Transformation - Transfection – Ciblage I. Transfert de l’ADN à cloner dans la cellule hôte La plupart des cellules ne sont pas naturellement aptes à capter de l’ADN étranger : nécessité de perturber la membrane pour permettre la capture - Pour de l’ADN non phagique : o Si la cellule hôte est une bactérie, on parle de transformation bactérienne o Si la cellule hôte est une cellule eucaryote, on parle de transfection - Lorsque l’on utilise des phages ou des virus, on parle d’infection A) Techniques de transformation - 1) Agents chimiques CaCl2 PEG (polyethylène glycol) + DMSO Agents chaotropes ↘ → + choc thermique 2) Electroporation Les bactéries sont exposées à des champs électriques intenses Perméabilisation de la membrane, utilisée pour des bactéries difficiles à transformer ; bonne efficacité Remarque sur la transformation d’E. coli : - Une petite proportion de cellules devient compétentes 1 : 10 000 molécules d’ADN circulaires sont captées par la cellule 1 : 100 000 molécules d’ADN linéaires sont captées Des plasmides supérieurs à 10kb entrent difficilement dans la cellule B) Infection phagique de bactéries - Les phages infectent naturellement leurs bactéries hôtes avec une bonne efficacité Efficacité 1000 fois supérieure à l’efficacité obtenue avec des composés chimiques Ex : o Transformation de E. coli avec de l’Adn phagique en utilisant CaCl2 : 105 pfu / µg d’ADN o Infection avec le même ADN véhiculé par un phage : 108 pfu / µg d’ADN (pfu = plaque forming unit) C) Transfection des cellules eucaryotes - Méthode au phosphate de calcium Liposomes Electroporation Vecteurs non-viraux : PEI, lipofectamine Microinjection Vecteurs viraux (cf. cours thérapie génique – animaux transgéniques) II. Criblage Exemple d’une transformation bactérienne Vecteur vide + vecteur recombiné (avec insert d’ADN) → Transformation → Obtention de plusieurs types de colonies : - Colonies n’ayant pas incorporé l’ADN (vecteur vide) - Colonies ayant incorporé le vecteur recombiné → seules colonies intéressantes - Colonies n’ayant incorporé aucun vecteur A) Criblage utilisant la résistance aux antibiotiques Exemple du plasmide de clonage pBR322 : Clivage par BamH1 → insertion d’un fragment d’ADN → Transformation Criblage par antibiotiques : - Plateau traité par l’ampiciline → Transfert → Incubation plusieurs heures à 37°C Par différence on trouve avec le plasmide recombiné B) Criblage sur la couleur des colonies blanc / bleu Ex : vecteurs pUC et dérivés Gène lac Z’ : code partie NH2 terminale de la β-galactosidase - Propriété de la β-galactosidase : o Partie N-terminale inactive : codée par lac Z’ (plasmide pUC) o Partie C-terminale inactive : codée par le gène lac ZΔM15 (génome de la cellule hôte) o Association des deux parties active = α-complémentation - Mise en évidence de l’activité β-galactosidase → substrat chromogène X-gal (incolore) → β-galactosidase → produit bleu - Utilisation du système lac Z’ / X-gal : insertion, transformation, étalement des bactéries → colonies bleues (-) et blanches (+) (utilisation d’un substrat chromogène : Xgal → 5-bromo 4-chloro 3-indoyl βD-galactoside) C) Criblage par utilisation d’une sonde marquée radioactive Hybridation sur colonie - Sonde : oligonucléotide simple brin de taille supérieur à 20 nucléotides, marqué, de séquence complémentaire à la séquence recherchée Réalisation d’une copie à l’aide de velours fixé sur un système → Transfert des colonies sur un support de nitrocellulose → Hybridation → Autoradiographie - Origine de la sonde : o Partie du gène même o Orthologue d’une autre espèce o Oligonucleotide synthétique D) Criblage par PCR Principe : - Design d’amorces de part et d’autre de la région de clonage - PCR Migration sur gel d’agarose Détermination de la taille de l’amplimètre Le criblage par PCR peut se faire : - Directement sur des colonies bactériennes prélevées sur la boîte de Pétri et lysées (cf. TP Biotechnologie) Après extraction et purification du plasmide des colonies bactériennes à tester E) Criblage par anticorps (radioactivité ou immunocytochimie) - - Si l’on souhaite tester l’expression de la protéine codée par le gène cloné : o Utilisation d’anticorps spécifiques de la protéine recherchée o Utilisation d’anticorps reconnaissant les étiquettes présentes sur la protéine recombinante Les étapes du criblage par anticorps : o Transformation o Transfert des colonies sur un plateau de réplication, lyse bactérienne pour exposer les protéines o Transfert des protéines sur une feuille de nitrocellulose o Addition d’anticorps radiomarqués spécifiques des protéines d’intérêt o Autoradiographie