Exemple d’exploration l'apoptose cellulaire : le cas de Modifications morphologiques observables par microscopie photonique conventionnelle - condensation du noyau fragmentation du noyau aspect bourgeonnant de la membrane plasmique Modifications morphologiques observables par microscopie électronique : modifications de la membrane plasmique, du noyau (condensation et fragmentation) associées à une rétraction du cytoplasme à l’origine de la diminution de la taille cellulaire (cellules normales en A-D et apoptotiques en B-E-G). La photo C montre des corps apoptotiques en cours de phagocytose par un macrophage. Les photos H illustrent le processus de nécrose se caractérisant principalement par des altérations cytoplasmiques. H G Microscopie à fluorescence : marquage de l’ADN avec de l’Hoescht sur des cellules normales en A et à différents stades d’un processus apoptotique (photos B à D). Observations en microscopie à fluorescence des modifications du cytosquelette au niveau de certains types de filaments. Filaments de cytokératine En A) cellules normales En B) cellules apoptotiques Filaments de vimentine En A) cellules normales En B) cellules apoptotiques A B Exemple de marquage immunohistochimique obtenu sur une coupe de tissu avec un Ac anticaspase-3 activée lors d’un processus apoptotique (photo A) par rapport à des cellules témoins normales (photo B). Dans le cas présent il s’agit d’une réaction immunoenzymatique réalisée avec un substrat chromogène marron. Principe de fonctionnement d’un cytomètre. La CMF est une technique d’analyse de cellules ou particules en suspension dans une gaine liquide permettant de les faire passer une à une à grande vitesse (plusieurs milliers d’évènements par seconde) devant un ou plusieurs faisceaux lasers. Un système optique et informatique sophistiqué permettra l’analyse des propriétés optiques des cellules (diffraction et réflexion lumineuse), ainsi que l’analyse de la fluorescence émise par la fixation de sondes spécifiques (fluorochromes, sondes fluorescentes, anticorps marqués…). A B Les signaux détectés par le système optique sont amplifiés, convertis en signaux électroniques puis en valeurs numériques qui seront analysées grâce à l'unité informatique du cytomètre. L'affichage simultané des paramètres, FSC, SSC traités par le logiciel, visualise chaque cellule sur écran sous forme de point. C'est le cytogramme, nuage de signaux punctiformes qui apparaît (cytogramme A pour des cellules normales et cytogrammes B avec des cellules en apoptose). Exemple d’immunomarquage réalisé en CMF avec un anticorps reconnaissant la caspase-3 activée. Analyse des modifications nucléaires par cytométrie : étude de l’ADN-ploïdie encore appelée pic subG0/G1 apparaissant dans les cellules ayant une faible capacité de marquage de l’ADN, par exemple lors de l’apoptose. Cette approche est depuis considérée comme un marqueur de mort cellulaire par apoptose. Etude de la fragmentation internucléosomale de l’ADN. * photo A : dans cette expérience, de l’ADN a été extrait à partir de cellules cultivées dans 3 conditions différentes (conditions normales, apoptotiques ou nécrotiques). Cet ADN a été ensuite coloré puis soumis à migration sur un gel d’électrophorèse, dans lequel plus les fragments d’ADN sont petits et plus ils migrent rapidement. Dans les conditions normales de culture, l’ADN est entier c’est à dire non fragmenté, tandis que pour des cellules apoptotiques on obtient un profil dit « en barreaux d’échelle » correspondant à la migration de fragments qui sont des multiples de 180-200 paires de bases. Enfin dans le cas d’une mort cellulaire par nécrose, les DNAses mises en jeu fragmentent l’ ADN au hasard ce qui donne toute une série de fragments de taille irrégulière conduisant à cet aspect étalé et régulier du gel. * photo B : illustration du processus de fragmentation internucléosomale de l’ADN au cours de l’apoptose responsable de la génération de fragments d’ADN de 180-200 paires de base. + TdT Fragmentation de l’ADN Addition de dUTP biotinylés aux extrémités 3’OH libres de l’ADN Addition de streptavidine- FITC Principe de la technique TUNEL (pour Tdt-mediated dUTP-biotin Nick End Labeling) : l'utilisation de la Terminal déoxynucléotidyltransférase (Tdt) permet d'ajouter des désoxyribonucléotides (dUTP) aux extrémités 3' OH terminales libres de l'ADN. Un système de révélation est associé à ces nucléotides (par exemple dUTP biotinylés révélés par de la streptavidine-FITC) permettant de localiser les fragments d'ADN. A B . Exemple de cellules témoins en A) sans fragmentation de l’apoptose ou de cellules présentant en B) une apoptose massive avec fragmentation internucléosomale de l’ADN se traduisant par une augmentation très importante du signal fluorescent. A B Etude de la transition de perméabilité mitochondriale. Cellules normales (A) ou en apoptose (B) se caractérisant alors par une chute du potentiel transmembranaire mitochondrial analysée par l’utilisation de la sonde fluorescente DiOC6. Marquage à l’Annexine.V. Marquage à l’IP CELLULES NORMALES CELLULES APOPTOTIQUES CELLULES NECROTIQUES - + + - - + Principe de la technique Annexine.V. permettant d’étudier la modification de la membrane plasmique au cours de l’apoptose avec le phénomène d’externalisation des PS à la membrane externe.