manuel de prelevement

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Laboratoire de Biologie Clinique
CHU Dinant Godinne
Avenue Dr Thérasse, 1
B-5530 YVOIR
MANUEL DE PRELEVEMENT
QUPRANAN20
Version
Type de texte
Date de validation
05
Document de référence Date de mise en application
Auteur
Vérificateur
Approbateur
BAUDE Cédric
GALANTI Laurence
GALANTI Laurence
Versions
01
02
03
04
05
Modification
Création
Révision
Mise à jour
Révision annuelle
Révision annuelle
Affectations
Pré-analytique
Distribution
La liste de distribution est disponible sous SAPA ou ci-dessous
Nom – prénom
MANUEL DE PRELEVEMENT
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Visas
CEB
LAU
LAU
Validé
Oui
Oui
Oui
Oui
Oui
Date de lecture
Imprimé le 20/10/2015
19/10/2015
19/10/2015
Dates
19/10/2015
19/10/2015
19/10/2015
Date version(s)
08/10/2010
10/02/2012
15/03/2012
05/02/2013
19/10/2015
Signature
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Manuel de prélèvement
Laboratoire du CHU Dinant Godinne
Laboratoire de Biologie Clinique
CHU Dinant Godinne
Avenue Dr Thérasse, 1
B-5530 YVOIR
Table des matières
1
OBJET ....................................................................................................................................................... 3
2
TERMES ET DEFINITIONS ...................................................................................................................... 3
3
PRESENTATION DU LABORATOIRE ..................................................................................................... 3
3.1
MISSION ............................................................................................................................................... 3
3.2
ORGANISATION ..................................................................................................................................... 4
3.2.1
Site de Godinne .......................................................................................................................... 4
3.2.2
Site de Dinant ............................................................................................................................. 6
3.2.3
Heures d'ouvertures et disponibilité du laboratoire .................................................................... 8
3.2.4
Horaires de prélèvements au laboratoire ................................................................................... 8
3.2.5
Responsables: .......................................................................................................................... 10
4
PRÉLÈVEMENT ...................................................................................................................................... 11
4.1
LA DEMANDE D’ANALYSE...................................................................................................................... 11
4.1.1
Prescription ............................................................................................................................... 11
4.1.2
Prescription médicale informatisée (PMI) ................................................................................. 11
4.1.3
Bons de demande sous forme papier....................................................................................... 11
4.2
LE PRÉLÈVEMENT................................................................................................................................ 12
4.2.1
Prise de sang ............................................................................................................................ 12
4.2.2
Urines ....................................................................................................................................... 13
4.2.3
Moelle ....................................................................................................................................... 14
4.2.4
Prélèvement à visée microbiologique ....................................................................................... 14
5
TRANSPORT DES ÉCHANTILLONS ET DE LA DEMANDE ................................................................ 23
5.1
TRANSPORT DES ÉCHANTILLONS .......................................................................................................... 23
5.1.1
Au sein du CHU ........................................................................................................................ 23
5.1.2
Du site de Dinant ou de l’extérieurs vers le site Godinne......................................................... 23
5.2
RÉCEPTION AU LABORATOIRE .............................................................................................................. 23
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1 Objet
Ce manuel est destiné à tous les prescripteurs et aux préleveurs travaillant avec le CHU Dinant
Godinne. Il contient les instructions relatives au prélèvement, à la conservation et au transport des
échantillons destinés au laboratoire du CHU. Il a pour objectif de fournir des informations précises
concernant les processus pré-analytiques afin d’obtenir les prélèvements dans des conditions
optimales pour la réalisation des analyses.
2 Termes et définitions
Prélèvement (échantillon) :
Matériel humain destiné à l’examen biologique par le laboratoire (sang, urines, fèces, pus, liquide,
frottis, tissu, organe…)
Demande d’analyse :
Document reprenant les informations administratives concernant le patient et le prescripteur ainsi que
les analyses demandées par ce dernier. La demande d’analyse est déposée ou transmise (voie
électronique) au laboratoire avec le(s) prélèvement(s) associé(s)
3 Présentation du laboratoire
3.1
Mission
Le laboratoire a pour mission de répondre à la demande de prescripteurs (cliniciens, sociétés
pharmaceutiques, assurances, caisses d’assurance maladie, organismes de soins, …).
Le laboratoire est décrit sur le site Internet du CHU Dinant Godinne (http://www.uclmontgodinne.be/);
ses activités sont également reprises sur le site intranet du CHU.
Les missions principales du laboratoire sont l’accueil des patients ambulants et le prélèvement des
milieux biologiques, la réception, le traitement et la gestion de toutes les demandes d’analyses et des
échantillons biologiques, la réalisation des analyses demandées, la gestion des résultats, et le conseil
aux prescripteurs.
Les activités du laboratoire sont réalisées sur deux sites : le site de Godinne (site principal) pour
l’ensemble des activités et le site de Dinant (site de proximité) pour une activité d’urgence.
Les prestations du laboratoire d’analyses de biologie médicale, incluant interprétation et conseil, sont
conçues pour répondre aux besoins des patients et de l’ensemble du personnel médical chargé des
soins prodigués aux patients. Elles concernent les différents domaines de la nomenclature des soins
de santé : biochimie, hématologie, hémostase, hormonologie, immunohématologie, microbiologie,
sérologie. Certaines analyses non reprises dans la nomenclature sont réalisées par le laboratoire afin
d’aider plus efficacement les cliniciens dans leurs investigations biologiques et peuvent être facturées
aux patients.
Le laboratoire est divisé en différents secteurs : chimie, hématologie, microbiologie, immunohématologie, ayant chacun leurs activités propres et bénéficiant d'un secteur logistique commun pour
diverses tâches (administratives, de secrétariat, d’approvisionnement, activité de prélèvement, tâches
pré-analytiques et de laverie).
L’activité principale du laboratoire consiste en la prise en charge d'analyses demandées pour les
patients hospitalisés, ambulants et extérieurs à l'institution. Cette prise en charge, comprenant la
réalisation des analyses de biologie médicale, la validation, l’interprétation et la transmission des
résultats et la prestation de conseils, s’effectue dans le respect de la norme ISO15189 - 2012.
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Le laboratoire supervise les activités de transport des échantillons biologiques sous-traités assurées
par des chauffeurs faisant partie des services techniques du CHU et s’assure de la qualité de ce
transport.
Le laboratoire assure en qualité de service universitaire une mission d’enseignement et accueille des
assistants et stagiaires en formation soumis au respect des mêmes règles de qualité que l’ensemble
du personnel.
3.2
Organisation
Le laboratoire fait partie du CHU Dinant Godinne, représenté par :
Pr Meunier B. – Administrateur-délégué
Pr De Coster P. – Directeur général
Numéro d’agrément du laboratoire : 91605 (Site Godinne) et 91607 (Site Dinant)
Numéro de certificat d'accréditation BELAC : 431-MED
Des informations pratiques peuvent être trouvées sur le site Internet du CHU Mont-Godinne
(http://www.uclmontgodinne.be) ainsi que, en interne, sur le site intranet des Cliniques.
Pour toute information, le secrétariat du laboratoire peut être contacté au contact center :
081 42 32 12.
3.2.1
Site de Godinne
Adresse : Avenue du Docteur Gaston Thérasse, 1 - 5530 Yvoir
Plan d’accès :
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Localisation géographique au sein du site de Godinne :
Le laboratoire est situé au rez-de-chaussée du CHU (route 19), à proximité de la radiologie, des
2
urgences, des soins intensifs et du bloc opératoire. Sa surface est de 1000m et il est composé de
différents locaux: administratifs, médicaux, techniques et de stockage. (Voir plan fonctionnel du
laboratoire [QUMAQAN 01])
Laboratoire
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3.2.2
Site de Dinant
Saint Vincent (Centre hospitalier)
Adresse : Rue Saint Jacques, 501 - 5500 Dinant
Localisation géographique du laboratoire au sein du site St Vincent :
Le laboratoire est situé au niveau -1 du site St Vincent, à proximité des urgences et des soins
intensifs.
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Sainte Anne (Site de prélèvement) :
Adresse : Rue Pont d'Amour, 50 - 5500 Dinant
Plan d’accès :
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Polyclinique de Ciney (Sainte Marie) :
Adresse : Avenue Schlogel, 90 - 5590 Ciney
3.2.3
Heures d'ouvertures et disponibilité du laboratoire
Sur le site de Godinne, les analyses de routine sont effectuées tous les jours ouvrables de 08H00 à
17H00. Les analyses nécessitant une réalisation rapide d’un point de vue analytique ou demandées
en urgence sont effectuées 7 jours sur 7, 24 H sur 24. En dehors des heures ouvrables, les analyses
sont effectuées par un technologue de garde sur place, encadré des superviseurs techniques
sectoriels et sous la responsabilité et la supervision d’un biologiste de garde, appelables par
téléphone.
Sur le site du laboratoire de Dinant, seules les analyses urgentes du centre hospitalier de Dinant et
des médecins traitants sont effectuées 7 jours sur 7, 24 H sur 24.
3.2.4
Horaires de prélèvements au laboratoire
Les prélèvements sont réalisés :
Sur le site de Godinne : au laboratoire (route 19) du lundi au vendredi de 08h00 à 18h00. Une garde
est disponible le samedi de 10h00 à 12h00. Le service prélèvement est fermé le dimanche et les jours
fériés.
Sur le site de Dinant :
- A Ste Anne Hôpital, les prélèvements sont réalisés de 8H00 à 12H00 du lundi au samedi inclus.
- À l’hôpital de jour du CHU Dinant (site St Vincent), les prélèvements sont réalisés du lundi au
vendredi de 08H00 à 18H30
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Contact :
Site de Godinne :
Les différents secteurs du laboratoire sont accessibles par téléphone. Pour un appel venant de
l'extérieur, il faut faire précéder l'extension de 081 42 xx xx.
Tel
Contact Center ...............................................................3212
Secrétariat ......................................................................3200
Fax........................................................................3204
Urgences (résultats en garde) ........................................3210
Prélèvements (rendez-vous) ..........................................3205
Chimie.............................................................................3216
Assistant/Chef technicien chimie .........................3222
Hématologie....................................................................3217
Assistant hématologie .........................................3202
Immuno-hématologie
Laboratoire ...........................................................3230
Biologie moléculaire/HLA .....................................3218
Bactériologie ...................................................................3213
Assistant microbiologie .........................................3213
Biologie moléculaire/CNR ....................................3206
Email Godinne : [email protected]
Site de Dinant :
Laboratoire .................................................... 082 21 28 82
Banque de sang ............................................ 082 21 28 76
Email Dinant : [email protected]
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3.2.5
Responsables:
Pr B. Meunier
Administrateur Délégué
Tel : 081 42 30 79
[email protected]
Dr. D. Huang
Biologiste Microbiologie
Godinne
Tel : 081 42 32 11
[email protected]
Pr P. De Coster
Directeur général
Tel : 081 42 30 01
Fax : 081 42 30 02
[email protected]
Mr P. Bogaerts
Responsable Biologie moléculaire
Godinne
Tel : 081 42 32 41
[email protected]
Ph V. Lachapelle
Coordinateur du Département Pharmacie & Laboratoire
Tél: +32 81 42 30 36
Tél secr : +32 81 42 33 28
[email protected]
Pr Y. Glupczynski
Directeur du Laboratoire et Biologiste Microbiologie
Godinne
Tel : 081 42 32 45
Fax : 081 42 32 46
[email protected]
Pr L. Galanti
Biologiste Chimie et Responsable Qualité
Godinne
Tel : 081 42 32 40
[email protected]
Ph. B. B. Chatelain
Biologiste Hématologie
Godinne
Tel : 081 42 32 43
[email protected]
Ph. B. F Mullier
Biologiste Hématologie
Godinne
Tel : 081 42 49 86
franç[email protected]
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Pr V. Deneys
Biologiste Immuno-hématologie
Chef de l’Etablissement de transfusion sanguine
Godinne
Tel : 081 42 32 42
[email protected]
Dr. B. Dessomme
Médecin Immuno-hématologie
Tel : 082 21 28 34
[email protected]
Dr N. Fonteyn
Biologiste
Dinant
Tel : 082 21 23 57 ou 081 42 32 50
[email protected]
Mr C. Baude
Coordinateur qualité
Godinne
Tel : 081 42 32 14
[email protected]
Mme S. Chiarizia
Coordinateur qualité
CMSE - Godinne
Tel : 081 42 32 14
[email protected]
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4 Prélèvement
4.1
4.1.1
La demande d’analyse
Prescription
Tout prélèvement à destination du laboratoire doit être accompagné d’une prescription médicale (sous
forme d’une demande d’analyse) émanant d’un médecin prescripteur. Celle-ci peut être transmise au
laboratoire sous forme écrite, de manière préférentielle sur les bons de demande émis par le
laboratoire ou sous forme électronique. Dans certains cas, il est possible d’ajouter une analyse par
contact téléphonique direct avec le laboratoire.
La prescription doit indiquer au minimum :
- l’identité du prescripteur (nom, prénom, numéro d'identification et en interne son service),
- l'identification du patient : nom (de jeune fille), prénom, sexe et date de naissance,
- la nature du spécimen (liquide de ponction, LCR …) quand il ne s’agit pas de sang
- la date du prélèvement (voire l’heure si cela se justifie),
- les renseignements cliniques y compris les traitements éventuels pouvant influencer le résultat de
l’analyse demandée ou son interprétation.
La prescription contient généralement une liste positive des diverses analyses demandées, voire dans
certains cas la demande de mise au point biologique d'un syndrome déterminé ou le type d'examen
souhaité devant un tableau clinique donné. Dans ce cas, les analyses à exécuter sont définies par le
biologiste après concertation éventuelle avec le prescripteur.
Les analyses sont reprises sur des bons de demande disponibles sur le site intranet du CHU site
Godinne. Le site internet du CHU permet la visualisation de la liste des analyses. Il est également
possible de contacter le contact center pour toute information.
4.1.2
Prescription médicale informatisée (PMI)
La PMI est mise à la disposition des prescripteurs hospitaliers via le logiciel de gestion des dossiers
patients. Ce type de prescription est d’application, sur le site de Godinne, pour les patients
hospitalisés, de l’hôpital de jour et certaines consultations.
4.1.3
Bons de demande sous forme papier
Les bons de demande sous forme papier sont mis à la disposition des prescripteurs n’ayant pas accès
à la PMI. Ces demandes reprennent les informations administratives du patient et du prescripteur ainsi
que les éléments nécessaires à la bonne exécution du travail (type de prélèvement pour chaque
analyse, spécifications de prélèvement et de transport éventuelles…).
Des bons de demande d'analyses différents sont prévus pour les demandes :
QUPRANFO 05
QUPRANFO 09
QUPRANFO 10
QUPRANFO 11
QUPRANFO 12
QUPRANFO 13
QUPRANFO 18
QUPRANFO 20
QUPRANFO 22
QUPRANFO 25
QUPRANFO 30
QUPRANFO 35
QUPRANFO 40
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Urgent
Extérieur site Dinant
Hématologie / Biochimie
Liquides
Routine site Dinant
Cytométrie en flux
Toxicologie et allergies
Microbiologie
Helicobacter
Biologie moléculaire
Etude clinique
LBA
Envois
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Ces bons de demande font office de contrat entre le laboratoire et le prescripteur. Ils contiennent les
informations requises pour la collecte et l'exécution adéquate des analyses demandées.
L’impression de ces bons est prise en charge par le Service Achat du CHU Godinne ou Dinant qui
assure leur distribution aux différentes unités de soins et services prescripteurs sur les différents sites.
Le laboratoire informe les prescripteurs de toute modification par un message sur l’intranet du CHU.
Le bon de demande peut parfois être imprimé à partir du dossier du patient.
4.2
Le prélèvement
Le prélèvement peut être réalisé directement au laboratoire, dans les unités de soins ou hôpital de
jour (pour les patients hospitalisés ou ambulants), ainsi qu’à l’extérieur du CHU (autres institutions,
médecins traitants…)
Tout échantillon doit être identifié par le nom, prénom et date de naissance du patient.
En cas de malaise du patient, le préleveur évalue la gravité du malaise. Il exécute les premières
mesures nécessaires (installation confortable, relever les jambes, lui donner une boisson sucrée,…) et
contacte si besoin le service d’intervention urgente institutionnel (n° de téléphone disponibles dans le
local de prélèvement).
La qualité du prélèvement conditionne la qualité des résultats.
Il est important pour la qualité du travail de laboratoire de respecter le type et le nombre de
tubes de prélèvement requis pour les analyses demandées en se basant sur les indications
reprises sur les bons de demande d’analyses (colonne associée aux différentes analyses).
4.2.1
Prise de sang
Le patient doit en général être en position couchée ou assise.
Il est préférable d’utiliser un garrot automatique dont la pression est plus limitée et qui pourra être
relâché partiellement du bout des doigts. L’usage du brassard d’un tensiomètre gonflé entre la
pression artérielle minima et maxima du patient, peut également convenir. Un garrot adapté à la
pédiatrie est conseillé pour les prélèvements chez les enfants.
Le garrot doit être posé à  10 cm au-dessus du pli du coude.
Mode opératoire :
1.
Contrôle positif de l’identité et installation du patient
2.
Analyse de la demande et des informations cliniques éventuelles
3.
Préparation du matériel (tubes, aiguille, tampons, désinfectant, …). Prélèvement à l’aiguille
sauf en cas de prélèvement difficile (personnes âgées, enfants) où l’usage du papillon est
toléré.
4.
Choisir le site de prélèvement, le désinfecter et placer le garrot, le patient ayant la main
fermée.
5.
Introduire l’aiguille d’un geste sec et contrôlé, dans un angle de 15° à 30° et selon l’axe
longitudinal de la veine au plus tard 1 minute après la pose du garrot.
6.
Changer de bras s’il faut repiquer.
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7.
Prélever les tubes dans l’ordre approprié, en s’assurant du remplissage correct :
a. Hémoculture éventuelle
b. BLANC (sec sans additifs)
c.
BLEU (citrate / CTAD)
d. ROUGE (sec sans gel)
e. ROUGE (sec avec gel)
f.
VERT (héparine)
g. MAUVE (EDTA)
h. GRIS (fluorure de sodium)
Remarque : Si un tube bleu doit être prélevé, une amorce doit impérativement être prélevée
avant le tube bleu pour les bilans d'hémostase, ils ont une coiffe blanche avec pastille noire.
Ils ne contiennent pas d'activateur de la coagulation et doivent être utilisés en priorité (avant
tout autre tube principalement avant le tube bleu). Cette amorce doit être envoyée au
laboratoire avec le tube bleu.
er
8.
Relâcher la pression du garrot dès le remplissage du 1 tube mais sans le détacher.
9.
Incliner le tube vers le bas en cas de reflux sanguin pour éviter le contact du sang avec le
bouchon et l’aiguille.
10. Retirer le dernier tube avant l’aiguille, détacher le garrot et retirer l’aiguille, main ouverte du
patient, sans presser sur l’aiguille.
11. Maintenir une compresse sur le site de ponction avec une pression sur la veine bras tendu et
mettre un pansement.
12. S’assurer de l’absence de complications liées au prélèvement.
13. Vérifier la conformité des tubes prélevés et les mélanger 5 à 10 fois calmement par
retournement au plus tard 2 minutes après le prélèvement.
14. Identifier les tubes par le nom, prénom et date de naissance du patient.
15. Envoyer rapidement les échantillons prélevés en respectant les spécificités de demande du
laboratoire.
Remarque :
-
Respecter le niveau de remplissage pour permettre une réaction optimale de l’additif.
Pour les prélèvements réalisés via un cathéter veineux, il faut s’assurer d’un rinçage préalable de
la tubulure avec un volume adapté à la longueur de celle-ci.
En cas d’utilisation d’étiquettes sur les tubes, veiller à laisser une portion vierge afin de permettre
la visualisation du contenu.
Le non-respect des recommandations de prélèvement peut entraîner une hémolyse qui affecte le
résultat d’un certain nombre de paramètres biologiques.
Pour un bilan d’hémostase contacter le laboratoire d’hématologie.
Bien respecter le type et le nombre de tubes nécessaires à la réalisation des analyses
demandées
4.2.2
Urines
a) Pour un prélèvement usuel, un échantillon d’urine sera demandé au patient dans un flacon à urine
non stérile (200ml) convenablement identifié avec le nom et prénom du patient ainsi que sa date
de naissance. Le flacon à urine est remis au patient avec un set de désinfection pour récolter une
partie des urines émises spontanément (le patient ne doit pas être à jeun).
Une fois les urines émises, remplir un tube à urine
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b) Pour les urines de 24, un pot à diurèse opaque de 2 litres (avec ou sans HCl suivant la demande
du prescripteur) est remis au patient.
-
Avant de commencer l’épreuve, le patient vide une première fois la vessie à la toilette (ces urines
ne sont pas gardées) et note l’heure de début.
Toutes les urines suivantes sont récoltées et conservées au réfrigérateur (debout car le bouchon
n’est pas étanche). Bien fermer le flacon après chaque utilisation et l’agiter.
Apres 24H (à la même heure que la première urine qui a été éliminée), le patient vide une
dernière fois sa vessie dans le pot de prélèvement (ces urines sont gardées).
Apporter le pot à diurèse au laboratoire le plus rapidement possible, sinon conserver le pot au
réfrigérateur (max 24H).
Rem :
- Le patient doit boire normalement pendant l’épreuve
- Attention de ne pas perdre d’urine en allant à selle (uriner avant)
- Lorsqu’il s’agit d’une récolte d’urine avec de l’acide, fournir au patient un petit pot de 200ml afin
qu’il puisse uriner d’abord dans ce pot pour le transvaser dans le pot contenant de l’HCl afin
d’éviter les brûlures et les accidents. Donnez au patient les recommandations suivantes :
 Ne pas vider ni toucher l’HCL qui se trouve dans les pots à urine
 Garder ces pots hors de portée des enfants
 Ramener les pots qui n’ont pas été utilisés
 Procéder à la récolte d’urine dans les deux semaines car l’HCl ne se conserve pas et risque
de dégrader le pot
4.2.3
Moelle
Le prélèvement de moelle est réalisé dans un milieu d’aspiration préparé au laboratoire selon la
procédure [HECYTMO01]. Il est constitué d'une suspension protéique (SSPP) et d'anticoagulants
(EDTA et Héparine) et permet le prélèvement et la conservation longue durée (sans coagulation et
autres altérations) du suc médullaire obtenu à partir de la ponction médullaire. Celle-ci se réalise
normalement à l'Hôpital de Jour hématologique :
- Un tube EDTA spécifique de 9 ml est à décongeler peu de temps avant le prélèvement.
- Le prélèvement se fait à la seringue. Le contenu de l’aspiration est ensuite transféré dans le tube
EDTA contenant la suspension SSPP.
Le tube EDTA est à amener rapidement au laboratoire.
4.2.4
Prélèvement à visée microbiologique
Réaliser le prélèvement, si possible, avant la mise en route du traitement antibiotique et l’acheminer
rapidement au laboratoire sans oublier de l’identifier.
Tout prélèvement doit être accompagné d’une demande d’analyse correctement remplie.
Indiquer également l’heure du prélèvement et les renseignements cliniques tel que préciser l'origine
du produit, la présence de température chez le patient, l'affection suspectée, l’antibiothérapie à venir
ou en cours…
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4.2.4.1



Liquide céphalo-rachidien (LCR)
Indication d’analyse microbiologique du LCR :
- contexte de suspicion de méningite et de méningo-encéphalite d’origine infectieuse. Des
demandes spécifiques et des justifications cliniques sont indispensables pour la recherche de
germes particuliers (mycobactéries, champignons notamment le Cryptococcus…)
- Une mise au point dans le cadre de maladie neurologique inflammatoire ou de
néoplasie/hémopathie maligne n’est pas une indication d’analyse microbiologique du LCR.
Prélèvement :
- Asepsie de type chirurgical avec un kit de ponction lombaire.
- Volume :
o Minimum 2 ml à répartir sur 3 tubes pour l’analyse biochimique, cytologique et
microbiologique standard (recherche de germes pathogènes méningés habituels). Eviter
d’utiliser le premier tube prélevé pour l’analyse microbiologique à cause du risque de
contamination.
o 2 à 5 ml supplémentaire pour la recherche de mycobactéries
o 2 ml supplémentaire pour la recherche de virus (Enterovirus, Herpes)
o 2 ml supplémentaire pour l’analyse sérologique pour la recherche de neuroborréliose
Transport et conservation :
- Immédiat à T° ambiante au laboratoire car urgence médicale et technique (risque de lyse des
leucocytes jusqu’à 50% en 2 heures)
- NE JAMAIS conserver le LCR au frigo (germes pathogènes sensibles au froid)
4.2.4.2
Hémocultures

Indications :
- Patient fébrile >38°C
- Hypothermie  36°
- Suspicion d’infection systémique chez un patient immunodéprimé ou chez un patient âgé
- Suspicion d’endocardite ou d’infection chronique sur site profond
- Réactions transfusionnelles

Matériels :
- Un désinfectant
- Une paire de gants stériles
- Des compresses stériles
- Un Holder spécifique (cloche) aux flacons d’hémoculture et une aiguille à ailettes (butterfly)
- Flacons d’hémoculture Bact/Alert (bioMérieux):
o flacon aérobie BTA SA (ou PF = flacon pédiatrique)
o flacon anaérobie BTA SN

Précautions avant le prélèvement :
- Avant toute antibiothérapie idéalement ; non à jeun
- ASEPSIE rigoureuse (cfr procédure ci-dessous):
o Lavage ou désinfection des mains du préleveur
o Port de gants non stériles
o Désinfection du capuchon des flacons d’hémocultures
o Après repérage du point de ponction veineuse, désinfection par application
d’antiseptiques alcooliques sur le site de ponction de la peau du malade pendant
minimum 30 secondes
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
Volume de sang à prélever :
- Adulte : 40 ml en 4 à 6 flacons (2 à 3 paires de flacon aérobie et flacon anaérobie) avec 5-10
ml par flacon
- Enfant : en fonction du poids de l’enfant :
Poids
<1 kg
1-2 kg
2-12 kg
12-36 kg
>36 kg
Culture 1
Aero
0,5-2 ml
1,5-4,5 ml
3-6 ml
5 ml
10 ml
Ana
Culture 2
Aero
Ana
5 ml
10 ml
5 ml
10 ml
5 ml
10 ml
% Volume
total
4%
4,5%
3%
2,9%
2%

Sites à prélever :
- Règles générales :
o Préférer la ponction veineuse directe au prélèvement par cathéter
o Prélever sur minimum deux sites différents (interprétation contamination vs infection)
- Suspicion de septicémie sur dispositif intra-vasculaire : au moins un prélèvement par ponction
périphérique et un par le dispositif intra-vasculaire idéalement des volumes de sang
équivalents sur les différents sites prélevés (comparaison de temps de positivité des flacons).

Fréquence du prélèvement :
- Règle générale : Une série de prélèvements par 24h suffit.
- Suspicion d’endocardite ou d’infection chronique sur site profond: répéter les prélèvements si
première série négative après 24-48h d’incubation.
- En cas de suspicion de bactériémie ou de fungémie malgré hémocultures négatives
persistantes, contacter le laboratoire de microbiologie pour des méthodes complémentaires
de détection (prolongement de durée d’incubation, repiquages finaux, colorations spéciales,
subcultures sur milieux spéciaux…)

Identification des prélèvements :
- Données du patient (cfr généralités préanalytiques)
o Etiquette du patient : NE PAS coller l’étiquette sur le code-barre du flacon nécessaire à
leur introduction dans l’automate incubateur.
o Indiquer sur les flacons et/ou les demandes le site de prélèvement (ponction périphérique,
par cathéter veineux central, par port-à-cath…)

Procédure de réalisation du prélèvement
1. Etiqueter et numéroter tous les flacons d’hémoculture pour respecter l’ordre du prélèvement.
Désinfection des bouchons et séchages 15’’
2. Repérage du site de ponction n°1
3. Désinfection du site cutané (après palpations) et laisser sécher 30’’
4. Désinfecter une seconde fois avant le prélèvement
5. Prélèvement de la paire d’hémoculture n°1 au moyen du Holder spécial et de l’aiguille à ailettes. Il
faut 5 à 10 ml de sang par flacon.
6. Prélever de la même façon la paire d’hémoculture n°2 à partir d’un autre site cutané.
7. Même opération pour la paire d’hémoculture n°3, seulement si le patient a une voie d’entrée, mais
le prélèvement se fera par le cathéter veineux ou un autre dispositif intravasculaire (ex : port-àcath).
Attention :
Si autres prélèvements sanguins, prélever en premier les hémocultures.
Prélèvements des différentes paires sans délai intermédiaire mais sur sites différents.
Noter sur le bon de demande, si une antibiothérapie est en cours.

Conservation et transport :
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-
4.2.4.3
Les hémocultures sont des prélèvements URGENTS (raisons techniques et médicales) à
acheminer à T° ambiante le plus rapidement possible au laboratoire.
Déposer les paires d’hémocultures au centre de tri du laboratoire qui les prendra en charge
pour les acheminer vers le service de bactériologie.
Urines pour sédiments/culture

Matériels :
- Un désinfectant
- Compresses stériles
- Pot stérile de récolte d’urine (125ml) avec une canule de transfert intégrée et 2 tubes de
transfert à fond conique (10 ml)
- Si nécessaire, collecteur Urinocol, sonde urinaire ou matériels de ponction sus-pubienne

Sédiments urinaires et culture d’urine
-
-
Recueil d’urines mi-jet :
Le prélèvement aseptique d’urines (pour la culture) se fait après désinfection du méat avec
des compresses stériles imbibées de désinfectant non alcoolique. Prélever en évitant le
contact avec la peau le 1er jet d’urine dans un pot non stérile (200 ml) et le milieu de jet dans
le pot stérile. Eviter de mettre les doigts à l’intérieur du pot stérile. Fermer hermétiquement le
pot stérile.
Détacher l’étiquette de sécurité sur le pot stérile pour découvrir la canule de transfert du
couvercle du pot.
Brancher en enfonçant le tube de transfert dans la canule du couvercle du pot. Attendre le
e
remplissage automatique par aspiration du tube. Répéter la procédure pour un 2 tube.
Identifier les tubes et les déposer dans un sachet fermé accompagné du bon de demande.
En cas de volume faible, effectuer manuellement le transfert d’urine en dévissant le pot et en
transvasant l’urine dans le tube.
Le pot stérile de collecte peut être éliminé après transfert dans les tubes. Ne pas envoyer le
pot stérile par télétube car risque de fuite pendant le trajet.
Tubes d’urine à acheminer (possible par télétube) rapidement au laboratoire <2h à
température ambiante (conservation maximale de 24h à 4°C avant envoi).
-
Ponction sus-pubienne et cathétérisme vésical direct :
Ces prélèvements invasifs sont considérés comme des prélèvements en condition « stérile »
et sont à considérer comme urgents et précieux.
-
En cas de suspicion d’infection urinaire chez un enfant cliniquement septique ou en l’absence
de prélèvement urinaire non contaminé, on peut avoir recours à une ponction vésicale. Après
avoir assuré que la vessie est remplie et après désinfection cutanée sus-pubienne, une
ponction à l’aiguille avec une seringue est réalisée au-dessus de la symphyse pubienne.
Après retrait de l’aiguille remplacée par un capuchon stérile, la seringue contenant l’urine est
acheminée telle quelle immédiatement au laboratoire.
-
Chez un patient incapable d’uriner (vessie neurologique, globe vésical…), un recueil d’urine
par sondage vésical « in-out » peut être réalisé. Après préparation cutanée soigneuse, une
sonde urinaire est introduite avec une technique appropriée via le méat urétral dans la vessie.
Après élimination des premiers ml d’urines, l’urine est recueillie dans un pot stérile. Fermer
hermétiquement le pot stérile qui est acheminé le plus rapidement au laboratoire.
-
Prélèvement par sonde à demeure :
Si le patient est porteur d’une sonde urinaire ou d’une poche vésicale, il ne faut pas
déconnecter le circuit. Après désinfection de l’embout de prélèvement, ponctionner à la
seringue pour récolter l’urine.
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-

Collecteur d’urine pour enfant :
S’il s’agit d’un enfant n’ayant pas acquis la propreté urinaire, utiliser un sachet collecteur
Urinicol qui est à changer toutes les 60 minutes.
Recherche de N. gonorrhoeae et C. trachomatis
er
Même procédure mais recueil du 1 jet d’urine dans un pot stérile.

Recherche de parasites dans les urines
-
Critères d’acceptation :
o Présence d’hématurie micro/macroscopique
o Séjour dans des pays tropicaux
-
Conservation et transport :
o Transport immédiat au laboratoire à T° ambiante <2h de prélèvement.
o Conservation au frigo à 4°C maximum 24h.
4.2.4.4
4.2.4.4.1
Selles
Coproculture : Recherche de germes entéropathogènes et de C. difficile toxinogène

Conditions de prélèvement de selles pour coproculture :
- Une seule coproculture est en général suffisante
- Avant toute antibiothérapie de préférence
- Volume optimal de la taille d’une noix ou d’environ 5 ml (dans un pot stérile hermétique)
- Echantillon muco-purulent ou sanglant à privilégier

Indications et critères d’acceptation de coproculture:
- Pas de recherche de germes entéropathogènes en l’absence de selles diarrhéiques.
(Définition d’une diarrhée: minimum 3 selles liquides non moulées sur une période de 24 h)
- Pas de recherche de germes entéropathogènes hors C. difficile chez un patient
hospitalisé depuis plus de 3 jours sauf exceptions.
- Germes entéropathogènes hors C. difficile : Salmonella, Shigella, Campylobacter, Yersinia.
- Diarrhées >3 jours après admission et un des critères suivants (exceptions):
o Neutropénie <500/uL
o HIV+
o Contexte épidémique de gastro-entérites
o Retour de séjour à l’étranger (pays tropicaux ou subtropicaux)

Une recherche d’un Escherichia coli vérotoxinogène (VTEC dont E. coli O157H7) est indiquée en
cas de diarrhées sanglantes ou de tableau clinique de syndrome hémolytique urémique
(SHU).Cette recherche spécifique est à préciser sur la demande.

La recherche de Clostridium difficile toxinogène est à réaliser chez un patient ayant reçu un
antibiotique, séjourné dans une autre institution ou hospitalisé depuis plus de 3 jours.

La recherche de virus dans les selles n’est pas un examen de routine sauf pour les rotavirus et les
adénovirus. En cas d’épidémie il est nécessaire de prendre contact avec le laboratoire pour diriger
les recherches et si nécessaire transférer la demande au centre national de référence.

Procédure :
Recueillir les selles dans un pot avec une petite cuillère et fermer hermétiquement le couvercle.
4.2.4.4.2
Recherche des parasites intestinaux
Indications de recherche de parasites intestinaux dans les selles :
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La recherche de parasites dans les selles est appropriée chez les patients présentant à l’admission
des diarrhées ou des troubles digestifs :
- après séjour dans les pays (sub-)tropicaux
- Diarrhées persistantes (>2 semaines) ou chroniques (>1 mois)
- Hyperéosinophilie inexpliquée
- Diarrhées chez un patient HIV+ ou patient greffé ou en neutropénie profonde (recherche de
Cryptosporidium).

TFT-test pour la recherche des parasites intestinaux :
Il existe un kit pour la recherche des parasites intestinaux que le laboratoire fournit à la demande.
Mode opératoire
a. contenu
Le kit de collection de selles comprend trois flacons : 2 flacons (n°1 et 3) contenant du liquide de
conservation (SAF) et 1 flacon sans liquide (n°2)
b. mode d’emploi
Durant trois jours consécutifs, remplir les 3 pots de collection immédiatement après émission de
selle, selon le schéma suivant
Le jour 1 : Remplir le pot n°1 : ajouter les selles jusqu’à la ligne rouge
Le jour 2 : Remplir le pot n°2 : Mettre l’équivalent de trois noix de selles
Le jour 3 : Remplir le pot n°3 : Ajouter les selles jusqu’à la ligne rouge
Après avoir rempli de selle le flacon, bien visser le couvercle. Agiter doucement pendant 20
secondes les flacons contenant du liquide (n°1 et 3). Noter sur chaque flacon : le nom, la date de
naissance et la date de collection de selle.
Remarque :
-
-
-
-
-
4.2.4.5

Garder les pots n°1 et 2 à température ambiante ou mieux au frais (cave, terrasse…) et
apporter la totalité des pots ensemble au laboratoire le troisième jour, accompagné des trois
demandes d’analyse.
Même si vous avez plus d’une selle par jour, ne remplir le flacon qu’une seule fois par jour. Si
vous avez moins d’une selle par jour, attendre que les trois flacons soient remplis pour les
rapporter au laboratoire.
Pour faciliter la collection des selles, déposer une bande de papier toilette pliée en deux au
niveau de la surface de l’eau de la toilette. Les selles peuvent alors être facilement collectées
à la surface du papier toilette.
ATTENTION : le liquide des tubes 1 et 3 est potentiellement toxique à l’ingestion. Ne pas
boire. Garder hors de portée des enfants. SAF : Acétate de sodium, acide acétique,
formaldéhyde, eau. En cas de contact avec la peau, rincer à l’eau. En cas d’ingestion, ne pas
faire vomir, boire une gorgée d’eau ou de lait et contacter immédiatement le centre anti
poison : 070/245.245
Pour tout renseignement complémentaire concernant le test, contacter le laboratoire au 081/
42 32 12
Frottis
Matériels :
- Frottis eSwab avec milieu de transport liquide (Copan) : liquid regular, liquid regular
uretral pour frottis ORL ou urétral
- MRSA Kit (3 eSwab et milieu NaCl 2,5%) pour dépistage MRSA
- GBS (bouillon LIM)
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
Le frottis de gorge
Prélever à l’écouvillon en frottant la paroi postérieure du pharynx ainsi que les deux amygdales. Il
faut éviter le contact avec la muqueuse buccale ou avec la langue pour minimiser la
contamination salivaire. Casser le frottis dans le milieu de transport et fermer en vissant le tube.

Le frottis de nez
Prélever à l’écouvillon la muqueuse nasale en frottant le contour intérieur des deux narines.
Casser le frottis dans le milieu de transport et fermer en vissant le tube.

Le frottis d’oreille
Prélever en frottant à l’écouvillon la paroi du conduit auditif externe ou des sécrétions provenant
de l’oreille moyenne. Casser le frottis dans le milieu de transport et fermer en vissant le tube.

Frottis pour recherche de MRSA
Utiliser le MRSA kit contenant trois écouvillons : deux rouges pour effectuer un frottis de la gorge
et d’un autre site, ainsi qu’un troisième écouvillon blanc pour le frottis de nez à casser dans le
tube contenant le milieu NaCl. Fermer en vissant le tube.

Frottis pour recherche de Streptococcus agalactiae
Utiliser le GBS kit : effectuer un frottis vaginal et rectal, casser le frottis dans le bouillon LIM et
fermer le tube en le vissant.
4.2.4.6
Pus, plaies et liquides d’épanchement
Il existe une grande diversité de germes isolés dans les pus, liée à la grande diversité des sites de
prélèvements;

Classes de stérilité des prélèvements :
Classe 1 : Liquide de séreuse (liquide pleural, liquide péricardique, liquide synovial, liquide péritonéal).
- Les liquides de séreuses proviennent de zones fermées et donc normalement stériles. Ces
prélèvements sont obtenus en condition d’asepsie de type chirurgical, à l'aide d'une aiguille
montée d'une seringue. Ils sont rarement polymicrobiens et ne sont pas contaminés.
- Une odeur fétide et une couleur "chocolat " doivent inciter à une recherche de germes anaérobies
et l'utilisation d'un milieu de transport adéquat.
Classe 2 : Pus profonds provenant de zones profondes, mais qui peuvent être en contact avec la flore
commensale (exemple : abcès fistulisé).
- les renseignements cliniques sont indispensables pour orienter la recherche bactériologique et
différencier contamination et infection.
- Le prélèvement doit se faire à l'aiguille montée d'une seringue, en évitant le plus possible le
contact avec la flore commensale.
- La quantité de liquide doit être suffisante pour permettre également la recherche d'anaérobies
(milieu de transport).
Classe 3 : Pus superficiels : plaies cutanées.
- Les renseignements cliniques sont indispensables
- Seules les plaies infectées justifient un prélèvement.
Le prélèvement de certaines infections cutanées chez un hospitalisé sans comorbidité est inutile
(ex: l'érysipèle simple)
Les prélèvements d'escarre ne présentent aucun intérêt excepté dans le cadre de dépistage de
bactéries multi-résistantes aux antibiotiques (BMR), les escarres sont systématiquement colonisées
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par des germes commensaux de la peau ou par une flore transitoire. Les antibiotiques ne guérissent
pas les escarres mais ils peuvent sélectionner les BMR.
Ces prélèvements sont toujours contaminés : la flore de surface, les débris cellulaires et tissulaires
doivent d'abord être éliminés par rinçage avec une solution de lavage (eau physiologique).
L'idéal est le prélèvement par aspiration à la pipette au à la seringue. Prélever la plus grande quantité
possible de pus.

Procédure de prélèvements :
Pus de classe 1, 2
- effectuer le prélèvement à la seringue (une seringue héparinée est recommandée afin de disposer
d’un prélèvement permettant de réaliser une analyse cytologique).
- transférer si besoin une fraction du prélèvement dans un tube hépariné pour une analyse cytologique
- utilisation du milieu de transport pour la recherche d’anaérobes (Portagerm) : après prélèvement du
liquide, piquer à travers le bouchon du flacon de transport et injecter quelques ml EN-DESSOUS de la
gélose créant l’anaérobiose.
- Après avoir chassé l’air restant de la seringue, RETIRER L’AIGUILLE et remettre un capuchon à la
seringue avant transport immédiat à T° ambiante au laboratoire.
Pus de classe 3
- voir Pus de classe 1, 2
- à défaut, écouvillonner la plaie ou la lésion après rinçage abondant avec une solution de lavage (eau
physiologique)
4.2.4.7
4.2.4.7.1
Les expectorations
Recherche de pathogènes bronchopulmonaires non mycobactéries
La difficulté du diagnostic des infections bronchopulmonaires bactériennes est liée au problème de
l'obtention de prélèvements des voies aériennes inférieures non contaminés par la flore
oropharyngée. Cette dernière peut masquer les microorganismes responsables d’une infection. De
plus, les principales espèces bactériennes (H. influenzae, S. pneumoniae, S. aureus) responsables
des pneumopathies communautaires, voire nosocomiales précoces (J3-J5), peuvent être présentes à
l’état commensal dans l’oropharynx. C’est pourquoi une attention extrême doit être portée aux
conditions de recueil de ces prélèvements. Il faut éviter la présence de salive qui risque de diluer le
prélèvement et de le contaminer par des bactéries commensales salivaires (staphylocoques à
coagulase négative, streptocoques autres que S. pneumoniae, bactéries corynéformes, Neisseria
commensales).
Pour remédier à cet écueil important, plusieurs mesures sont préconisées :
 recueillir les sécrétions bronchopulmonaires des malades ayant une pneumopathie grave au
moyen de méthodes invasives mais plus fiables telles que le lavage bronchoalvéolaire ;
 les prélèvements dont l’examen microscopique montre une contamination salivaire évidente sont
éliminés (présence de cellules épithéliales d’origine buccale, absence de macrophages
alvéolaires et/ou de cellules bronchiques) ;
 une analyse quantitative de la flore bactérienne est réalisée.
Le recueil de l’expectoration doit respecter un protocole rigoureux : il doit se faire idéalement le
matin au lever en dehors de traitement antibiotique après rinçage bucco-dentaire à l’eau
physiologique et lors d’un effort de toux dans un pot stérile, aidé si besoin d’une kinésithérapie.
Patient ambulant : si le patient ne parvient pas à expectorer sur place, lui donner un pot stérile, ainsi
que sa demande afin qu’il réalise ce prélèvement chez lui, en s’assurant qu’il garde cet échantillon au
frais en attendant de l’apporter au laboratoire. Idéalement, le prélèvement doit être réalisé le matin au
lever en dehors de traitement antibiotique
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Le prélèvement doit être ACHEMINE RAPIDEMENT AU LABORATOIRE, pour éviter la multiplication
de la flore commensale (oropharyngée) qui pourrait empêcher l’identification des germes
responsables de la pneumopathie.
4.2.4.7.2
Recherche de mycobactéries
Expectorations : le recueil des expectorations doit se faire le matin au réveil lors d’un effort de toux
pour ramener les sécrétions bronchiques accumulées pendant la nuit, aidé si besoin d’une
kinésithérapie. Un volume minimal de 2 ml est nécessaire, le volume optimal étant de 5 ml.
Tubage gastrique : Chez les malades qui crachent peu ou pas, le tubage gastrique sera proposé. Il
consiste à prélever directement dans l'estomac les sécrétions bronchiques qui ont été dégluties
pendant le sommeil. Cette épreuve sera réalisée chez un sujet :
- maintenu à jeun ;
- alité depuis la veille au soir ;
- le plus tôt possible après le réveil.
Il faut recueillir 5 à 6 ml d'aspiration du liquide gastrique dans un récipient stérile, puis injecter dans
l'estomac 20 à 30 ml de sérum physiologique stérile, les réaspirer et les mélanger au contenu de
l'aspiration.
4.2.4.8
Les phanères
Le matériel est prélevé sur l’ongle après l’avoir débarrassé de toutes les particules friables, facilement
détachables qui doivent être rejetées.
Le prélèvement se fait en des endroits où le tissu malade est en contact avec le tissu sain.
A l’aide d’un scalpel ou d’une curette tranchante (stérile), on détache de fins copeaux d’ongle que l’on
recueille dans un récipient stérile.
Les prélèvements peuvent être légèrement humidifiés avec un peu de sérum physiologique
4.2.4.9
Echantillons suspects de grippe
Prélèvement et envoi d’échantillons en cas d’hospitalisation (ou de nécessité d’affiner le diagnostic)
d’un patient suspect de virose respiratoire (Influenza A et B, RSV), il existe un kit de prélèvement
disponible au laboratoire de bactériologie, au service des urgences et à l’hôpital de jour.

Critères d’infectiosité
>38°C et/ou sensation de fièvre avec prise de paracétamol plus 2 des symptômes suivants :
- Douleurs musculaires, maux de tête
- Maux de gorge
- Toux
- Dyspnée
- Autre symptôme respiratoire

Matériel
-
Un écouvillon UTM ou e-swab ET un bon de demande d’analyse pour le labo
bactériologie/biologie moléculaire
En cas de patient participant à la surveillance SARI pour envoi à l’ISP : 1 écouvillon UTM et le
formulaire pour ISP supplémentaires

Prélèvement
Frottis naso-pharyngés (confirmation de la demande par l’infectiologue)
Prendre des mesures de précaution « additionnelles grippe »
(Masque chirurgical, lunettes de protection, gants et blouse à usage unique)
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-
Introduire l’écouvillon dans le conduit nasal postérieur jusqu’à atteindre le naso-pharynx (environ
7cm de l’arcade chez l’adulte), faire 2 rotations pour récolter un maximum de cellules
Déposer l’écouvillon dans le tube contenant le milieu de transport, couper la tige qui dépasse au
trait
Fermer hermétiquement le tube contenant l’écouvillon
Etiqueter le tube et le placer dans un sachet fermé hermétiquement, accompagné du bon de
demande
Désinfection des mains (solution hydro-alcoolique) après manipulation des échantillons.
5 Transport des échantillons et de la demande
5.1
5.1.1
Transport des échantillons
Au sein du CHU
Le(s) prélèvement(s) est(sont) placé(s) dans un sac accompagné du(des) bon(s) de demande (ex : les
prélèvements dans une pochette plastique et la demande dans la poche kangourou latérale). Ils sont
ensuite déposés au centre de tri du laboratoire ou envoyés via le « Télétube » (transport
pneumatique) en interne.
Note :
- Certains échantillons doivent obligatoirement être déposés au laboratoire et ne peuvent pas être
envoyés par le Télétube (LCR, moelle, gazométrie,…).
- Les prélèvements pour gazométrie peuvent être envoyés au laboratoire par télétube à la condition
que les aiguilles aient été enlevées des seringues de prélèvement, que les seringues soient
héparinées et correctement bouchées, qu’elles soient identifiées par un code-barres et
accompagnées d’un bon de demande, qu’elles soient placées dans un manchon réfrigéré identifié
au nom de l’unité, que l’heure d’envoi soit indiquée sur le bon de demande et que le laboratoire
soit prévenu de l’envoi.
- Le transport doit se faire dans les plus brefs délais à température ambiante en tenant compte
toutefois des recommandations éventuelles reprises sur le bon de demande.
- Tous les échantillons biologiques sont considérés comme potentiellement infectieux ; il faut donc
leur appliquer les mesures préventives de base. Les récipients doivent être hermétiquement
fermés et propres.
5.1.2
Du site de Dinant ou de l’extérieur vers le site Godinne
Les échantillons des sites de prélèvement extérieurs au site Godinne sont acheminés au laboratoire
via des transporteurs dans des bacs spécifiques en fonction des conditions de température de
transport. La température de transport requise est contrôlée via des sondes.
5.2
Réception au laboratoire
Le site de Dinant réceptionne les échantillons urgents pour analyse et prend en charge l’envoi des
prélèvements non urgents vers le site de Godinne.
Le laboratoire du site de Godinne réceptionne tous les échantillons au centre de tri ou de
prélèvement.
MANUEL ASSURANCE QUALITE
MAQ - Version 12 du 03/04/2015
Imprimé le 20/10/2015
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Laboratoire de Biologie Clinique
CHU Dinant Godinne
Avenue Dr Thérasse, 1
B-5530 YVOIR
!!! IMPORTANT !!!
Le laboratoire ne prend pas la responsabilité de traiter des échantillons qui ne sont pas
correctement identifiés ou qui ne concordent pas avec la demande.
Lorsqu'il y a incertitude sur la nature d'un échantillon, le laboratoire contacte le service, le
préleveur ou le prescripteur qui décidera de la suite à donner à la demande reçue.
Lorsqu'il y a incertitude sur l’identité du patient, le laboratoire indique une non-conformité sur
la demande et l’encode (NCIC) dans le SIL. Un commentaire est indiqué sur le protocole.
Toute modification d’information sur la demande ou sur l’échantillon ne peut être réalisée par
un membre du personnel du laboratoire qu’avec l’aval du prescripteur et sous sa
responsabilité.
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