Année 2016-2017 - Demande d’allocation doctorale ED Santé, Sciences Biologiques et Chimie du Vivant (SSBCV) n°549 1. Informations administratives : Nom de l’encadrant responsable de la thèse : Caroline Denesvre Unité : UMR ISP 1282 Equipe (si unité multi-équipes): Biologie des Virus Aviaires (BioVA) Email de l’encadrant : [email protected] Co-encadrant éventuel : David Pasdeloup 2. Titre de la thèse : Caractérisation de l’interface hôte-pathogène responsable de l’excrétion d’un herpèsvirus aviaire 3. Résumé : Contexte Scientifique. La maladie de Marek est une maladie hautement contagieuse de la poule due à un alphaherpesvirus, du genre mardivirus, le virus de la maladie de Marek (MDV) à l'origine d'une immunosuppression transitoire et de lymphomes T mortels. Les vaccins actuels contrôlent bien la formation des lymphomes mais pas l'infection et l'excrétion virale à partir de l’épithélium des follicules plumeux (EFP). Or depuis 40 ans que la vaccination est pratiquée en élevage, on voit apparaître des souches de plus en plus virulentes. La circulation silencieuse de virus pathogènes est considérée comme un facteur essentiel à l'accroissement de virulence. Objectifs. Ce projet vise à identifier et caractériser la spécificité cellulaire et moléculaire de l’excrétion de particules virales infectieuses au niveau de l’EFP, site unique de l’excrétion virale. A ce jour, il n’est pas possible d’obtenir de virus extracellulaire à partir de culture cellulaire. Par conséquent, les vaccins actuellement disponibles sont des vaccins vivants composés de cellules infectées. Ils sont coûteux à produire et difficiles à conserver. Une fois que les facteurs cellulaires spécifiques de l’EFP permettant l’excrétion virale seront identifiés, nous envisageons de développer une lignée cellulaire permettant la production de vaccins constitués de particules virales infectieuses libres ou associées aux lysats cellulaires. Ces vaccins alors lyophilisables seraient à la fois plus économiques à produire et auraient une meilleure innocuité. Méthodologie. La base moléculaire de la permissivité cellulaire à l’excrétion du MDV sous forme extracellulaire est totalement inconnue. Nous posons l’hypothèse qu’elle repose sur l’interaction de protéines virales importantes dans l’assemblage avec une ou plusieurs protéines cellulaires spécifiquement présentes dans l’EFP. Sur la base de données publiées pour le virus de la Varicelle et du Zona (VZV), un herpèsvirus humain biologiquement proche de MDV également excrété au niveau de la peau, nous avons choisi plusieurs protéines virales (pUL47, pUL48 et pUL51) pouvant être impliquées dans le tropisme de MDV pour la peau et la transmission entre oiseaux. L’étude du tropisme in vitro et in vivo de virus invalidés pour ces trois gènes est en cours au laboratoire. Durant cette thèse, l’étudiant(e) devra valider et caractériser fonctionnellement une ou plusieurs interactions entre les protéines pUL47, pUL48 ou pUL51 et leurs partenaires cellulaires respectifs préalablement identifiés au laboratoire par crible double-hybride en levures. Partie 1 : Validation des interactions préalablement identifiées > Test des interactions par co-immunoprécipitation en cellules de poule transfectées et/ou infectées > Identification des domaines d’interaction sur les deux partenaires (viral et cellulaire) Partie 2 : Caractérisation fonctionnelle des interactions identifiées > Invalidation des partenaires cellulaires identifiés (shRNA, CRISPR/Cas9) dans les types cellulaires d’intérêt (cellules primaires de peau de poulet, kératinocytes aviaires) et évaluation de l’impact sur la multiplication virale. > Surexpression des partenaires cellulaires identifiés (expression transitoire ou stable) et mesure de l’impact sur la multiplication et l’excrétion virales > Construction de virus mutants invalidés pour les interactions avec les partenaires cellulaires identifiés et caractérisation de la croissance et du tropisme de ces virus en cellules relevantes (voir ci-dessus). Faisabilité : Le présent projet repose sur la possibilité d’obtenir des partenaires cellulaires pertinents par la méthode de double-hybride en levures. Cette méthode est maintenant maîtrisée au laboratoire. De plus, les banques d’expression des tissus d’intérêt sont prêtes et les premiers cribles ont commencé. Un étudiant de M2 validera les interactions positives, éliminera les faux-négatifs et entamera la validation en cellules le cas échéant. La variété des banques d’expression (Thymus, Bourse de Fabricius, pulpe de plumes, épithélium plumeux) conjuguée à la variété des cibles virales pouvant être testées (UL47, UL48, UL51), rend improbable la possibilité de n’obtenir aucun partenaire cellulaire. Toutefois, dans l'hypothèse où aucun partenaire cellulaire ne serait validé par double-hybride d’ici à Octobre 2017, nous aurons recours à une méthode alternative : la co-purification de partenaires cellulaires avec nos cibles virales in vitro (culture de cellules) ou in vivo (après infection expérimentale) par une approche biochimique. Les virus recombinants codant pour nos cibles virales avec une étiquette de purification (TAP) sont déjà disponibles au laboratoire (UL47TAP, UL48TAP), ainsi que le virus-contrôle correspondant (TK_TAP). Pour l’approche in vitro, les types cellulaires d’intérêt (kératinocytes différenciés disponibles au laboratoire, cellules primaires de peau de poule, lymphocytes) seront infectés par ces virus recombinants. L’étiquette TAP permettra leur purification à partir de lysats cellulaires, ainsi que la co-purification des partenaires cellulaires associés qui seront identifiés par spectrométrie de masse (plateforme PAIB2 sur le site INRA). Pour l’approche in vivo, nous purifierons les complexes protéiques à partir de la pulpe de plumes de poulets infectés expérimentalement. 4. Résumé en anglais : Characterization of the host-pathogen interactions involved in the shedding of an avian herpesvirus Marek's disease is a highly contagious disease of chickens caused by an alphaherpesvirus: Marek's disease virus (MDV). This disease is associated with lethal T-cell lymphoma. The current live vaccines efficiently control lymphoma formation but not infection nor shedding from the feather follicles. Despite forty years of vaccination, new strains with increasing virulence have emerged. The silent circulation of pathogenic MDV appears to be an essential factor of virulence. The objective of this thesis is to identify viral and cellular determinants favoring or controlling the replication and shedding of MDV in the skin. The results of this thesis should contribute to the development of new vaccines as well as new strategies to block the excretion of pathogenic viruses into the environment.