Bulletin UASVM Animal Science and Biotechnologies, 65(1-2)/2008 pISSN 1843-5262; eISSN 1843-536x PERFORMANCES DE REPRODUCTION CHEZ 15 COUPLES PARENTAUX DE CYPRINUS CARPIO TRAITÉS AVEC DE L’EXTRAIT HYPOPHYSAIRE ET OVOPEL Oroian T.*, R.G. Oroian*, Simona Paşcalău*, L. Sasca*, Elvira Oroian*, Vioara Mireşan*, I. Paşca*, D. Dronca** *University of Agricultural Sciences and Veterinary Medicine, Faculty of Animal Science and Biotechnology, 3–5 Manastur Street, 400372 Cluj-Napoca, Romania, [email protected] ** Banat University of Agricultural Sciences and Veterinary Medicine, 119 Aradului Alley, 300645, Timişoara, Romania Key words: Cyprinus carpio, Ovopel, hypophys Abstract. The study presents some comparative results regarding the reproduction performances of 15 Cyprinus carpio families, originating from Lausitz and Galitian variety. The hormonal treatment was applied after a schedule, which indicates the administration of 4 mg product/kg body weight. The results shown the fact that Ovopel treatment has shorten the females eggs maturation time with 6 hours in comparison with the classic treatment, with hypophysis extract. The maturation time average of the 8 females eggs treated with hypophysis extract was of 12 hours and of those treated with Ovopel was of 6 hours (after the second inoculation, made 12 hours from the first one). INTRODUCTION Cet ouvrage représente une séquence des recherches déroulées dans le cadre du projet CEEX 45/2005, qui s’est propose l’étude de la variabilité phénotypique et génétique d’une population de Cyprinus Carpio du nord–ouest de la Transylvanie afin de créer des lignes par l’utilisation des marqueurs génétiques pour la conservation durable du génofond. MATÉRIEL ET MÉTHODES Le matériel biologique a été représenté par 5 familles de la variété Galitienne et 2 familles avec des mâles de la variété Galitienne et des femelles de la variété Lausitz, traitées avec Ovopel et 5 familles de la variété Lausitz, 3 familles mâles de la variété Lausitz et des femelles de la variété Galitienne. Les poids corporels des mâles et des femelles utilisés dans la reproduction sont mis en évidence dans les tableaux numéro 1 et 2. Pour le traitement de maturation on a utilisé deux préparations. Une partie out été acquis de la firme de profil de Hongrie, c’est-à-dire 50 morceaux d’hypophyse et 200 morceaux d’Ovopel (une hormone synthétique identique à l’hormone hypophysaire pour la carpe), et une autre partie de l’hypophyse utilisée est issue de la récolte directe sur 40 individus (ayant le poids total de 125 kg). Le traitement appliqué a été différencié avec les deux types d’hormones, en fonction du poids corporel des individus et l’état de maturation des gonades, pour constater leur efficacité et pour pouvoir faire des recommandations en ce qui concerne l’utilisation de l’un ou de l’autre à la reproduction de la carpe en Roumanie. 109 Fig. 1 Doses d’hormones hypophysaires et Ovopel Fig. 2 Injection de la femelle Fig. 3 Injection du mâle RÉSULTATS ET DISCUSSIONS Dans le tableau numéro un, on présente les résultats du traitement hormonal avec de l’hypophyse broyée, traitement effectué sur 8 couples parentaux. On a effectué le traitement le 110 20, 21 2t 23 mai 2008, dans les doses mentionnées dans le tableau, calculées en fonction du poids corporel de chaque individu et administrés en deux doses chez les femelles, à 12 heures intervalle, et une seule dose chez les mâles. Le traitement avec de l’hypophyse a produit la maturation chez les 4 femelles soumises au traitement à des intervalles compris entre 9,4–15 heures, avec des fluctuations individuelles significatives. La quantité d’oeufs de poissons récoltée varie entre 680 g et 1250 g, en ne pouvant pas faire de corrélation entre la quantité d’oeufs expulsée et le poids de la femelle. Les oeufs ont été partagés dans des quantités de 500 g, c’est-à-dire 250 g, pour l’éclosion sur des cadres de type „Nucet” modifiés et Zug-Weiss. La quantité de laitance traite par mâle a oscillé entre 9 ml et 24 ml. Dans le tableau numéro deux, on présente les résultats du traitement hormonal avec „Ovopel”, traitement effectué sur 5 couples parentaux de la variété Galitienne et 2 couples des variétés Galitienne et Lausitz. On a effectué le traitement aux mêmes dates, c’està-dire, le 21 et 22 mai 2008 dans les doses mentionnées dans le tableau 52, calcules de la même façon que dans le premier cas, en fonction du poids corporel de chaque individu et administrées en deux doses chez les femelles et une seule dose pour les mâles. Le poids des femelles soumises au traitement avec „Ovopel” a été compris entre 3900–6400 g et chez les mâles entre 3400–7300 g. Le premier traitement avec „Ovopel” de 4 mg a été fait le matin, entre 6h et 7h, et le rappel a été fait 12h après, avec une dose qui corresponde pour un traitement total à 4 mg/kg corp. L’inoculation des mâles a été faite au moment du rappel des femelles, avec une dose égale à la moitié de la quantité administrée chez les femelles/kg poids vif. La récolté des oeufs a été faite à un intervalle compris entre 3 et 9,5 heures depuis le dernier traitement. Dans ce cas également, la quantité des oeufs récoltée varie d’une femelle à l’autre, et oscille entre 640 g (chez une femelle de 4100 g) et 1280 g (chez une femelle de 6400 g). On a fait l’éclosion, tout comme dans le cas précédent, à chaque couple parental, tant sur des cadres de type „Nucet” modifiés, que sur des Zug-Weiss. Après la récolte, des oeufs ont été distribués et soumis au processus de fécondation avec la laitance du mâle partenaire. On a fait la fécondation sèche, en mélangeant les oeufs récoltés et la laitance sans ajouter de l’eau ni d’autre liquide. Le mélange a été fait dans des pots en plastique à l’aide d’une plume d’oie. Après avoir uniformisé le mélange laitance-oeufs (une minute environ), on a ajouté de la solution de fécondation, 5/10 ml à 250 g oeufs. La solution de fécondation a été obtenue par la dissolution en 1000 ml eau distillée de 6,2 g NaCl; 0,2 g CaCl2; 0,1 g NaHCO3 et 0,1 g KCl. Le mélange des gamètes avec le liquide fécondant a continué durant 1–2 minutes et après on a procédé à étendre les oeufs fécondés sur le filet des cadres avec la dimension de 60/50 cm. Tableau 1 Couples traitès avec de l’hormone hypophysaire La famille 1 (L x L) 2 (L x L) 3 (L x L) 4 (L x L) 5 (L x L) 1 (♂L x ♀G) 2 (♂L x ♀G) 3 (♂L x ♀G) ♂ ♀ Poids (g) Poids (g) Dose I (mg) Dose II (mg) Traitemen t♂ Dose I (mg) 4300 4100 3900 5200 4600 3900 3400 3100 5800 6600 6800 5200 5000 3900 3500 3800 8 8 8 8 8 4 4 4 16 20 20 12 12 12 9 12 8 8 8 12 10 4 4 4 Traitement ♀ 111 Total Portier I (cadres) Portrir II (zw) Quantité de laitance (ml) 1050 1250 1010 960 920 870 750 680 500 500 500 500 500 500 500 500 250 250 250 250 250 250 250 180 18 13 10 20 24 11 12 9 Récolte d’oeufs (g) Temps de maturation (h) 9,4 12,2 10,5 11,0 14,5 10,5 12,5 15,00 Tableau 2 Couples traitès avec Ovopel La famille 1 (G x G) 2 (G x G) 3 (G x G) 4 (G x G) 5 (G x G) 1 (♂G x♀L) 2 (♂G x♀L) ♂ ♀ Poids (g) Poids (g) Dose I (mg) Dose II (mg) Traitemen t♂ Dose I (mg) 6800 7300 5500 4000 4600 3800 3400 6400 5800 5400 4900 4700 3900 4100 8 8 8 6 8 4 4 18 16 14 12 14 8 8 10 12 10 8 8 4 4 Traitement ♀ Total Portier I (cadres) Portrir II (zw) Quantité de laitance (ml) 1280 1130 950 875 820 755 640 500 500 500 500 500 500 500 250 250 250 250 250 250 140 33 34 20 18 21 10 14 Récolte d’oeufs (g) Temps de maturation (h) 6,5 4,5 5,5 7,0 9,5 3,5 5,5 CONCLUSIONS Le traitement avec Ovopel, qui est une hormone hypophysaire synthétique, donne une efficience élevée, en raccourcissant le temps de maturation d’environ 6 heures, par rapport au traitement classique hypophysaire. Le raccourcissement du temps de maturation permet de surveiller plus attentivement les reproducteurs injectés et évite les pertes dés oeufs par l’auto traite. Le traitement avec Ovopel permet la récolte d’une quantité plus grande d’oeufs par kg corps poids vif, par rapport au traitement classique. Grâce à la maturation plus uniforme des oeufs chez les individus traits avec Ovopel, le pourcentage de fécondité, comme celui d’éclosion est de 2 à 5% plus grand que le traitement classique. BIBLIOGRAFIE 1. Beaumont, A.R., K. Hoare, 2003, Biotechnology and Genetics in Fisheries and Aquaculture, Blackwell Publishing, UK 2. Bud, I., Şt. Diaconescu, M. Mudure, 2004, Creşterea crapului şi a altor specii de peşti, Ed. Ceres, Bucureşti 3. Bura, M., A. Grozea, I. Cornea, I. Gergeni, 1995, Creşterea crapului în iazuri şi heleştee, Ed. Mirton, Timişoara 4. Cărăuşu, S., 1952, Tratat de ichtiologie, Bucureşti; 5. Chourrout, D., 1990, Gene transfer in fish, Review paper in press in the proceedings of the 4th world congress on genetics applied to livestock production, Edinburgh, Hill WG, Thompson R, Wooliams VA eds., ISBN, XVI, 167 -171 6. Cighi, V., 2008, Elemente de tehnică experimentală, Ed. Risoprint Cluj-Napoca, ISBN 978-973-751-721-0; 7. Cornea, Călina PetruŃa, 2002, Inginerie genetică, Ed. Printech, Bucureşti, ISBN 973-652-694-1 8. Coşier, Viorica, A. Vlaic, 2004, The model system for transgenic research in fish, Lucr. Şt. „Zootehnie şi Biotehnologii” USAMVB Timişoara, vol. XXXVII, p. 483 – 488 9. Cristea, Veronica, 1995, Genetica şi ameliorarea peştilor, vol. I, Ed. Edit-Press, GalaŃi 10. David, Lior, Rothbard Shamuel, Rubinstein Israel, Katzman Hila, Hulata Gideon, Hillel Jossi, Lavi Uri, 2004, Aspects of red and black color inheritance in the Japanese ornamental (Koi) carp (Cyprinus carpio L.), Aquaculture, vol. 233, 129 – 147 11. Devlin, R.H., Y. Nagahama, 2002, Aquaculture, 191 – 364 12. Gomelssky, Boris, 2003, Chromosome set manipulation and sex control in common carp, Aquatic Living Resources, 408 – 415 13. Griffiths, A.J.F., J.H. Muler, D.T. Suzuki, R.C. Lewontin, W.M. Gelbart, 1993, An Introduction to Genetic Analysis, Fifth Edition, W.H. Freeman and Company, New York 14. Grozea, A., M. Bura, 2002, Crapul, Editura de Vest, ISBN 973-36-0359-7 15. Hall, C. Jeffrey, J.C. Dunlap, T. Friedmann, Veronica van Heyningen, 2006, Advances in Genetics, Academic Press, USA 112 16. Hallerman, E.M., A.R. Kapuscinski, P.B. Hachett Jr., A.J. Faras, K.S. Guise, 1989, Gene transfer in fish, II Aquaculture Biotechnology/Technology, Breeders Roundtable Proc., St. Louis, 35-51 17. Hill, W.G., Thompson R., Wooliams V.A., 1990, Gene Transfer in Fish, Proceedings of the 4th world congress on genetics applid to liverstock production, Edinburgh, 167-171 18. Man, C., 1989, Apa – sănătatea şi producŃiile animalelor, Ed. Ceres, Bucureşti; 19. Miclea, V., M. Zăhan, 2006, ReproducŃia peştilor, Ed. Accent, Cluj-Napoca; 20. Mireşan Vioara, 2004, Fiziologia animalelor domestice, Ed. Risoprint Cluj-Napoca; 21. Oroian E. Teofil, 2006, SelecŃia asistată de markeri la crap, Ed. Risoprint, Cluj-Napoca, ISBN 973-751373-8 22. Oroian, T., A. Vlaic, Simona Paşcalău, R.G. Oroian, D. Dronca, V. Cighi, Viorica Coşier, 2006, Description of an enlarged selection nucleus in a carp (Cyprinus carpio) population in North-Western Transylvania, Buletin USAMV Cluj-Napoca, vol. 62, p. 164-169, ISSN 1454-2390 23. Oroian E. Teofil, 2007, Principii în ameliorarea peştilor, Ed. Risoprint, Cluj-Napoca, ISBN 978-973-751424-0 24. Vlaic, A., 2007, Genetica peştilor, Ed. Risoprint Cluj-Napoca, ISBN 978-973-751-46 113