellule isolée. Pourront alors être appliquées les approches classiques de mise en culture ou d’extraction de l’ADN pour une
étude restreinte à l’ADN ou l’ARN, leur répétition sur les différentes populations devant à terme (lointain) approcher
l’exhaustivité. C’est dans ce contexte que s’est positionné ce travail de thèse visant dans un premier temps à mettre au point un
nouvel outil de tri cellulaire basé sur l’intégration de micro-aimants permanents dans un canal microfluidique. A partir de ce
système de tri magnétique miniaturisé, offrant de nombreux avantages (dispositif portable, peu coûteux, nécessitant de faibles
volumes réactionnels et potentiellement intégrable en « laboratoire sur puce »), une technique d’isolement sélectif de cellules
bactériennes marquées magnétiquement a alors été développée. Ciblées sur des critères taxonomiques après hybridation in situ
avec des sondes d’acides nucléiques biotinylés complémentaires d’une région spécifique du gène 23S rRNA, des cellules
bactériennes ont été marquées magnétiquement après réaction de la sonde avec des nanoparticules magnétiques
fonctionnalisées par des molécules de streptavidine. Les premiers résultats montrent l’établissement d’une méthode de tri
suffisamment spécifique et sensible pour piéger les cellules marquées diluées (0,04%) au sein d’une suspension, à des niveaux
compatibles avec l’isolement futur de populations d’intérêt à partir de communautés d’environnements complexes. Sur un
principe comparable, l’approche a été adaptée à l’étude des transferts horizontaux de gènes in situ. Les applications d’un tri
cellulaire grâce au marquage par des nanoparticules magnétiques et l’emploi de micro-aimants intégrés dans des
microsystèmes fluidiques semblent donc très prometteuses pour le développement de la microbiologie environnementale.
Mots clés : tri cellulaire magnétique ; microsystème ; hybridation magnétique in situ ; nanoparticules magnétiques ; transfert
horizontal de gènes, génomique sur cellules isolées.
TITLE: DEVELOPMENT AND FIRST APPLICATIONS OF A BACTERIAL CELL SORTING METHOD BY LABELING DNA
WITH MAGNETIC NANOPARTICLES TO STUDY BACTERIAL DIVERSITY AND IN SITU HORIZONTAL GENE
TRANSFER.
Summary : Despite their importance, bacterial communities in the environment remain poorly characterized. On the one hand,
it is difficult to gain knowledge of the community as a whole because over 99% of bacteria are recalcitrant to in vitro culture,
rendering classic microbiological approaches imposible to carry out. On the other hand, metagenomics, which can be used to
circumvent culture-based approaches by extracting all the genomes from a given environment, is also problematic given the
associated technical limitations (biases related to DNA extraction, cloning, PCR, genome sequencing and assembling etc.), and
conceptual difficulties related to the complexity and the homogeneity of the environments. In order to overcome some of the
limitations of these approaches, bacterial cell selection methods have been developed and can be used to improve our
understanding of microbial diversity. Based on taxonomic and/or functional selection and the direct isolation of bacterial cells
from an environmental sample, bacterial cell selection can be used to reduce microbial community complexity by targeting
specific populations, or even an isolated cell. A variety of classic approaches such as cultivation or DNA/RNA extraction can
then be carried out. This cycle can theoretically be repeated until all members of the community are characterized. The aim of
this doctoral thesis was to design a novel cell selection tool based on the permanent integration of micro-magnets into a micro-
fluidic canal. In conjunction with a new miniaturized magnetic selection system that provides several advantages over larger
systems (portable, low cost, requiring smaller reaction volumes and can be potentially integrated on “laboratory on a chip”
systems), a method for selective bacterial cell isolation using magnetic labeling was developed. The bacterial cells were targeted
based on taxonomic criteria; biotin-labeled probes were developed for a specific region of the 23S rRNA gene. Following in situ
hybridization with the probes, baceterial cells were labeled with streptavidin-functionalized magnetic nanoparticles. First
results showed that the tool was specific and sensitive enough to trap labeled and diluted (0,04%) cells from a suspension at
levels that are comparible to populations of interest found in complex environmental communities. This tool has also been
adapted to study in situ horizontal gene transfer as well. The application of a cellular selection tool that labels targets with
magnetic nanoparticles coupled to fluidic microsystems with integrated nano-magnets looks very promising for future studies
in environmental microbiology.
Key words: magnetic cell sorting ; microsystems ; magnetic in situ hibridization ; magnetic nanoparticles ; horizontal gene
transfer, single cell genomics.