Signature du cachet de la bibliothèque Président de thèse

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UNIVERSITE PARIS VAL DE MARNE
FACULTE DE MEDECINE DE CRETEIL
ANNEE : 2007
N°
THESE
POUR LE DIPLOME D’ETAT
DE
DOCTEUR EN MEDECINE
Discipline : pathologies cardio-vasculaires
-----------------Présentée et soutenue publiquement le 24 septembre 2007
A la faculté de médecine de l’hôpital Saint-Antoine
-----------------Par AIT-OUFELLA Hafid
Né le 12 mai 1976 à AIN EL HAMMAM (Algérie)
------------------
TITRE : Immunomodulation lymphocytaire T de l’athérosclérose expérimentale par la
nucléoprotéine du virus de la rougeole
PRESIDENT DE THESE :
LE CONSERVATEUR DE LA
Pr Georges OFFENSTADT
BIBLIOTHEQUE UNIVERSITAIRE
DIRECTEUR DE THESE :
Dr Ziad MALLAT
Signature du
cachet de la bibliothèque
Président de thèse
universitaire
-
A Laetitia,
-
A Jeanne la brune,
-
A mes parents, à mes frères et leur « Kabyle Touch »,
-
A Aberkane, à Akli .
2
Je souhaite remercier tout particulièrement,
-
Le Professeur Georges Offenstadt pour m’avoir enseigné le goût de la médecine
clinique au quotidien, pour m’avoir fait découvrir la réanimation médicale et m’avoir
conseillé tout au long de ma formation médicale.
-
Le Dr Ziad Mallat pour m’avoir accompagné à chaque instant au cours de ma
formation scientifique, pour sa patience, ses conseils, ses idées entraînantes et sa
passion communicative.
-
Le Professeur Bernard Levy pour m’avoir conseillé pendant ces années au
laboratoire.
-
Le Professeur Christian Spaulding d’avoir accepté de participer à mon jury de thèse.
-
Le Dr Alain Tedgui pour m’avoir accueilli dans son laboratoire et au sein de son
équipe, pour m’avoir transmis sa passion pour les sciences.
-
Stéphane Potteaux pour son amitié et son aide.
-
Tous les membres de l’unité Inserm U689 (Cath, Ludo, Téni, José, Aurélie, Olivier,
Steph 1, Steph 2, Jack, Yves…) pour leur soutien, leur dynamisme et leur bonne
humeur constante qui ont rendu toutes ces années de labeur si agréables,
-
Régine Merval et Bruno Esposito pour leur aide précieuse,
-
Dr Branka Horvat et Yann Kerdilès pour leur collaboration à ce travail.
3
TABLE DES MATIERES
TABLE DES ILLUSTRATIONS ............................................................................................................................... 6
LISTE DES ABREVIATIONS ................................................................................................................................... 7
II - PHYSIOPATHOLOGIE DE L’ATHEROSCLEROSE .................................................................................. 8
1 - PENETRATION DES LIPOPROTEINES DANS L’INTIMA .......................................................................................... 10
2 - ACTIVATION ENDOTHELIALE ET RECRUTEMENT DES MONOCYTES/MACROPHAGES ........................................ 10
3 - ROLE PATHOGENE DES MONOCYTES/MACROPHAGES ........................................................................................ 11
4 - ROLE DES LYMPHOCYTES T CD4+ DANS L’ATHEROSCLEROSE ......................................................................... 12
4.1 - Rôle pathogène des lymphocytes T CD4+................................................................................................ 12
4.2 - La voie Th1 est pro-athérogène ................................................................................................................ 13
4.3 - La voie Th2 est potentiellement pro-athérogène...................................................................................... 14
4.4 - Un sous-type de lymphocytes T protecteurs contre l’athérosclérose ..................................................... 14
4.4.1 - IL-10 et le TGF! sont anti-athérogènes ..............................................................................................................15
4.4.2 - Les lymphocytes T régulateurs (Tregs)................................................................................................................15
4.4.3 - Les Tregs protecteurs contre l’athérosclérose .....................................................................................................16
III - LA NUCLEOPROTEINE DU VIRUS DE LA ROUGEOLE ..................................................................... 17
1 - MODULATION IMMUNO-INFLAMMATOIRE PAR LE VIRUS DE LA ROUGEOLE ..................................................... 17
2 - MODULATION IMMUNO-INFLAMMATOIRE PAR LA NUCLEOPROTEINE DU VIRUS DE LA ROUGEOLE ................ 17
IV – OBJECTIFS DE L’ETUDE ............................................................................................................................. 19
V - MATERIEL ET METHODES........................................................................................................................... 20
1 - SOURIS ................................................................................................................................................................. 20
2 - TRAITEMENT ....................................................................................................................................................... 20
3 - ANALYSE DE L’ATHEROSCLEROSE ..................................................................................................................... 21
3.1 - Dosage des lipides plasmatiques .............................................................................................................. 21
3.2 - Dosage des anticorps circulants. .............................................................................................................. 21
3.3 - Analyses morphométriques........................................................................................................................ 22
3.4 - Analyses immunohistochimiques............................................................................................................... 22
3.5 - Analyses immunologiques ......................................................................................................................... 23
3.5.1 - Les cellules dendritiques .......................................................................................................................................23
3.5.2 - Les lymphocytes T CD4+ .....................................................................................................................................24
3.5.2.1 - Isolation des lymphocytes CD4+ ................................................................................................................24
3.5.2.2 - Isolation des lymphocytes T régulateurs CD4+CD25+..............................................................................25
3.5.2.3 - Co-culture des cellules isolées .....................................................................................................................25
3.5.2.4 - Mesure de la prolifération cellulaire............................................................................................................25
3.5.2.5 - Analyse en Cytométrie de flux.....................................................................................................................26
4 - ANALYSES STATISTIQUES ................................................................................................................................... 27
VI – RESULTATS :.................................................................................................................................................... 28
ETUDE DU DEVELOPPEMENT DES LESIONS CHEZ LES SOURIS « JEUNES » ................................. 28
1 - EFFETS DU TRAITEMENT PAR NP SUR LA TAILLE DES PLAQUES D’ATHEROSCLEROSE..................................... 28
2 - EFFETS DU TRAITEMENT PAR NP SUR LA COMPOSITION DES PLAQUES D’ATHEROSCLEROSE ......................... 28
VII - RESULTATS :................................................................................................................................................... 30
ETUDE DE LA PROGRESSION DES LESIONS CHEZ LES SOURIS « VIEILLES »............................... 30
1 - EFFETS DU TRAITEMENT PAR NP SUR LA TAILLE DES PLAQUES D’ATHEROSCLEROSE..................................... 30
2 - EFFETS DU TRAITEMENT PAR NP SUR LA COMPOSITION DES PLAQUES D’ATHEROSCLEROSE (CF. TABLEAU 1)
................................................................................................................................................................................... 31
VIII - RESULTATS : ANALYSES IMMUNOLOGIQUES................................................................................ 34
1 - EFFET DU TRAITEMENT PAR NP SUR LE PROFIL IMMUNOLOGIQUE DES LYMPHOCYTES CD4+ ........................ 34
2 - EFFET DU TRAITEMENT PAR NP SUR LE PROFIL IMMUNOLOGIQUE DES CELLULES DENDRITIQUES ................. 34
3 - EFFET DU TRAITEMENT PAR NP CHEZ LA SOURIS APOE/RAG2-/- ..................................................................... 35
4
4 – TAUX D’ANTICORPS ANTI-LDL OXYDES DE TYPE IGM CHEZ LES SOURIS JEUNES .......................................... 35
IX - DISCUSSION ...................................................................................................................................................... 38
X - CONCLUSION ..................................................................................................................................................... 43
XI - REFERENCES ................................................................................................................................................... 44
5
TABLE DES ILLUSTRATIONS
Illustrations présentes dans l’introduction
Illustration 1 : principales étapes de formation de la plaque d’athérosclérose .................................9
Illustration 2 : détection par immunohistochimie des macrophages au sein de la plaque ..............11
Illustration 3 : composition des plaques d’athérosclérose stable ou rompue .................................12
Résultats sous forme de figures
Figure 1a : taille des plaques chez les souris jeunes (aorte thoracique) .........................................29
Figure 1b : taille des plaques chez les souris jeunes (sinus aortique) .............................................29
Figure 1c : composition en macrophages des plaques, chez les souris jeunes.................................29
Figure 2a : taille des plaques chez les souris vieilles (aorte thoracique) ........................................32
Figure 2b : taille des plaques chez les souris vieilles (sinus aortique) ............................................32
Figure 2c : composition en macrophages des plaques, chez les souris vieilles ..............................33
Figure 2d : composition en collagène des plaques, chez les souris vieilles ....................................33
Figure 2e : composition en CML des plaques, chez les souris vieilles ..........................................33
Figure 3a : prolifération lymphocytaire T......................................................................................36
Figure 3b : prolifération lymphocytaire T en présence de DC .......................................................36
Figure 4 : production de cytokines par les lymphocytes T ............................................................36
Figure 5 : production de cytokines par les cellules dendritiques ....................................................36
Figure 6 : fonction T régulatrice in vitro ......................................................................................37
Figure 7 : résultats du traitement par NP chez les souris apoE/RAG2-/- .........................................37
Résultats sous forme de tableaux
Tableau 1 : Tableau récapitulatif de la composition des plaques chez les souris « vieilles » ..........31
6
LISTE DES ABREVIATIONS
LDL
Low Density Lipoprotein
LDLox
LDL oxydé
HDL
High density Lipoprotein
VCAM
Vascular Cell Adhesion Molecule
IL
Interleukine
CD
Cluster of Differenciation
M-CSF
Monocyte-Colony Stimulating Factor
SRA
Scavenger Receptor type A
CML
Cellule Musculaire Lisse
CMH
Complexe Majeur d’Histocompatibilité
ApoE
Apolipoprotéine E
RAG
Recombinase A Activating Gene
SCID
Severe Combined Immunodeficiency
IFN
Interféron
AIT
Accident Ischémique Transitoire
AVC
Accident Vasculaire Cérébral
AOMI
Artériopathie Oblitérante des Membres inférieurs
TGF
Transforming Growth Factor
FOXP-3
forkhead transcription factor 3
CPA
Cellule Présentatrice d’Antigène
NP
Nucléoprotéine
DC
Cellule Dendritique
Treg
Lymphocyte T régulateur
7
I - INTRODUCTION
Les maladies cardiovasculaires sont aujourd’hui un véritable problème de santé publique
puisqu’elles constituent une des premières causes de mortalité dans le monde. Selon l’OMS,
7,2 millions de décès par an dans le monde sont liés à des cardiopathies ischémiques et 4,6
millions de décès à des accidents vasculaires cérébraux (43).
L’athérosclérose est la principale étiologie des maladies cardio-vasculaires. Elle provoque des
pathologies chroniques comme l’angor d’effort ou la claudication intermittente à la marche et
des maladies aigues plus bruyantes et potentiellement mortelles comme l’infarctus du
myocarde et l’accident vasculaire cérébral.
Il est donc prioritaire de comprendre et d’agir sur les mécanismes physiopathologiques qui
participent à la progression de la maladie athéroscléreuse et sur ses complications, comme la
fissuration de plaque et la thrombose artérielle consécutive.
II - PHYSIOPATHOLOGIE DE L’ATHEROSCLEROSE
Les études expérimentales les plus récentes associées aux observations anatomopathologiques
faites sur des plaques d’athérosclérose humaines, permettent aujourd’hui d’affirmer que
l’athérosclérose est une maladie inflammatoire chronique. Les lésions se développent
préférentiellement au niveau de l’intima des artères de gros et moyen calibre (55). La
formation de la plaque fait intervenir des cellules vasculaires comme les cellules
endothéliales,
des
cellules
inflammatoires
de
l’immunité
naturelle
comme
les
monocytes/macrophages et des cellules de l’immunité adaptative, les lymphocytes T CD4+
(20).
8
Lumière
monocyte
lymphocyte
LDL
4
1
chimiokines
Endothélium
3
macrophage
Intima
CPA
2
LDLox
6
5
Cellule
spumeuse
CML
Illustration 1 : principales étapes de formation de la plaque d’athérosclérose
1 : passage des LDL dans l’intima
2 : oxydation des LDL
3 : activation endothéliale avec expression de molécules d’adhésion et production de
chimiokines
4 : adhésion puis diapédèse des monocytes et des lymphocytes circulants
5 : phagocytose des lipides et des débris cellulaires par les macrophages qui
deviennent des cellules spumeuses
6 : interactions entre les différentes cellules inflammatoires qui participent à la
progression de la plaque
9
1 - Pénétration des lipoprotéines dans l’intima
Les toutes premières étapes du processus athéroscléreux sont caractérisées par l’accumulation
de lipoprotéines de basse densité (LDL) dans l’espace sous-endothélial ainsi que par le
recrutement et la pénétration de monocytes circulants dans l’intima. La chronologie précise de
ces évènements est restée longtemps obscure. Toutefois, une étude réalisée sur des aortes de
fœtus (portés par des mères normo- ou hypercholestérolémiques) a apporté des
éclaircissements à ce sujet. Dans les stries lipidiques, déjà présentes in utero, il est possible
d’observer une accumulation de LDL en l’absence de macrophages, mais jamais l’inverse. De
plus, la présence de macrophages est toujours associée à celle des LDL oxydées (LDLox),
alors que les lésions riches en LDL natives, non modifiées sont exemptes de macrophages. Ce
travail histologique descriptif de Napoli et al. a permis d’écrire le scénario des toutes
premières étapes de formation de la plaque d’athérosclérose : infiltration lipidique,
modifications oxydatives des LDL, puis recrutement des monocytes/macrophages (45).
2 - Activation endothéliale et recrutement des monocytes/macrophages
À côté des facteurs chimiques précédemment décrits, il existe des facteurs physiques qui
participent à l’activation endothéliale. Pour l’illustrer, on peut citer le fait que les plaques
d’athérosclérose se développent préférentiellement au niveau des zones de bifurcations, là où
le flux sanguin est turbulent et où les forces de cisaillement sont faibles. Les forces de
cisaillement constituent d’ailleurs une information permanente pour les cellules endothéliales
et les maintiennent dans un état « non-activé » (7). Toute modification de ce signal mécanique
s’accompagne rapidement d’une modification du statut endothélial. Chez l’animal sensible à
l’athérosclérose, il a été montré qu’au niveau des zones de bifurcation, bien avant l’apparition
des stries lipidiques, les cellules endothéliales ont un phénotype pathologique et expriment
NF-"b, un facteur de transcription nucléaire qui commande l’expression de nombreux gènes
de l’inflammation (19).
Les cellules endothéliales, une fois activées, expriment plusieurs types de chimiokines et de
molécules d’adhérence leucocytaires qui permettent aux cellules sanguines de rouler puis
d’adhérer à la surface vasculaire. P-sélectine, VCAM-1 et IL-8 sont les plus importantes à ce
stade (5, 6). Par la suite, des chimiokines, comme Monocyte Chemokine Protein-1 (MCP-1)
(51), produites par les cellules endothéliales et les cellules musculaires lisses, stimulent la
migration des cellules inflammatoires vers le sous-endothélium (illustration 1). L’importance
et le rôle des protéines précédemment citées ont été mis en évidence par plusieurs études
10
animales qui ont montré que leur blocage pharmacologique ou leur délétion génétique (47)
induit une diminution considérable de la taille des lésions d’athérosclérose ainsi qu’une
diminution de l’infiltration des monocytes/macrophages.
3 - Rôle pathogène des monocytes/macrophages
Le rôle pathogène des monocytes/macrophages dans le développement de la plaque
d’athérosclérose est évoqué depuis longtemps car les plaques d’athérosclérose sont très riches
en macrophages, surtout aux stades précoces (illustration 2). Les études animales ont
confirmé ce point. L’invalidation du gène codant pour M-CSF, un facteur de croissance
indispensable à la prolifération et/ou la maturation des monocytes en macrophages, empêche
le développement de l’athérosclérose, malgré des taux de cholestérol circulant très élevés
(51). Les macrophages, via certains récepteurs « scavengers » (SR-AI, SR-AII, CD36…),
phagocytent des LDL oxydées, des phospholipides, des débris cellulaires et deviennent des
cellules spumeuses. Ils entretiennent le processus inflammatoire en produisant des cytokines
pro-inflammatoires comme l’IL-12 (qui activent les lymphocytes T CD4+ pathogènes) et
participent à déstabiliser la plaque en sécrétant, entre autres, des radicaux libres oxygénés et
des métalloprotéases matricielles.
Illustration 2 : Détection par immunohistochimie des
macrophages (rouge-brun) au sein de la plaque
d’athérosclérose (grossissement X10)
Ces cellules inflammatoires ont un rôle dans le développement de la plaque mais aussi dans sa
vulnérabilité. Cette conclusion résulte des travaux anatomopathologiques réalisés notamment
par l’équipe de Virmani qui a comparé la composition des plaques coronaires rompues par
rapport à celle de plaques stables prélevées sur des cadavres humains. Elle a montré que les
plaques rompues, responsables d’évènements ischémiques, sont caractérisées par une
11
infiltration considérable de cellules inflammatoires et par une diminution des éléments
stabilisants comme les cellules musculaires lisses et le collagène (illustration 3) (28).
Type cellulaire (%)
*
*
*
Illustration 3 : composition de plaques d’athérosclérose
stables ou rompues, évaluées en immunohistochimie sur
coupes d’artères coronaires humaines post-mortem
(Adapté de Kolodgie et al. Am J Pathol 2000).
4 - Rôle des lymphocytes T CD4+ dans l’athérosclérose
4.1 - Rôle pathogène des lymphocytes T CD4+
Il a fallu attendre plusieurs années pour montrer que les lymphocytes T CD4+ ont aussi un
rôle pathogène dans l’athérosclérose. Tout d’abord, ils sont présents dans les plaques, surtout
au stade précoce où ils représentent 10 à 20 % de la population cellulaire totale. Ensuite, ils
sont activés car ils se trouvent fréquemment co-localisés en immunohistochimie avec le
Complexe Majeur d’Histocompatibilité de classe II (CMH II). En 1997, deux études explorant
le rôle des lymphocytes dans l’athérosclérose ont apporté des résultats contradictoires.
Daugherty et al. ont montré que les souris apoE/RAG2-/-, sensibles à l’athérosclérose et
déficientes en lymphocytes, sous un régime riche en matières grasses, développaient autant de
lésions que les souris apoE-/- contrôles (9). La même année, Dansky et al. ont rapporté que les
souris immunodéficientes (ApoE/RAG-/-) développaient deux fois moins de lésions au niveau
de la crosse aortique que les souris immunocompétentes, sous un régime normal (8).
L’apparente contradiction entre ces résultats peut s’expliquer par les différences de régime et
donc par les niveaux d’hypercholestérolémie. Les lymphocytes semblent avoir un rôle dans
l’athérosclérose mais uniquement en cas d’hypercholestérolémie modérée. Trois ans plus tard,
une étude suédoise a permis de trancher en montrant que l’absence de lymphocytes T et B,
obtenue en croisant des animaux déficients pour l’apolipoprotéine E (apoE -/-) avec des souris
SCID-/-, induit une diminution de 90% de la taille des lésions au niveau du sinus aortique. De
12
plus, l’injection intraveineuse de lymphocytes CD4+ chez ces animaux apoE/SCID-/- s’est
accompagnée d’une augmentation considérable des lésions d’athérosclérose aussi bien au
niveau de la crosse de l’aorte que du sinus aortique (61). La réapparition de la maladie
artérielle à un niveau quasi identique à celui des souris immunocompétentes, est la
démonstration directe du rôle pathogène des lymphocytes T CD4+ dans l’athérogénèse. En
plus de leur rôle dans le développement de la maladie, les lymphocytes sont aussi impliqués
dans la déstabilisation et la rupture de la plaque comme l’atteste leur accumulation dans les
plaques compliquées, essentiellement au niveau des zones de rupture (illustration 3).
4.2 - La voie Th1 est pro-athérogène
Les lymphocytes T CD4+ impliqués dans l’athérosclérose sont essentiellement de type Th1.
Ils produisent de grandes quantités d’Interféron # (IFN#) et d’IL-2 contrairement aux
lymphocytes T de type Th2 qui produisent de l’IL-4, de l’IL-5 et de l’IL-13. L’IFN# est
retrouvé en immunohistochimie dans les plaques d’athérosclérose dans les mêmes régions que
les cellules T. Le transfert in vivo de lymphocytes T CD4+, réalisé dans le travail
précédemment décrit, s’accompagne d’une augmentation considérable des taux plasmatique et
splénique d’IFN# (61). In vivo, Gupta a confirmé le rôle pro-athérogène de l’IFN# en
montrant que l’inactivation de son récepteur réduit de 60% les lésions aortiques (16) tout en
induisant un phénotype lésionnel stable. L’effet pro-athérogène de cette cytokine passe par de
nombreuses voies : activation des macrophages et des cellules endothéliales, inhibition de la
prolifération des cellules musculaires lisses et inhibition de la production de collagène (55).
De nombreuses études ont montré que des cytokines ou des facteurs de transcription nucléaire
impliqués dans l’activation et/ou la différenciation des cellules Th1 participent aussi à la
progression de l’athérome. La différenciation des lymphocytes T nécessite leur interaction
avec des cellules dendritiques, qui sont des cellules présentatrices d’antigène (32). L’IL-12
produite par les cellules dendritiques joue un rôle majeur dans la différenciation Th1 des
lymphocytes CD4+ puisque la souris déficiente en IL-12 n’est plus capable d’induire une
réponse de type Th1. D’ailleurs, la déficience en IL-12 chez des souris sensibles à
l‘athérosclérose (apoE/IL12-/-) s’accompagne d’une diminution des lésions athéromateuses
(10).
IL-18 est aussi une cytokine pro-athérogène qui stimule la production lymphocytaire d’IFN#.
L’injection d’IL-18 recombinante, chez la souris, induit une augmentation de la taille des
plaques d’athérosclérose tout en augmentant la production systémique d’IFN#. L’injection
13
d’IL-18 n’a plus effet chez la souris déficiente en IFN# (60). Dans le laboratoire, il a été
montré que le blocage in vivo de l’IL-18 par son inhibiteur physiologique l’IL-18BP (Binding
Protein) permet une diminution de la taille des lésions chez la souris tout en induisant un
phénotype lésionnel stable (36). De plus, l’IL-18 est exprimée dans les plaques
athéroscléreuses humaines et son taux au sein des lésions vasculaires (évalué en PCR
quantitative) est plus important chez les patients symptomatiques (AIT ou AVC) que chez les
patients asymptomatiques (35). A l’étage coronaire enfin, il a été montré sur une cohorte de
plus de 1 000 patients que le taux d’IL-18 plasmatique est un facteur pronostique
d’évènements cardiovasculaires (3).
4.3 - La voie Th2 est potentiellement pro-athérogène
Les lymphocytes de type Th2, producteurs d’IL-4, ont d’abord été considérés comme
protecteurs contre le développement de l’athérosclérose. Ces premières conclusions
proviennent de travaux explorant la voie humorale dépendante de la voie Th2. Chez la souris,
la splénectomie induit une augmentation de la taille des plaques ainsi qu’une diminution des
taux d’anticorps anti-LDLox de type IgM (4). De plus, l’immunisation de souris apoE-/- avec
des LDLox induit des taux élevés d’anticorps circulants et s’accompagne d’une diminution
des plaques d’athérosclérose (11, 12, 46). Ces anticorps « protecteurs » sont produits par des
lymphocytes de type B1, eux-mêmes sous le contrôle de l’Il-5, une cytokine de type Th2.
Cependant, plusieurs travaux récents remettent en cause l’effet anti-athérogène de la voie
Th2. Chez l’animal, lorsque l’on invalide le gène codant pour l’IL-4, une des principales
cytokines de la voie Th2, on diminue la taille des plaques au niveau du sinus aortique et au
niveau de la crosse aortique (26). De plus, la retransplantation de moelle osseuse déficiente en
IL-4, chez la souris déficiente en récepteur au LDL, a confirmé ce résultat (10). Les études
épidémiologiques ont ajouté un argument de poids chez l’homme en montrant que le risque
cardiovasculaire des patients atteints d’asthme, une maladie de type Th2, est nettement
supérieur à celui des patients non asthmatiques (27). Dès lors, la théorie qui oppose la voie
Th1 à la voie Th2 comme le Bien et le Mal dans l’athérogénèse est devenue critiquable.
4.4 - Un sous-type de lymphocytes T protecteurs contre l’athérosclérose
En l’absence de preuves suffisantes d’une contre-régulation protectrice de Th2 sur Th1 dans
l’athérosclérose, nous avons émis l’hypothèse que, dans le contexte de l’athérosclérose, la
dysfonction lymphocytaire T est liée à un défaut de régulation par des cellules T régulatrices
qui contrôlent leur action en amont (33). Cette théorie est d’autant plus séduisante que la
14
génération et le mode d’action des lymphocytes T régulateurs fait intervenir l’IL-10 et le
Transforming Growth Factor ! (TGF!), 2 cytokines clairement identifiées comme antiinflammatoires et anti-athérogènes.
4.4.1 - IL-10 et le TGF! sont anti-athérogènes
Mallat et al. ont été les premiers à montrer que la déficience en IL-10 chez la souris aggravait
l’athérosclérose avec des plaques plus importantes et beaucoup plus inflammatoires au niveau
du sinus aortique (34, 39). Ces travaux ont été confirmés par plusieurs équipes en utilisant
différents modèles. Chez les coronariens et chez les patients porteurs de sténoses
carotidiennes (22, 57), les taux plasmatiques d’IL-10 sont prédictifs d’évènements
cardiovasculaires.
Robertson et al. ont créé récemment la souris invalidée à la fois sur le gène codant pour
l’apoE et sur le gène codant pour le récepteur au TGF!. Ces souris sont caractérisées par des
lésions plus importantes que les animaux contrôles (taille des plaques multipliée par 7 au
niveau de l’aorte thoracique, par 3 au niveau du sinus aortique) et plus inflammatoires. Sur le
plan immunologique, les taux d’IFN# et d’IL-4 dans les plaques d’athérosclérose et dans la
rate sont très augmentés, confirmant le rôle majeur du TGF! dans le contrôle de Th1 et de
Th2 (21, 48). Dans le laboratoire, il a été montré, sur deux autres modèles, que le blocage du
TGF!, induit une augmentation de la taille des lésions d’athérosclérose avec un phénotype
lésionnel plus inflammatoire (13, 38).
4.4.2 - Les lymphocytes T régulateurs (Tregs)
Les Tregs ont été étudiés en immunologie, dans le cadre des maladies auto-immunes. Ils
participent à l’homéostasie immunitaire et inhibent les lymphocytes T auto-réactifs (49, 50,
58). Ils ont comme points communs une prolifération cellulaire faible en culture et la capacité
d’inhiber la prolifération et la production de cytokines des lymphocytes T pathogènes. Dans
cette famille, on distingue entre autres :
-
Les lymphocytes T régulateurs naturels CD4+CD25+, produits dans le thymus au cours de
la vie fœtale. Ils expriment de grandes quantités de CD25 à leur surface (CD25 high), le
facteur de transcription nucléaire FOXP3 et ne sécrètent que peu de cytokines (49).
-
Les lymphocytes T régulateurs adaptatifs de type Tr-1 ou Th3. Les Tr-1 produisent de
grandes quantités d’IL-10 mais peu d’IL-4 et d’IFN# (15). Les Tr-1 peuvent être générés
in vivo en réponse à une stimulation antigénique dans la muqueuse nasale (41, 56). Les
15
lymphocytes de type Th3, producteurs de TGF!, peuvent être générés in vivo en réponse à
une stimulation antigénique au niveau de la muqueuse digestive (59).
4.4.3 - Les Tregs protecteurs contre l’athérosclérose
Dans le laboratoire, en 2003 Mallat et al. ont apporté la preuve de concept que les Tregs de
type Tr-1 peuvent moduler l’inflammation in vivo et limiter la progression de l’athérosclérose.
Ils ont montré que l’injection de ces cellules T de type Tr-1, uniquement en présence de leur
antigène spécifique, diminue la taille des plaques d’athérosclérose chez la souris apoE-/-,
inhibe la réponse inflammatoire Th1 et Th2 et s’accompagne d’une augmentation
considérable de la production d’IL-10 par les lymphocytes T spléniques (37). Plus
récemment, nous avons identifié le rôle protecteur des lymphocytes T régulateurs naturels
CD4+CD25+ contre le développement de l’athérosclérose expérimentale. En utilisant plusieurs
modèles murins, nous avons montré que la déplétion en Tregs naturels s’accompagne d’une
accélération de la maladie athéroscléreuse et que la reconstitution d’un pool physiologique de
ces cellules empêche la maladie. De plus, l’injection de Tregs naturels stabilise les plaques
avec des lésions moins riches en cellules inflammatoires (macrophages, lymphocytes T) et
plus riches en collagène et en cellules musculaires lisses (1).
D’ailleurs, ces travaux commencent à trouver une relevance chez l’homme puisqu’il a été
récemment montré que les Tregs naturels sont diminués quantitativement chez les patients
coronariens instables par rapport aux patients avec angor stable. De plus, les Tregs isolés de
patients coronariens instables sont moins fonctionnels que les Tregs des sujets contrôles car,
in vitro, ils sont moins capable d’inhiber la prolifération les lymphocytes T effecteurs
pathogènes (42).
16
III - La nucléoprotéine du virus de la rougeole
1 - Modulation immuno-inflammatoire par le virus de la rougeole
La rougeole est un virus extrêmement contagieux responsable d’épidémies touchant environ
40 millions d’individus par an dans le monde. Les premiers éléments évoquant ses propriétés
immunosuppressives proviennent d’observations épidémiologiques, qui ont rapporté que la
mortalité consécutive à l’infection est essentiellement liée à des surinfections bactériennes
(14). Chez l’homme, il a ensuite été montré que les enfants infectés ont une diminution de
l’hypersensibilité cutanée au 2,4 dinitrochlorobenzene ou encore une anergie après une
injection intradermique de tuberculine (54). Dans un autre domaine, il a été rapporté des cas
de guérison de maladies immuno-inflammatoires, comme le syndrome néphrotique ou la
dermatite atopique, chez des enfants infectés par le virus de la rougeole (31).
In vitro, plusieurs publications ont mis en évidence que les lymphocytes circulants, prélevés
chez des sujets infectés par ce virus, perdent leur capacité à proliférer en réponse à une
stimulation puissante (23).
De plus, l’infection par le virus de la rougeole module la production de cytokines par les
cellules inflammatoires. Les monocytes de patients africains (Gambie) infectés par le virus de
la rougeole produisent moins d’IL-12 que les cellules contrôles. Cet effet existe aussi bien à la
phase aigue que 8 mois après l’infection (2). Plus récemment, d’autres travaux fondamentaux
ont décrit que l’infection in vitro de cellules dendritiques par le virus de la rougeole diminue
la production d’IL-12 (18). Cet effet est d’autant plus intéressant que l’IL-12 produite par les
cellules présentatrices d’antigènes est pro-athérogène et qu’elle polarise les lymphocytes
CD4+ vers un type Th1.
2 - Modulation immuno-inflammatoire par la nucléoprotéine du virus de la rougeole
Horvat et al. ont récemment montré, sur un modèle murin d’hypersensibilité retardée mettant
en jeu les lymphocytes CD4+, qu’un traitement préventif par des injections répétées d’une
nucléoprotéine (NP) extraite du virus de la rougeole permettait de diminuer l’inflammation
(40). En effet, les souris C57BL6, après une injection intra-péritonéale de NP, étaient
exposées par voie cutanée à un agent sensibilisant, le dinitrofluorobenzene (DNFB).
L’épaississement inflammatoire mesuré au niveau de l’oreille était 3 fois moins important
chez les animaux traités par la nucléoprotéine virale. Les lymphocytes T CD4+, isolés de
17
souris sensibilisées et traitées par NP, mis en présence de cellules présentatrices d’antigènes
(CPA) et de DNFB, prolifèrent moins in vitro que les lymphocytes extraits de souris traitées
par PBS. De plus, les lymphocytes T extraits de souris sensibilisées et traitées par une solution
saline, prolifèrent très peu lorsqu’ils sont mis en présence de DNFB et de CPA isolées de
souris traitées par NP. Ainsi, la nucléoprotéine NP semble affecter les propriétés à la fois des
lymphocytes T CD4+ et des CPA.
18
IV – OBJECTIFS DE L’ETUDE
L’athérosclérose étant une maladie inflammatoire et la nucléoprotéine NP une protéine virale
aux propriétés immunosuppressives et anti-inflammatoires bloquant la voie Th1, nous avons
évalué si le traitement de souris sensibles à l’athérosclérose par cette protéine virale était
capable d’influer sur la taille des plaques athéroscléreuses et/ou leur composition en cellules
inflammatoires.
Des souris apoE-/- « jeunes » (âgées de 12 semaines) et « vieilles » (30 semaines) ont été
traitées pendant 12 semaines par des injections intra-péritonéales de nucléoprotéine provenant
du virus de la rougeole afin d’évaluer l’effet de ce traitement sur le développement et la
progression de l’athérosclérose. Dans le même temps, nous avons analysé le phénotype des
cellules immunitaires en étudiant leur prolifération et leur production de cytokines en réponse
à différentes stimulations.
19
V - MATERIEL ET METHODES
1 - Souris
Nous avons utilisé des souris mâles apoE-/-, de fond génétique C57BL6, fournies par Iffa
Credo (Charles River, Lyon, France). Elles se répartissent en un groupe de souris dites
« jeunes » âgées de 12 semaines au moment où commence le traitement et un groupe de souris
« vieilles » âgées de 30 semaines lorsque débute le traitement.
Elles ont été élevées dans une animalerie conventionnelle et nourries avec un régime normal.
N’exprimant pas la protéine apoE, elles développent spontanément une hypercholestérolémie
sans qu’il soit nécessaire de recourir à un régime riche en matières grasses.
Nous avons aussi utilisé des souris apoE/RAG2-/- femelles âgées de 6 semaines qui nous ont
été fournies par le Pr Pierre Gourdy (Inserm U589, Toulouse). Ces souris sont déficientes en
apolipoprotéine E et sont génétiquement mutées sur le gène codant pour une enzyme
(Recombinase A Clivating Gene) indispensable pour créer le répertoire TCR (dans les
lymphocytes T) et le répertoire des immunoglobulines (dans les lymphocytes B). Ainsi ces
animaux sont sensibles à l’athérosclérose et sont déficientes en lymphocytes T et B. Elles
développent des plaques d’athérosclérose lorsqu’elles sont mises sous régime riche en
matières grasses (21% lipides, 1,5% cholestérol).
2 - Traitement
Les souris « jeunes » ont été réparties en 2 groupes :
- Un groupe placebo, constitué de 6 souris, traité par des injections de sérum physiologique ;
- Un groupe NP, constitué de 6 souris, traité par des injections de 20µg de nucléoprotéine.
Le traitement chez des souris « jeunes » a été répété deux fois.
Les souris « vieilles » ont été réparties en 3 groupes :
- Un groupe de 5 souris sacrifiées le jour où débute le traitement à l’age de 30 semaines
(TO) ;
- Un groupe placebo, constitué de 9 souris, traité par des injections de sérum physiologique ;
- Un groupe NP, 9 souris, traité par des injections de 20µg de nucléoprotéine.
Les injections étaient faites par voie intra-péritonéale après désinfection abdominale par une
solution antiseptique (Bétadine). Les injections diluées dans 0,2 mL de sérum physiologique
20
étaient pratiquées toutes les 2 semaines pendant une durée totale de 12 semaines. Les souris
« jeunes » ont été sacrifiées à l’âge de 24 semaines et les souris « vieilles » à 42 semaines.
La nucléoprotéine recombinante, dérivée du virus de la rougeole, a été produite dans le
système baculovirus (Pharmingen). Elle nous a été fournie par Branka Horvat qui dirige le
laboratoire d’« Immunobiologie clinique et fondamentale » à Lyon.
Enfin des souris sensibles à l’athérosclérose et déficientes en lymphocytes T et B
(apoE/RAG2-/-) âgées de 6 semaines (n=7), ont été traitées par une injection intra-péritonéale
(NP ou sérum physiologique) tous les 15 jours pendant 6 semaines. Le traitement a été associé
à un régime riche en matières grasses et en cholestérol (Western diet).
3 - Analyse de l’athérosclérose
Au terme de ces 12 semaines de traitement, les souris ont été anesthésiées à l’isoflurane pour
le prélèvement sanguin puis elles ont été sacrifiées par fracture cervicale.
Le cœur, l’aorte thoracique, la rate ont été constamment prélevés.
3.1 - Dosage des lipides plasmatiques
Le sang a été recueilli au niveau de l’angle interne de l’œil des souris sédatées, mises à jeûn
12 heures auparavant. Après centrifugation, le plasma recueilli a été utilisé pour le dosage du
cholestérol total et du HDL-cholestérol. Les dosages ont été réalisés à l’aide d’un kit Infinity
Cholestérol (Sigma).
3.2 - Dosage des anticorps circulants.
Nous avons dosé les anticorps anti-LDL oxydés de type IgM par la méthode «doublesandwich» ELISA. Les puits ont été tapissés avec des anticorps de capture, fraction F(ab’)2
de souris. Ensuite ils ont été recouverts de LDL, purifiés du plasma de souris apoE-/- et oxydés
au cuivre à 37°C pendant 24 heures. Le plasma des souris traitées a été réparti dans chaque
puits suivi de 2 lavages au PBS. Enfin, un anticorps anti-souris couplé à une activité
phosphatase alcaline a été appliqué. L’ajout du substrat de cette dernière enzyme a déclenché
une réaction colorimétrique qui a permis de chiffrer les taux d’anticorps anti-LDL oxydés
(spectrophotométrie à 450 nm).
21
3.3 - Analyses morphométriques
Après les prélèvements, le foie a été congelé puis conservé à – 80°C. Le cœur et l’aorte
thoracique en revanche ont été placés dans un bain de paraformaldéhyde 4 % pendant au
moins deux heures puis seul le cœur était transféré dans une solution de PBS-sucrose 30 %
(Fluka) pendant la nuit. Le lendemain, le cœur a été inclus dans un gel « tissue-tek » (Sakura),
puis cryocongelé à – 80°C.
Des coupes sériées de 10 µm d’épaisseur ont été réalisées par la suite, à raison de 16 lames
par cœur. Les coupes ont été disposées successivement sur des lames numérotées de façon à
ce que chaque lame possède 4 à 5 coupes représentatives de l’ensemble du sinus aortique. Les
coupes ont été réalisées au niveau du sinus aortique, au contact des sigmoïdes aortiques.
Une lame a été destinée à la détection des dépôts lipidiques par coloration à l’huile rouge (Oil
Red, Sigma). Lors de cette coloration, les coupes ont été plongées dans l’huile rouge pendant
10 minutes, rincées dans l’eau et contre-colorées à l’hématoxyline (Réactif RAL) avant d’être
montées avec du Fluorep (bioMérieux). Une autre lame a été utilisée pour la détection du
collagène par coloration au rouge Sirius (Gurr). Le reste des lames était utilisé pour l’analyse
immunohistochimique.
L’aorte thoracique a été préparée sous loupe binoculaire avec notamment une excision
soigneuse des franges graisseuses sur la face externe du vaisseau puis coupée dans le sens de
la longueur. Après coloration à l’huile rouge dans un bain pendant 30 minutes, l’aorte
thoracique a été étalée et fixée entre lame et lamelle.
La quantification du marquage a été réalisée sous microscopie, avec l’aide d’un logiciel
informatique de planimétrie (Histolab).
3.4 - Analyses immunohistochimiques
L’immunohistochimie permet l’analyse de la composition cellulaire de la plaque
athéroscléreuse : détection des cellules musculaires lisses vasculaires par un anticorps anti-$actine (clone IA4, conjugué à l’alcaline phosphatase, dilution 1/100, Sigma), des macrophages
par l’anticorps MOMA-2 (MAB1852, dilution 1/100, Abcys) et des lymphocytes T par un
anticorps anti-CD3% (M-20, J148, dilution 1/ 30, Santa Cruz).
Les coupes ont d’abord été rincées au PBS (Phosphate Buffered Saline, pH 7,40, Sigma),
plongées dans un bain d’ H2O2 3% pendant 5 minutes avant d’être incubées 30 minutes avec
un sérum bloquant les sites non spécifiques (même origine que l’anticorps secondaire, dilution
1/10). Nous avons ensuite déposé sur les coupes 100 µL de l’anticorps primaire, une heure
22
durant. Les lames ont été rincées et incubées pendant 1 heure avec l’anticorps secondaire
biotinylé correspondant (vector) dans un premier temps, puis avec la peroxydase couplée à
l’avidine-biotine (kit ABC de chez Vectastain) dans un second temps. Les marquages ont été
finalement révélés par ajout d’un substrat de la peroxydase, l’AEC (3-Amino-9-EthylCarbazole, Sigma).
En ce qui concerne l’$-actine, la révélation s’est faite directement par adjonction de
NBT/BCIP (Roche), substrat de la phosphatase alcaline.
3.5 - Analyses immunologiques
3.5.1 - Les cellules dendritiques
Après le sacrifice, les rates ont été isolées dans des conditions stériles, broyées puis tamisées ;
Les splénocytes recueillis ont été mis en suspension dans un milieu de culture (RPMI 1640
Medium With Glutamax-1, Gibco). Le contenu cellulaire a été évalué en utilisant une cellule
de Mallassez.
Pour isoler les cellules dendritiques, nous avons utilisé un kit MACS (Miltenyi Biotec).
Les splénocytes totaux, provenant des rates broyées, ont été homogénéisés dans un milieu de
culture (RPMI 1640 Medium With Glutamax-1, Gibco + 10 % SVF + 1 % Pénicilline /
Streptomycine + 500 µL Mercaptopurinol (20 mmol/L)). Après la lyse des globules rouges
par une solution « Red blood cell lysing » commercialisée par Sigma, les cellules ont été
resuspendues dans une solution de PBS/SVF 2 % et comptées à l’aide d’une cellule de
Mallassez.
Les splénocytes ont été incubés avec un anticorps anti-CD11c couplé à des billes magnétiques
puis ont été perfusés dans une colonne, elle-même placée dans un champ magnétique. Les
cellules CD11c+, ayant fixé des anticorps marqués, ont été retenues dans la colonne et toutes
les autres cellules ne portant pas cet antigène ciblé, ont été recueillies à l’extrémité inférieure
de la colonne. Dans un second temps, la colonne a été rincée vigoureusement en dehors du
champ magnétique pour recueillir notre population d’intérêt. On parle alors d’isolation
positive.
Les cellules dendritiques des différents groupes de souris traitées ont été réparties dans des
puits de 500 µL contenant chacun 200.103 cellules puis stimulés par LPS (10 µg/puit) et IFN#
(100 U/puit). Après 48 heures de stimulation, le surnageant a été recueilli et utilisé pour doser
deux cytokines : L’IL-10 et l’IL-12.
23
Pour doser les cytokines, nous avons utilisé une technique de « Double-sandwich » ELISA.
Le fond des puits a été recouvert d’un anticorps de « coating » dirigé contre la cytokine
d’intérêt (anti-IL10, anti-IL12) et commercialisé par Pharmingen. Après application d’une
solution saturante (200 µL), nous avons déposé pendant une heure 100 µL du surnageant
provenant du milieu de culture des splénocytes stimulés. Nous avons rincé plusieurs fois pour
éliminer les liaisons aspécifiques et nous avons ajouté 100 µL d’anticorps biotinylé spécifique
de la cytokine d’intérêt, pendant une heure. Nous avons ajouté ensuite la peroxydase couplée
à l’avidine (qui se fixe sur les anticorps ayant reconnu la cytokine spécifique) et enfin le
substrat de la peroxydase.
La densité optique de chaque puit, lue à 450 nm sur le spectrophotomètre, a été comparée à
une gamme de concentration connue et a permis de quantifier la concentration de la cytokine
d’interêt dans le surnageant.
3.5.2 - Les lymphocytes T CD4+
3.5.2.1 - Isolation des lymphocytes CD4+
Pour isoler les lymphocytes T CD4+, nous avons utilisé un kit MACS (Miltenyi Biotec).
Les splénocytes totaux, provenant des rates broyées, ont été homogénéisés dans un milieu de
culture. Après la lyse des globules rouges par une solution « Red blood cell lysing »
commercialisée par Sigma, les cellules ont été resuspendues dans une solution de PBS/SVF 2
% et comptées à l’aide d’une cellule de Mallassez.
Les splénocytes ont été, dans un premier temps, mélangés avec un cocktail d’anticorps
biotinylés dirigés contre les antigènes de surface des cellules de la rate à l’exception des
antigènes présents à la surface des lymphocytes T CD4+ (Anticorps anti-CD8, anti-CD11,
anti-CD45R, anti-DX5 et anti-ter119). Dans un second temps, nous avons ajouté un anticorps
secondaire anti-biotine couplé à des billes magnétiques ; la solution finale a été perfusée dans
une colonne, elle-même placée dans un champ magnétique. Les cellules ayant fixé des
anticorps marqués ont été retenues dans la colonne et seules les cellules ne portant aucun des
antigènes ciblés, en l’occurrence les lymphocytes T CD4+, ont été recueillies à l’extrémité
inférieure de la colonne. On parle cette fois de sélection négative.
Pour évaluer l’efficacité de cette méthode d’isolement de cellules, nous avons quantifié par
cytométrie en flux le pourcentage de cellules CD4+ dans la population cellulaire totale avant
et après la procédure. Le pourcentage de lymphocytes T CD4+ initiale de 25 % environ a
atteint plus de 90 % après la procédure.
24
Les lymphocytes T CD4+ ont été comptés avec une cellule de Mallassez et répartis dans des
puits contenant chacun 100.103 cellules, 200 µL de milieu de culture. Les cellules ont été
stimulées pendant 48 heures par un anticorps « coâté » anti-CD3 (2 !g/ml), et par des cellules
dendritiques (20.103/puit). Ensuite, le surnageant a été recueilli afin de doser les cytokines
sécrétées selon la méthode de double-ELISA décrite au paragraphe précédent.
3.5.2.2 - Isolation des lymphocytes T régulateurs CD4+CD25+
L’isolation des lymphocytes T régulateurs CD4+CD25+ (Tregs) a été faite à partir des
lymphocytes CD4+ purifiés précédemment, par sélection positive sur colonne en utilisant des
billes magnétiques (Miltenyi Biotec). Les cellules CD4+ sont incubées avec un anticorps
primaire anti-CD25 biotinylé (7D4 BD Pharmingen). Après un lavage avec le tampon PBS,
les cellules sont incubées avec des billes anti-biotine. La suspension est filtrée sur une colonne
placée dans un champ magnétique permettant de retenir uniquement les Tregs. Les cellules
retenues dans la colonne magnétique correspondent aux Tregs CD4+CD25+ et la fraction
recueillie à la sortie de la colonne correspond aux cellules effectrices CD4+CD25-.
3.5.2.3 - Co-culture des cellules isolées
Les cellules isolées sont cultivées en milieu complet RPMI 1640 dans des plaques de 96 puits
à fond plat. Dans chaque puit, une stimulation a été réalisée par ajout d’anticorps agoniste
anti-CD3 (1 !g/mL). Les co-cultures ont été systématiquement réalisées en « triplicate ».
La prolifération des effecteurs a été tout d’abord étudiée par incubation de 50.103 effecteurs
avec 10.103 cellules dendritiques (DC) dans un volume total de 200 !L. De même, les Tregs
ont été incubés à une concentration de 50.103 cellules avec 10.103 DC.
Le pouvoir régulateur des Tregs a été ensuite évalué en incubant des concentrations
décroissantes de Tregs avec un nombre fixe d’effecteurs et de DC. Les concentrations des
effecteurs et des DC restaient inchangées, respectivement 50.103 et 10.103 cellules par puits.
Les Tregs ont été ajoutés à des concentrations diluées (1/1) 50.103 cellules, (1/2) 25.103
cellules, (1/4) 12,5.103 cellules et (1/8) 6,25.103 cellules. Le pouvoir régulateur, exprimé en
pourcentage d’inhibition, correspond à la capacité des Tregs à inhiber la prolifération des
effecteurs.
3.5.2.4 - Mesure de la prolifération cellulaire
Pour mesurer la prolifération cellulaire, après la période de culture in vitro de 72 heures, nous
avons ajouté 10 !L de thymidine tritiée (1 µCi/puit, Amersham) pour une durée de 18 heures.
25
Au terme de cette période, la plaque contenant les lymphocytes a été transférée sur une
membrane et l’incorporation cellulaire de thymidine, reflet de la prolifération cellulaire a été
révélée par un compteur à scintillation de marque TopCount NXT scintillation counter
(Perkin Elmer).
3.5.2.5 - Analyse en Cytométrie de flux
L’association de marquages CD4+CD25+Foxp3+ a été réalisée sur la population de
splénocytes totaux avec un anticorps anti-CD4 couplé à l’isothiocyanate de fluoresceine
(FITC) (clone GK1.5, Miltenyi), un anticorps anti-CD25 biotinylé (clone PC61.5,
eBioscience) et un anticorps anti-Foxp3 couplé à la Phycoerythrine (PE) (clone FJK-16s,
eBioscience).
Marquage membranaire
Après une centrifugation de 6 minutes à 1600 tpm (tour par minute), les cellules ont été
resuspendues à une concentration de 106 cellules/ml dans du PBS 3% SVF puis réparties dans
différents tubes à raison de 100 !l par tube. Un traitement par un anticorps CD16/CD32
(2.4G2 BD Pharmingen), bloquant les récepteurs Fc" non spécifiques, a été effectué pendant 5
minutes à 4°C. Les anticorps CD4 FITC et CD25 biotinylé ont été ajoutés directement dans
les tubes correspondants puis incubés 30 minutes à 4°C. Un lavage avec la solution de PBS 3
% SVF suivi d’une centrifugation a permis d’éliminer l’excédent d’anticorps non fixés. Pour
le marquage CD25 biotinylé, un marquage secondaire a été effectué avec un anticorps
streptavidine phycoerythrine-Cyanine-5 (PE-Cy5), incubé pendant 30 minutes dans
l’obscurité à 4°C. L’excès d’anticorps secondaire est éliminé par un lavage. Enfin, pour les
tubes de marquage uniquement membranaire, les cellules ont été fixées par une solution
tamponnée de paraformaldéhyde à 1 %.
Perméabilisation et marquage Foxp3 intracellulaire
Le facteur de transcription Foxp3 est un marqueur intracellulaire spécifique des Tregs, sa
détection par cytométrie en flux permet de définir précisément la population d’intérêt.
Suite aux marquages de surface CD4/CD25, une perméabilisation cellulaire a été effectuée
pour détecter le facteur de transcription Foxp3 à l’aide d’un kit de perméabilisation
(eBioscience).
Les
cellules
ont
été
resuspendues
dans
1
ml
de
solution
de
fixation/peméabilisation et incubées à 4°C pendant 18 heures dans l’obscurité. Deux lavages
avec 2 ml de tampon de perméabilisation ont été réalisés avant le blocage des récepteurs Fc"
26
par l’anticorps CD16/CD32. L’incubation avec l’anticorps anti-Foxp3 a été réalisée pendant
30 minutes à 4°C suivis de 2
lavages et enfin d’une suspension dans le tampon de
perméabilisation.
Les contrôles isotypiques correspondant aux anticorps utilisés ont permis les réglages du
cytomètre.
4 - Analyses statistiques
Les données ont été exprimées en moyenne ± erreur standard de la moyenne. La
significativité statistique a été déterminée par un test ANOVA. Une valeur de P inférieure à
0,05 étant considérée comme statistiquement significative.
27
VI – RESULTATS :
Etude du développement des lésions chez les souris « jeunes »
1 - Effets du traitement par NP sur la taille des plaques d’athérosclérose
Le taux de cholestérol plasmatique et HDL cholestérol est similaire chez les souris traitées par
placebo et par NP. Le poids des souris placebo n’est pas différent de celui des souris du
groupe NP (p=0,95) ; respectivement 29,5 ± 1,5 g et 29,5 ± 0,5 g.
Dans un premier temps, nous avons examiné les aortes thoraciques en évaluant l’étendue des
lésions lipidiques, par coloration à l’huile rouge. Nous n’avons pas constaté de différence en
ce qui concerne la surface ainsi colorée chez les souris traitées par rapport au groupe placebo
(figure 1a).
Au niveau du sinus aortique, site de prédilection pour la formation accélérée des plaques,
nous avons observé une diminution significative de 50,3 ± 8,3 % (P<0,05) de la taille des
lésions mesurées à 58 659 ± 9 762 !m2 dans le groupe traité par NP contre 11 7954 ± 17 973
!m2 dans le groupe placebo (figure 1b).
Une deuxième série d’injections a confirmé que le traitement par la nucléoprotéine NP induit
une diminution significative de la taille des plaques au niveau du sinus aortique. Les lésions
étaient mesurées à 123628 ± 24225 !m2 dans le groupe traité par NP et à 200894 ± 16782
!m2 dans le groupe contrôle (P<0,05).
2 - Effets du traitement par NP sur la composition des plaques d’athérosclérose
Les analyses immunohistochimiques de la composition de la plaque d’athérosclérose ont
révélé, chez les souris traitées par NP, une réduction de 57,9 ± 7,4 % de l’infiltration des
macrophages, marqués avec un anticorps dirigé contre MOMA-2. Cette analyse qualitative a
été réalisée au niveau des plaques du sinus aortique (figure 1c).
Nous avons, de la même façon, quantifié les lymphocytes présents dans les plaques
débutantes en utilisant un anticorps anti-CD3. Les lésions des souris traitées par NP sont
caractérisées par une diminution de 75 % (P<0,05) de l’infiltration des lymphocytes T par
rapport aux souris contrôles (0,11 ± 0,03 % versus 0,45 ± 0,12 %).
Nous n’avons pas quantifié les autres composants de la plaque (collagène, cellules
musculaires lisses) puisqu’à ce stade de la maladie, les plaques d’athérosclérose sont
composées
quasi
exclusivement
de
cellules
inflammatoires
et
de
lipides.
28
Figure 1a : taille des plaques (aorte thoracique)
Plaque (% aorte)
13
12
11
10
9
8
7
6
5
4
3
2
1
placebo
NP
Figure 1b : taille des plaques (sinus aortique)
0
0 ,5
Placebo
1
1,5
NP
Taille des plaques (µm2)
*
placebo
NP
Figure 1c : composition en macrophages
Macrophages (%)
*
placebo
NP
29
2
VII - RESULTATS :
Etude de la progression des lésions chez les souris « vieilles »
1 - Effets du traitement par NP sur la taille des plaques d’athérosclérose
Les poids, taux de cholestérol plasmatique et HDL-cholestérol sont similaires chez les souris
traitées par placebo et par NP. Le taux de cholestérol plasmatique est de 6,1 ± 0,6 g/l dans le
groupe NP et 6,7 ± 0,7 g/l dans le groupe recevant des injections intra-péritonéales de sérum
physiologique.
La taille des plaques d’athérosclérose, qu’elle soit au niveau de l’aorte thoracique ou au
niveau du sinus aortique, est diminuée dans le groupe traité par NP par rapport au groupe
placebo. Les plaques au niveau du sinus aortique ont été mesurées à 349 372 ± 12 256 !m2
dans le groupe NP et à 57 3826 ± 35 907 !m2 dans le groupe placebo (figure 2b). La taille des
plaques des souris sacrifiées le jour du début du traitement (T0) est de 311 512 ± 22599 !m2.
La taille des plaques de ces souris (âgées de 30 semaines) n’est pas significativement
différente des plaques du groupe traité par NP (âgées de 42 semaines) ce qui suggère que le
traitement par NP a induit un ralentissement très marqué de la progression de l’athérosclérose
au niveau du sinus aortique. Pour mieux illustrer ce propos, nous avons calculé le pourcentage
d’augmentation de la taille des plaques entre 30 et 42 semaines. L’augmentation calculée est
de 84,2 ± 11,5 % dans le groupe contrôle et seulement de 12,2 ± 3,9 %, soit 6 fois moins, dans
le groupe traité par une injection intra-péritonéale de la nucléoprotéine NP chaque 15 jours
pendant 12 semaines.
Au niveau de l’aorte thoracique, le traitement par NP est aussi associé à une diminution
importante de 30 % (P<0,05) de la surface des lésions. En planimétrie, une fois colorées et
étalées, les plaques des souris traitées par NP occupent 20,7 ± 1,8 % de la surface totale de
l’aorte contre 29,8 ± 2,1 % dans le groupe contrôle (P<0,01) (figure 2a). A T0, la surface des
plaques a été mesurée à 14 ± 5,4 %. Le pourcentage d’augmentation des plaques
d’athérosclérose au niveau de l’aorte thoracique pendant les 12 semaines de traitement est
donc de 110 % dans le groupe placebo et seulement de 50 % dans le groupe NP.
30
2 - Effets du traitement par NP sur la composition des plaques d’athérosclérose
(cf. tableau 1)
Les analyses immunohistochimiques des plaques d’athérosclérose ont révélé, chez les souris
traitées par NP une réduction significative (p<0,05) de 25 % de l’infiltration de macrophages
par rapport aux plaques des souris traitées par le placebo (figure 2c).
Les lésions des souris traitées par NP ont un taux de cellules musculaires lisses
significativement plus élevé (+49 %) (figure 2e) et une accumulation de collagène plus
marquée (+32 %) que les souris du groupe placebo (P<0,05) (figure 2d). Enfin, après
coloration au Trichrome de Masson, nous avons quantifié les zones acellulaires qui
correspondent à l’accumulation des débris cellulaires apoptotiques et des lipides. Dans le
groupe traité par NP ce noyau acellulaire est significativement moins grand que dans les
plaques des animaux du groupe placebo, respectivement 23,7 ± 2,53 % et 10,71 ± 0,94 %
(P<0,05).
Tableau 1 : Tableau récapitulatif de la composition des plaques chez les souris « vieilles »
Placebo
NP
Statistiques
Macrophages (%)
32,52 ± 1,6
24,13 ± 1,41
P<0,05
Collagène (%)
30,79 ± 3,64
40,72 ± 3,89
P<0,05
CML (%)
3,50 ± 0,69
5,19 ± 0,36
P<0,05
Noyau acellulaire (%)
23,7 ± 2,53
10,71 ± 0,94
P<0,05
31
Figure 2a : taille des plaques (aorte thoracique)
Taille des lésions
(% de l’aire totale de l’aorte)
*
placebo
T0
Placebo
NP
NP
NP
Figure 2b : taille des plaques (sinus aortique)
Taille des plaques
Sinus (X1000µm2)
*
*
32
Figure 2c : composition en macrophages
Macrophages (%)
*
placebo
NP
Figure 2d : composition en collagène
Collagène (%)
placebo
*
NP
Figure 2e : composition en CML
CML (%)
*
placebo
NP
33
VIII - RESULTATS : analyses immunologiques
1 - Effet du traitement par NP sur le profil immunologique des lymphocytes CD4+
Par cytométrie en flux, nous avons mesuré la proportion de lymphocytes T régulateurs
naturels CD4+CD25+ dans la rate (données non présentées). Nous n’avons pas mis en
évidence de différence de population Tregs entre les groupes NP et contrôles. De plus, les
Tregs naturels ont été purifiés à partir de splénocytes totaux et nous avons quantifié leur
pourvoir régulateur, exprimé comme leur capacité à inhiber la prolifération de lymphocytes T
effecteurs (% d’inhibition). Nous n’avons pas mis en évidence de différence de pouvoir
régulateur entre les Tregs naturels des groupes recevant et ceux ne recevant pas les injections
intra-péritonéales de NP (figure 6).
Les lymphocytes T CD4+ purifiés ont été stimulés in vitro avec un anticorps anti-CD3 soit
« coâté » soit soluble. Les lymphocytes T isolés de souris traitées par NP prolifèrent beaucoup
moins que les cellules du groupe placebo (42 297 ± 3 239 cpm versus 129 227 ± 3 927 cpm,
P<0,001) (figure 3a) et produisent moins d’IFN# (260 ± 26 pg/ml versus 1 610 ± 175 pg/ml,
P<0,05). Nous n’avons pas détecté d’IL-10 ni d’IL-4 dans le surnageant des cellules stimulées
avec une concentration d’anticorps de 2 µg par ml.
Pour se rapprocher des conditions physiologiques, les lymphocytes T ont été ensuite stimulés
avec un anticorps anti-CD3, en présence de cellules dendritiques CD11c+ purifiées qui
apportent, entre autres, la co-stimulation nécessaire à la réaction immunitaire. Nous avons mis
en évidence une diminution de la prolifération des lymphocytes isolés de souris traitées par
NP (figure 3b). Les cellules T CD4+ du groupe NP produisent moins d’IFN# (-35 %, P<0,05),
moins d’IL-4 (-70 %, P<0,05) et plus d’IL-10 (+30 %, P<0,05) que les cellules T purifiées du
groupe placebo (figure 4).
2 - Effet du traitement par NP sur le profil immunologique des cellules dendritiques
In vivo, les cellules dendritiques (DC), après digestion intracellulaire, présentent l’antigène au
récepteur TCR des lymphocytes T, couplé au CMH de classe II. De façon contemporaine, les
DC apportent la co-stimulation par l’intermédiaire de protéines de surface (comme le CD40
ou le CD80/86) et orientent la réponse lymphocytaire. Nous avons étudié ex vivo ces
interactions en analysant la manière dont les DC modulent la prolifération et la production de
cytokines des lymphocytes CD4+.
34
L’apport de stimulation par les DC induit la prolifération in vitro des lymphocytes T CD4+ en
présence d’anti-CD3 soluble. De plus, la production de cytokines est nettement supérieure en
présence de DC (8 fois plus pour l’IFN#).
De façon intéressante, lorsque les DC isolées de souris traitées par NP sont mises en culture
avec des lymphocytes T de souris du groupe PBS, elles induisent le même phénotype que les
lymphocytes T isolés de souris traitées par NP. Les DC des souris NP diminuent
significativement la prolifération des lymphocytes T du groupe placebo (figure 3b), diminue
la production d’IFN#, d’IL-4 et augmentent la production d’IL-10 (figure 4). De façon
parallèle, les DC isolées de souris contrôles, lorsqu’elles ont été mises en culture avec des
lymphocytes T de souris traitées par NP, orientent leur profil (sécrétion de cytokines et
prolifération) vers celui des lymphocytes T du groupe contrôle.
Enfin, après stimulation par LPS/IFN#, les DC isolées de souris traitées par NP produisent
plus d’IL-10 que les DC du groupe placebo (+330 %, P<0,01) sans différence de production
d’IL12 (figure 5).
3 - Effet du traitement par NP chez la souris apoE/RAG2-/Le poids et le taux de cholestérol plasmatique ne sont pas différents entre les 2 groupes de
souris. Le cholestérol plasmatique tend à être légèrement plus élevé chez les souris contrôles
(13,2 ± 2,7 g/l versus 11,4 ± 1,5 g/l) mais cette différence n’est pas significative.
Nous n’avons pas observé de différence, au niveau du sinus aortique, entre les plaques des
souris traitées par NP et celles des souris traitées par placebo. Les valeurs respectives étaient
154176 ± 67875 !m2 et 125496 ± 35719 !m2 (P=0,30) (figure 7).
4 – Taux d’anticorps anti-LDL oxydés de type IgM chez les souris jeunes
Les taux d’IgM sont légèrement plus élevés dans le groupe traité par NP par rapport au
groupe contrôle (P=0,02). Les valeurs de densité optique mesurée par spectrophotométrie,
exprimée en médiane (et les quartiles) sont respectivement 0,113 (0,105 – 0,117) et 0,128
(0,113 – 0,154).
.
35
Figure 3b : prolifération lymphocytaire T en
présence de DC
Figure 3a : prolifération lymphocytaire T
Prolifération (cpm)
Prolifération (cpm)
*
*
*
*
Prolifération
f ration des lymphocytes T CD4+ stimulés par un
Prolifération des lymphocytes T CD4+ stimulés pendantt Prolifé
anticorps anti-CD3 soluble et des DC du même groupe
72 heures par un anticorps anti-CD3 « côaté »
(blanc pour placebo et noir pour NP) ou par des DC
croisées (gris)
Figure 4 : production de cytokines par les lymphocytes T CD4+
IFN# (X1000pg/ml)
IL-10 (pg/ml)
*
IL-4 (pg/ml)
*
*
*
*
*
*
*
Production de cytokines par les lymphocytes T CD4+ stimulés par un anticorps anti-CD3 « coâté » et des DC du
même groupe (blanc pour placebo et noir pour NP) ou des DC croisées (gris). Le dosage des cytokines dans le
surnageant a été réalisé par ELISA
Figure 5 : production de cytokines par les cellules dendritiques
IL-10(pg/ml)
IL-12 (pg/ml)
*
NS
36 a
Production de cytokines par les DC stimulées par LPS/IFN#. Le dosage des cytokines dans le surnageant
été réalisé par ELISA
Figure 6 : fonction T régulatrice in vitro
% Inhibition
Co-culture
1/1
1/2
1/4
1/8
Co-culture Tregs et Teffecteurs en présence de DC. Le pouvoir régulateur correspond au pourcentage
d’inhibition de la prolifération des Teffecteurs par les Tregs avec concentration décroissante de Tregs
(1/1, 1/2, 1/4, 1/8)
Figure 7 : résultats du traitement par NP chez les souris apoE/RAG2-/Taille des plaques
(X1000!m2)
Cholestérol total (g/l)
37
IX - DISCUSSION
Les études épidémiologiques et les études anatomopathologiques post-mortem ont mis en
évidence l’implication des acteurs de l’inflammation dans la formation et la rupture de la
plaque. De façon complémentaire, les études expérimentales sur des modèles animaux ont
permis de disséquer les mécanismes physiopathologiques qui aboutissent à la formation de la
plaque.
La nucléoprotéine NP extraite du virus de la rougeole a montré in vivo et in vitro des
propriétés immuno-modulatrices et anti-inflammatoires intéressantes. Branka Horvat et al. ont
montré sur 2 modèles d’hypersensibilité cutanée, mettant en jeu les lymphocytes T, que le
traitement des souris par cette nucléoprotéine réduit significativement l’inflammation. La
nucléoprotéine du virus de la rougeole inhibe soit directement les lymphocytes T CD4+
pathogènes soit indirectement en modulant les cellules dendritiques qui apportent la costimulation indispensable au fonctionnement des cellules T. D’autres travaux ont confirmé
que le virus de la rougeole est capable d’inhiber le fonctionnement des cellules présentatrices
d’antigènes. Ces effets sont d’autant plus intéressants que les cellules présentatrices
d’antigènes, une fois infectées, produisent moins d’IL12, une cytokine pro-athérogène.
Nous avons traité des souris sensibles à l’athérosclérose par des injections intra-péritonéales
de cette nucléoprotéine recombinante et nous avons évalué son effet sur la taille et la
composition des plaques. Le traitement a été réalisé chez des souris jeunes en même temps
que s’installe la maladie artérielle et chez des souris plus âgées chez qui les plaques sont déjà
présentes, mais continuent de se développer et de s’organiser. Chez les souris « jeunes », le
traitement par NP induit une diminution significative de 50 % de la taille des plaques au
niveau du sinus aortique mais n’a aucun effet sur les plaques au niveau de l’aorte thoracique.
Une des hypothèses pour expliquer un effet modulateur de NP uniquement au niveau du sinus
est que la physiopathologie de l’athérosclérose est différente selon le territoire anatomique.
Dansky et al. avait montré que la déficience en lymphocytes s’accompagnait d’une diminution
des plaques d’athérosclérose au niveau de l’aorte thoracique mais elle n’avait aucun effet à
l’étage abdominal (8, 9). Chez l’homme, on sait que le tabagisme est associé à de
l’athérosclérose au niveau des membres inférieurs alors que les patients hypertendus ont
surtout des plaques au niveau coronaire et au niveau carotidien. Cependant l’explication la
plus probable pour expliquer l’absence d’effet au niveau thoracique est que les plaques sont
trop petites à ce stade (24 semaines) pour qu’une différence soit identifiable. Chez la souris
apoE-/-, les plaques apparaissent dans un premier temps au niveau du sinus aortique puis de
38
façon retardée sur l’aorte thoracique et abdominale (44). D’ailleurs, dès que les plaques sont
plus volumineuses, comme c’est le cas chez les souris « vieilles », le traitement par NP a un
effet anti-athérogène net au niveau de la crosse aortique.
Les souris « vieilles » traitées par NP ont des plaques significativement moins importantes
(-30 %, P<0,05) que les souris du groupe placebo. Cette réduction existe aussi bien au niveau
du sinus aortique qu’au niveau de l’aorte thoracique. De plus, la taille des plaques
d’athérosclérose des souris « vieilles » sacrifiées à 30 semaines (au moment où nous avons
débuté les injections) et la taille des lésions des souris du groupe NP sacrifiées 12 semaines
plus tard n’est pas statistiquement différente. On peut donc conclure que le traitement par NP
est capable d’empêcher le développement des plaques et même de ralentir considérablement
la progression de la maladie athéroscléreuse dans ce modèle.
En ce qui concerne l’effet du traitement sur la stabilité des lésions, une des limites des
modèles murins tient au fait que les souris ne font pas de rupture spontanée de plaque
d’athérosclérose. Dès lors, nous ne pouvons pas évaluer l’effet du traitement sur la prévention
des événements ischémiques aigus (infarctus ou mortalité). Par contre, plusieurs études
anatomopathologiques humaines ont montré qu’il existe un lien étroit entre la composition
des plaques et leur stabilité (cf. illustration 3). Les plaques rompues sont riches en
macrophages, en lymphocytes T, et pauvres en cellules musculaires lisses et en collagène.
Nous avons donc utilisé la composition de la plaque pour évaluer indirectement le risque de
rupture. Dans ce travail, nous avons montré que le traitement par NP diminue
significativement l‘accumulation de macrophages et de lymphocytes T dans les plaques des
souris jeunes. Nous n’avons pas étudié les composants stabilisants de la plaque à ce stade car
les plaques débutantes sont faites quasi exclusivement de cellules inflammatoires et de lipides.
L’aspect histologique se rapproche de celui des stries lipidiques que l’on retrouve chez
l’homme, déjà au stade fœtal (45). Chez les souris âgées, où les plaques sont plus organisées,
nous avons montré que le traitement par NP diminue l’accumulation des macrophages et qu’il
induit une augmentation de l’infiltration de cellules musculaires lisses et de l’accumulation de
collagène. De plus, après une coloration au trichrome de Masson nous avons montré que le
traitement par NP induit une diminution des zones acellulaires au sein des plaques, qui
correspondent au noyau nécrotique. Cet élément est important à prendre en compte pour la
qualité de la plaque d’athérosclérose puisque plusieurs travaux chez l’homme ont montré que
la taille du noyau nécrotique est positivement corrélée au risque de rupture (28-30).
Autrement dit, plus le noyau nécrotique est grand, plus le risque de rupture et de thrombose
39
artérielle est élevé. Le traitement par la nucléoprotéine induit donc un phénotype lésionnel
plus stable.
Le virus de la rougeole ayant d’importantes propriétés immuno-modulatrices sur les
lymphocytes T, nous avons analysé le profil des cellules T CD4+ purifiés à partir de la rate. La
rate est un organe lymphoïde important chez l’adulte, il reflète la réponse immunitaire
systémique. De plus, la rate draine le système lymphatique du péritoine, site d’injection de la
nucléoprotéine. Pour explorer les lymphocytes T, nous avons étudié ex vivo leur prolifération
cellulaire et leur production de cytokines. Après stimulation avec un anticorps anti-CD3 et des
cellules dendritiques spléniques purifiées, qui miment la co-stimulation naturelle, les
lymphocytes T CD4+ de souris traitées par NP produisent plus d’IL10 (+30%), une cytokine
anti-athérogène mais moins d’IFN# et moins d’IL-4, deux cytokines respectivement pro- ou
potentiellement pro-athérogènes. Ce profil de sécrétion caractérise l’induction d’une
population Treg de type Tr-1. Cette conclusion est appuyée par le fait que les lymphocytes T
des souris traitées par NP prolifèrent beaucoup moins que les cellules T contrôles. Par contre,
le traitement par NP ne modifie pas la population Treg naturelle. Le pourcentage de
CD4+CD25+ n’est pas différent entre les groupes (données non présentées). In vitro, les Tregs
naturels isolés de souris traitées par NP inhibent autant la prolifération des T pathogènes que
les Tregs de souris contrôles.
Le traitement par NP n’a aucun effet sur les souris déficientes en lymphocytes T
(apoE/RAG2-/-), ce qui suggère que la nucléoprotéine ne modifie l’évolution de
l’athérosclérose qu’en présence de lymphocytes T. Les lymphocytes B, absents également
chez la souris apoE/RAG2-/-, ne semblent pas jouer de rôle dans l’athéro-protection induite
par NP. En effet, les taux d’anticorps anti-LDL oxydés de type IgM, que produisent les
lymphocytes B, bien que discrètement plus élevé dans le groupe de souris « jeunes » traitées
par NP, ne sont pas différents chez les souris « vieilles ». De plus cette augmentation est
minime et ne peut pas expliquer l’effet anti-athérogène majeur de NP.
In vitro, nous avons analysé le profil des cellules dendritiques puisque le virus de la rougeole
a la possibilité de moduler la fonction des cellules présentatrices d’antigènes. Les cellules
dendritiques CD11c+ isolées de souris traitées par NP lorsqu’elles sont mises en culture avec
les lymphocytes T CD4+ des souris contrôles, diminuent la prolifération, augmentent la
production d’IL-10 et diminuent la production d’IL-4 et d’IFN#. Ainsi, les cellules
dendritiques des souris traitées par NP orientent le profil lymphocytaire T vers un phénotype
Tr-1. De plus, in vitro, elles produisent plus d’IL-10, ce qui suggère un phénotype plutôt anti40
inflammatoire, anti-athérogène. Par contre, la modulation fonctionnelle des cellules
dendritiques n’est pas suffisante, à elle seule, pour inhiber l’athérosclérose puisque chez les
souris apoE/RAG2-/-, qui possèdent des cellules dendritiques, le traitement n’a aucun effet sur
la taille des lésions. On peut alors conclure que NP a un effet à la fois sur les lymphocytes T
CD4+ et sur les cellules dendritiques mais que la présence des cellules T CD4+ est
indispensable pour son action anti-athérogène.
Le traitement par NP induit un profil immunitaire systémique de type Tr-1 sans action dirigée
contre un antigène précis, en l’occurrence les LDL oxydés de la plaque d’athérosclérose. Le
risque est d’induire des effets secondaires systémiques. Cependant, chez les animaux traités
par NP, nous n’avons observé ni surmortalité ni infection, suggérant que la modulation
immuno-inflammatoire induite est modérée. Cependant, cet élément est à prendre en
considération surtout chez les patients immunodéprimés. L’immunosuppression marquée qui
est décrite pour le virus de la rougeole passe par la nucléoprotéine NP et aussi par d’autres
mécanismes comme la stimulation en surface du CD46 par l’hémagglutinine H virale (25).
Dans
ce
travail,
nous
avons
injecté
uniquement
la
nucléoprotéine,
et
donc
l’immunosuppression est moindre que ce qui a été observé chez l’homme au décours de
l’infection par le virus entier.
Le traitement par NP empêche le développement des plaques d’athérosclérose. Ce traitement
pourrait être envisagé très tôt au cours de la vie. En effet, les études anatomopathologiques,
menées notamment par de l’équipe de Stary, ont montré que les stries lipidiques, stade initial
de la maladie vasculaire, existent chez environ 50 % des enfants à l’âge de 1 an (52, 53). Ce
traitement pourrait aussi être utilisé chez les patients ayant de nombreux facteurs de risque
cardiovasculaire. Ceci est valable pour le diabète surtout lorsque l’on sait que la mortalité
cardiovasculaire d’un patient diabétique n’ayant aucune maladie cardiaque est aussi élevée
que celle d’un patient ayant déjà fait un infarctus du myocarde (20 % versus 19 % à 7 ans). La
maladie coronaire du diabétique, qui a quelques particularités physiopathologiques, est plus
précoce, plus grave et plus souvent compliquée d’insuffisance cardiaque que la maladie
coronaire des non-diabétiques (24).
Le traitement par NP modifie la composition de la plaque d’athérosclérose et induit un
phénotype lésionnel plus stable. Le traitement pourrait être envisagé chez les patients ayant
des lésions d’athérosclérose soit découverte de façon fortuite sur un examen (échographie
artérielle, tomodensitométrie…) soit symptomatique, découverte au décours d’une
manifestation clinique (AVC, infarctus du myocarde). Le traitement pourrait épaissir la chape
41
fibreuse et limiter in fine soit la survenue soit la récidive d’évènements thrombotiques, cette
dernière étant greffée d’une lourde mortalité (17).
42
X - CONCLUSION
Le traitement de souris apoE-/- par des injections intra-péritonéales répétées d’une
nucléoprotéine recombinante du virus de la rougeole s’accompagne d’une diminution de la
taille des plaques aussi bien au niveau du sinus aortique que de l’aorte thoracique. Cet effet
existe aussi bien lors de l’initiation que lors de la progression des plaques d’athérosclérose.
Le traitement par la nucléoprotéine induit un phénotype lésionnel plus stable quel que soit le
stade de développement des lésions. Les plaques sont moins riches en cellules inflammatoires
(macrophages, lymphocytes T) et plus riches en éléments stabilisant (cellules musculaires
lisses et collagène).
Le traitement par la nucléoprotéine modifie le comportement du couple cellule dendritiquelymphocyte T CD4+ et l’oriente vers un profil anti-inflammatoire, anti-athérogène de type Tr1.
Ce travail ouvre des perspectives intéressantes chez l’homme à la fois en prévention primaire
et en prévention secondaire.
43
XI - REFERENCES
1
AIT-OUFELLA, H, SALOMON, BL, POTTEAUX, S, ROBERTSON, AK, GOURDY,
P, ZOLL, J, et al. Natural regulatory t cells control the development of atherosclerosis in
mice. Nat Med. 2006: 12: 178-80.
2
ATABANI, SF, BYRNES, AA, JAYE, A, KIDD, IM, MAGNUSEN, AF, WHITTLE,
H, et al. Natural measles causes prolonged suppression of interleukin-12 production. J Infect
Dis. 2001: 184: 1-9.
3
BLANKENBERG, S, TIRET, L, BICKEL, C, PEETZ, D, CAMBIEN, F, MEYER, J, et
al. Interleukin-18 is a strong predictor of cardiovascular death in stable and unstable angina.
Circulation. 2002: 106: 24-30.
4
CALIGIURI, G, NICOLETTI, A, POIRIER, B and HANSSON, GK. Protective
immunity against atherosclerosis carried by b cells of hypercholesterolemic mice. J Clin
Invest. 2002: 109: 745-53.
5
CHARO, IF and RANSOHOFF, RM. The many roles of chemokines and chemokine
receptors in inflammation. N Engl J Med. 2006: 354: 610-21.
6
CHARO, IF and TAUBMAN, MB. Chemokines in the pathogenesis of vascular disease.
Circ Res. 2004: 95: 858-66.
7
CUNNINGHAM, KS and GOTLIEB, AI. The role of shear stress in the pathogenesis of
atherosclerosis. Lab Invest. 2005: 85: 9-23.
8
DANSKY, HM, CHARLTON, SA, HARPER, MM and SMITH, JD. T and b
lymphocytes play a minor role in atherosclerotic plaque formation in the apolipoprotein edeficient mouse. Proc Natl Acad Sci U S A. 1997: 94: 4642-6.
9
DAUGHERTY, A, PURE, E, DELFEL-BUTTEIGER, D, CHEN, S, LEFEROVICH, J,
ROSELAAR, SE, et al. The effects of total lymphocyte deficiency on the extent of
atherosclerosis in apolipoprotein e-/- mice. J Clin Invest. 1997: 100: 1575-80.
10 DAVENPORT, P and TIPPING, PG. The role of interleukin-4 and interleukin-12 in the
progression of atherosclerosis in apolipoprotein e-deficient mice. Am J Pathol. 2003: 163:
1117-25.
11 FREIGANG, S, HORKKO, S, MILLER, E, WITZTUM, JL and PALINSKI, W.
Immunization of ldl receptor-deficient mice with homologous malondialdehyde-modified and
native ldl reduces progression of atherosclerosis by mechanisms other than induction of high
titers of antibodies to oxidative neoepitopes. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 1998: 18: 197282.
12 GEORGE, J, AFEK, A, GILBURD, B, LEVKOVITZ, H, SHAISH, A, GOLDBERG, I,
et al. Hyperimmunization of apo-e-deficient mice with homologous malondialdehyde lowdensity lipoprotein suppresses early atherogenesis. Atherosclerosis. 1998: 138: 147-52.
13 GOJOVA, A, BRUN, V, ESPOSITO, B, COTTREZ, F, GOURDY, P, ARDOUIN, P, et
al. Specific abrogation of transforming growth factor-beta signaling in t cells alters
atherosclerotic lesion size and composition in mice. Blood. 2003: 102: 4052-8.
14 GRIFFIN, DE, WARD, BJ and ESOLEN, LM. Pathogenesis of measles virus infection:
An hypothesis for altered immune responses. J Infect Dis. 1994: 170 Suppl 1: S24-31.
15 GROUX, H, O'GARRA, A, BIGLER, M, ROULEAU, M, ANTONENKO, S, DE
VRIES, JE, et al. A cd4+ t-cell subset inhibits antigen-specific t-cell responses and prevents
colitis. Nature. 1997: 389: 737-42.
16 GUPTA, S, PABLO, AM, JIANG, X, WANG, N, TALL, AR and SCHINDLER, C. Ifngamma potentiates atherosclerosis in apoe knock-out mice. J Clin Invest. 1997: 99: 2752-61.
17 HAFFNER, SM. Coronary heart disease in patients with diabetes. N Engl J Med. 2000:
342: 1040-2.
44
18 HAHM, B, CHO, JH and OLDSTONE, MB. Measles virus-dendritic cell interaction via
slam inhibits innate immunity: Selective signaling through tlr4 but not other tlrs mediates
suppression of il-12 synthesis. Virology. 2007: 358: 251-7.
19 HAJRA, L, EVANS, AI, CHEN, M, HYDUK, SJ, COLLINS, T and CYBULSKY, MI.
The nf-kappa b signal transduction pathway in aortic endothelial cells is primed for activation
in regions predisposed to atherosclerotic lesion formation. Proc Natl Acad Sci U S A. 2000:
97: 9052-7.
20 HANSSON, GK. Inflammation, atherosclerosis, and coronary artery disease. N Engl J
Med. 2005: 352: 1685-95.
21 HANSSON, GK and ROBERTSON, AK. Tgf-beta in atherosclerosis. Arterioscler
Thromb Vasc Biol. 2004: 24: E137; author reply E-8.
22 HEESCHEN, C, DIMMELER, S, HAMM, CW, FICHTLSCHERER, S, BOERSMA, E,
SIMOONS, ML, et al. Serum level of the antiinflammatory cytokine interleukin-10 is an
important prognostic determinant in patients with acute coronary syndromes. Circulation.
2003: 107: 2109-14.
23 HIRSCH, RL, GRIFFIN, DE, JOHNSON, RT, COOPER, SJ, LINDO DE SORIANO, I,
ROEDENBECK, S, et al. Cellular immune responses during complicated and uncomplicated
measles virus infections of man. Clin Immunol Immunopathol. 1984: 31: 1-12.
24 HU, FB, STAMPFER, MJ, SOLOMON, CG, LIU, S, WILLETT, WC, SPEIZER, FE,
et al. The impact of diabetes mellitus on mortality from all causes and coronary heart disease
in women: 20 years of follow-up. Arch Intern Med. 2001: 161: 1717-23.
25 KERDILES, YM, SELLIN, CI, DRUELLE, J and HORVAT, B. Immunosuppression
caused by measles virus: Role of viral proteins. Rev Med Virol. 2006: 16: 49-63.
26 KING, VL, SZILVASSY, SJ and DAUGHERTY, A. Interleukin-4 deficiency decreases
atherosclerotic lesion formation in a site-specific manner in female ldl receptor-/- mice.
Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2002: 22: 456-61.
27 KNOFLACH, M, KIECHL, S, MAYR, A, WILLEIT, J, POEWE, W and WICK, G.
Allergic rhinitis, asthma, and atherosclerosis in the bruneck and army studies. Arch Intern
Med. 2005: 165: 2521-6.
28 KOLODGIE, FD, NARULA, J, BURKE, AP, HAIDER, N, FARB, A, HUI-LIANG, Y,
et al. Localization of apoptotic macrophages at the site of plaque rupture in sudden coronary
death. Am J Pathol. 2000: 157: 1259-68.
29 KOLODGIE, FD, NARULA, J, GUILLO, P and VIRMANI, R. Apoptosis in human
atherosclerotic plaques. Apoptosis. 1999: 4: 5-10.
30 KOLODGIE, FD, NARULA, J, HAIDER, N and VIRMANI, R. Apoptosis in
atherosclerosis. Does it contribute to plaque instability? Cardiol Clin. 2001: 19: 127-39, ix.
31 LIN, CY and HSU, HC. Histopathological and immunological studies in spontaneous
remission of nephrotic syndrome after intercurrent measles infection. Nephron. 1986: 42: 1105.
32 MALDONADO-LOPEZ, R, DE SMEDT, T, MICHEL, P, GODFROID, J, PAJAK, B,
HEIRMAN, C, et al. Cd8alpha+ and cd8alpha- subclasses of dendritic cells direct the
development of distinct t helper cells in vivo. J Exp Med. 1999: 189: 587-92.
33 MALLAT, Z, AIT-OUFELLA, H and TEDGUI, A. Regulatory t cell responses:
Potential role in the control of atherosclerosis. Curr Opin Lipidol. 2005: 16: 518-24.
34 MALLAT, Z, BESNARD, S, DURIEZ, M, DELEUZE, V, EMMANUEL, F,
BUREAU, MF, et al. Protective role of interleukin-10 in atherosclerosis. Circ Res. 1999: 85:
e17-24.
35 MALLAT, Z, CORBAZ, A, SCOAZEC, A, BESNARD, S, LESECHE, G,
CHVATCHKO, Y, et al. Expression of interleukin-18 in human atherosclerotic plaques and
relation to plaque instability. Circulation. 2001: 104: 1598-603.
45
36 MALLAT, Z, CORBAZ, A, SCOAZEC, A, GRABER, P, ALOUANI, S, ESPOSITO,
B, et al. Interleukin-18/interleukin-18 binding protein signaling modulates atherosclerotic
lesion development and stability. Circ Res. 2001: 89: E41-5.
37 MALLAT, Z, GOJOVA, A, BRUN, V, ESPOSITO, B, FOURNIER, N, COTTREZ, F,
et al. Induction of a regulatory t cell type 1 response reduces the development of
atherosclerosis in apolipoprotein e-knockout mice. Circulation. 2003: 108: 1232-7.
38 MALLAT, Z, GOJOVA, A, MARCHIOL-FOURNIGAULT, C, ESPOSITO, B,
KAMATE, C, MERVAL, R, et al. Inhibition of transforming growth factor-beta signaling
accelerates atherosclerosis and induces an unstable plaque phenotype in mice. Circ Res. 2001:
89: 930-4.
39 MALLAT, Z, HEYMES, C, OHAN, J, FAGGIN, E, LESECHE, G and TEDGUI, A.
Expression of interleukin-10 in advanced human atherosclerotic plaques: Relation to
inducible nitric oxide synthase expression and cell death. Arterioscler Thromb Vasc Biol.
1999: 19: 611-6.
40 MARIE, JC, KEHREN, J, TRESCOL-BIEMONT, MC, EVLASHEV, A, VALENTIN,
H, WALZER, T, et al. Mechanism of measles virus-induced suppression of inflammatory
immune responses. Immunity. 2001: 14: 69-79.
41 MARON, R, SUKHOVA, G, FARIA, AM, HOFFMANN, E, MACH, F, LIBBY, P, et
al. Mucosal administration of heat shock protein-65 decreases atherosclerosis and
inflammation in aortic arch of low-density lipoprotein receptor-deficient mice. Circulation.
2002: 106: 1708-15.
42 MOR, A, LUBOSHITS, G, PLANER, D, KEREN, G and GEORGE, J. Altered status of
cd4(+)cd25(+) regulatory t cells in patients with acute coronary syndromes. Eur Heart J.
2006: 27: 2530-7.
43 MURRAY, CJ and LOPEZ, AD. Global mortality, disability, and the contribution of
risk factors: Global burden of disease study. Lancet. 1997: 349: 1436-42.
44 NAKASHIMA, Y, PLUMP, AS, RAINES, EW, BRESLOW, JL and ROSS, R. Apoedeficient mice develop lesions of all phases of atherosclerosis throughout the arterial tree.
Arterioscler Thromb. 1994: 14: 133-40.
45 NAPOLI, C, D'ARMIENTO, FP, MANCINI, FP, POSTIGLIONE, A, WITZTUM, JL,
PALUMBO, G, et al. Fatty streak formation occurs in human fetal aortas and is greatly
enhanced by maternal hypercholesterolemia. Intimal accumulation of low density lipoprotein
and its oxidation precede monocyte recruitment into early atherosclerotic lesions. J Clin
Invest. 1997: 100: 2680-90.
46 PALINSKI, W, MILLER, E and WITZTUM, JL. Immunization of low density
lipoprotein (ldl) receptor-deficient rabbits with homologous malondialdehyde-modified ldl
reduces atherogenesis. Proc Natl Acad Sci U S A. 1995: 92: 821-5.
47 POTTEAUX, S, COMBADIERE, C, ESPOSITO, B, LECUREUIL, C, AITOUFELLA, H, MERVAL, R, et al. Role of bone marrow-derived cc-chemokine receptor 5 in
the development of atherosclerosis of low-density lipoprotein receptor knockout mice.
Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2006: 26: 1858-63.
48 ROBERTSON, AK, RUDLING, M, ZHOU, X, GORELIK, L, FLAVELL, RA and
HANSSON, GK. Disruption of tgf-beta signaling in t cells accelerates atherosclerosis. J Clin
Invest. 2003: 112: 1342-50.
49 SAKAGUCHI, S, ONO, M, SETOGUCHI, R, YAGI, H, HORI, S, FEHERVARI, Z, et
al. Foxp3+ cd25+ cd4+ natural regulatory t cells in dominant self-tolerance and autoimmune
disease. Immunol Rev. 2006: 212: 8-27.
50 SAKAGUCHI, S and SAKAGUCHI, N. Regulatory t cells in immunologic selftolerance and autoimmune disease. Int Rev Immunol. 2005: 24: 211-26.
46
51 SMITH, JD, TROGAN, E, GINSBERG, M, GRIGAUX, C, TIAN, J and MIYATA, M.
Decreased atherosclerosis in mice deficient in both macrophage colony-stimulating factor
(op) and apolipoprotein e. Proc Natl Acad Sci U S A. 1995: 92: 8264-8.
52 STARY, HC. Changes in components and structure of atherosclerotic lesions
developing from childhood to middle age in coronary arteries. Basic Res Cardiol. 1994: 89
Suppl 1: 17-32.
53 STARY, HC, CHANDLER, AB, GLAGOV, S, GUYTON, JR, INSULL, W, JR.,
ROSENFELD, ME, et al. A definition of initial, fatty streak, and intermediate lesions of
atherosclerosis. A report from the committee on vascular lesions of the council on
arteriosclerosis, american heart association. Arterioscler Thromb. 1994: 14: 840-56.
54 TAMASHIRO, VG, PEREZ, HH and GRIFFIN, DE. Prospective study of the
magnitude and duration of changes in tuberculin reactivity during uncomplicated and
complicated measles. Pediatr Infect Dis J. 1987: 6: 451-4.
55 TEDGUI, A and MALLAT, Z. Cytokines in atherosclerosis: Pathogenic and regulatory
pathways. Physiol Rev. 2006: 86: 515-81.
56 TOURNOY, KG, PROVOOST, S, VAN HOVE, C and JOOS, G. The role of immune
tolerance in asthma pathogenesis. Curr Allergy Asthma Rep. 2006: 6: 437-43.
57 VAN EXEL, E, GUSSEKLOO, J, DE CRAEN, AJ, BOOTSMA-VAN DER WIEL, A,
FROLICH, M and WESTENDORP, RG. Inflammation and stroke: The leiden 85-plus study.
Stroke. 2002: 33: 1135-8.
58 VON BOEHMER, H. Mechanisms of suppression by suppressor t cells. Nat Immunol.
2005: 6: 338-44.
59 WEINER, HL. Induction and mechanism of action of transforming growth factor-betasecreting th3 regulatory cells. Immunol Rev. 2001: 182: 207-14.
60 WHITMAN, SC, RAVISANKAR, P and DAUGHERTY, A. Interleukin-18 enhances
atherosclerosis in apolipoprotein e(-/-) mice through release of interferon-gamma. Circ Res.
2002: 90: E34-8.
61 ZHOU, X, NICOLETTI, A, ELHAGE, R and HANSSON, GK. Transfer of cd4(+) t
cells aggravates atherosclerosis in immunodeficient apolipoprotein e knockout mice.
Circulation. 2000: 102: 2919-22.
47
ANNEE : 2007
NOM ET PRENOM DE L’AUTEUR : AIT-OUFELLA Hafid
PRESIDENT DE THESE : Pr Georges OFFENSTADT
DIRECTEUR DE THESE : Dr Ziad MALLAT
TITRE DE LA THESE : Immunomodulation lymphocytaire de l’athérosclérose expérimentale par la
nucléoprotéine du virus de la rougeole
L’athérosclérose est une maladie inflammatoire des gros vaisseaux à localisation intimale. L’inflammation et
l’immunité dépendante des lymphocytes T favorisent la progression et la déstabilisation des lésions
vasculaires, ce qui suggère qu’une modulation de la réponse lymphocytaire pourrait protéger contre
l’athérosclérose. Chez l’homme, l’infection par le virus de la rougeole provoque une immunosuppression liée
en partie aux propriétés de la nucléoprotéine NP. Chez la souris, la nucléoprotéine NP diminue la réaction
d’hypersensibilité cutanée et inhibe la prolifération lymphocytaire. Nous avons émis l’hypothèse que
l’administration répétée de cette nucléoprotéine NP chez la souris pouvait modifier l’évolution de
l’athérosclérose grâce à ses propriétés immunomodulatrices.
Dans un modèle permettant l’étude du développement initial de l’athérosclérose, chez les souris apoE-/« jeunes », les injections de NP induisent une diminution de 50% de la taille des plaques au niveau du sinus
aortique (p<0,05) ; dans un modèle de progression des lésions chez les souris apoE-/- « vieilles », les
injections de NP s’accompagnent d’une diminution significative de 86 % de la progression des lésions au
niveau du sinus aortique et d’une diminution de 60 % au niveau de l’aorte thoracique (p<0,05). De plus, le
traitement par NP induit un phénotype lésionnel plus stable avec une infiltration moindre de macrophages et
dans les plaques avancées une accumulation plus marquée de collagène et de cellules musculaires lisses. Le
traitement par NP diminue la prolifération des lymphocytes CD4+, leur production d’IFN# et d’IL-4 tout en
augmentant leur production d’IL-10 en comparaison avec les lymphocytes du groupe placebo. L’induction
lymphocytaire de ce phénotype Tr-1 est requise pour la protection contre l’athérosclérose puisque la maladie
n’est pas affectée par NP chez les souris apoE/RAG2-/-, déficientes en lymphocytes.
MOTS-CLES :
- nucléoprotéine,
- athérosclérose,
- immunologie,
- lymphocytes T CD4+,
- souris
ADRESSE DE l’UFR : 8, rue du Général Sarrail - 94010 CRETEIL
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