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Institut de Génétique
et Microbiologie
LES CRISPRS, INSTRUMENTS D'ETUDE DE
L'EVOLUTION INTER ET INTRASPÉCIFIQUE CHEZ LES MICROORGANISMES
Ibtissem GRISSA
Soutenance de thèse, le 24 Juin 2008, IGM
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
PLAN
 Introduction : Les CRISPRs avant 2006
Etat des lieux
But de la thèse
 Résultats
Investigation des CRISPRs
Le CRISPR pour la phylogénie
 Discussion
Investigations du CRISPR
Utilisation du CRISPR pour la phylogénie
 Perspectives
 Améliorer
les outils
Les metagenomes
Les métagénomes
2
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
La découverte des CRISPRs (1)
spacers
Leader
DR dégénéré
DR
TTAGGGTTACGTCCCCCCCGATTCTTGTGACCCTCTTTTTATCACTATGACTAACGTATTGATTTTTATGCTACTCAGGTATT
TCACTAAAAAAAGGGTTTTTACGCATTTTGCGCCATTGCTCATTGATAAACATCGGGTTATCCGTATTATCTTACGTTCAC
TGCCGCACAGGCAGCTTAGAAAATGTTCGACGATTTATTTTATTTGTATTTCAGGTTCACTGCCGCACAGGCAGCTTA
GAAAATTTATTAAAGATGCTGACAAAAAGAACTTAAGTTCACTGCCGCACAGGCAGCTTAGAAAGTCAACGCTTCAC
TCCCTGCGCGGGGTATAACGTTCACTGCCGCACAGGCAGCCCAATAA
Yersinia pestis CO92 (NC_003143_2 )
 1ère observation : Escherichia coli (Ishino 1987)
 succession de séquences répétées de 29pb espacées de séquences
uniques de 32-33pb.
 2 locus séparés de 24 kb (14 et 7 répétitions)
3
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
La découverte des CRISPRs (2)
 1991 : découverte d’un CRISPR dans le complexe Mycobacterium
tuberculosis
 Structure présente chez tous les membres du complexe M.
tuberculosis
 Marqueur génétique assez polymorphe pour différencier
les souches
 1996 : Le spoligotypage pour le typage épidémiologique de
M. tuberculosis (Membrane d’oligonuclétides composée de
43 spacers)
 Obeservations chez les archées :
 2 Haloferax volcanii et H. mediterranei (Mojica et col. 1993, 1995)
 Sulfolobus (She 1994)
4
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
L’acronyme CRISPR





TREP Tandem Repeat
SRSR Short Regularly Spaced Repeats
DVR Direct Variable Repeat
LCTR Long Cluster of Tandem Repeat
SPIDR Spacers Interspaced Direct Repeats
 CRISPR Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeat
Jansen 2002
 E. coli
 DR : 29bp, spacer : 32-33pb
 CGGTTTATCCCCGCTGGCGCGGGGAACTC
 H. mediterranei et H. volcanii
 DR : 30bp, spacer : 33-39pb
 GTTACAGACGAACCCTAGTTGGGTTGAAGC
 M. tuberculosis
 DR : 36pb spacer : 35-41pb
 GTCGTCAGACCCAAAACCCCGAGAGGGGACGGAAAC
5
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Un groupe de gènes associés
Le système CASS : CRISPR + cas
gènes cas
spacers
Leader
DR
Jansen 2002
 cas1 : réparation de l’ADN
 cas2 : transposase
 cas3 : hélicase
 cas4 : recB exonuclease
Makarova 2002
20 gènes impliqués dans la réparation de l’ADN
 Etude phylogénétique des gènes cas
 Présence du même DR chez des espèces éloignées
Transfert horizontal
6
DR dégénéré
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Transcription du locus CRISPR
Tang et col. PNAS 2002
Identification of 86 candidates for small non-messenger RNAs from the
archeon Archaeoglobus fulgidus.
7
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Origine des spacers
2005 : origine des spacers et suggestions sur le rôle du CRISPR
Mojica 2005
Pourcel 2005
Bolotin 2005
67
procaryotes
Yersinia pestis
Y. pseudotuberculosis
Streptococcus pyogenes
Streptococcus
thermophilus
S. vestibularis
 Acquisition du spacer à partir d’éléments génétiques
préexistants d’origine extrachromosomique (phages,
plasmides) ou chromosomique
Génomes
analysés
Spacers
analysés
Spacers
reconnus
phages
67
4500
88 (2%)
47 (54%)
plasmides
chromosome
(Mojica 2005)
10 (11%)
31 (35%)
 Corrélation avec la résistance aux phages
Hypothèse : Le CRISPR est un système immunitaire chez les
procaryotes utilisant l’interférence ARN
8
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Un système de résistance par interférence ARN
Modèle d’action du CRISPR
Leader
sp4
sp3
DR
sp2
sp1 DR’
Transcription
ARN
Cas
Cas
sRNA
Protéines Cas
phage
Cas
sRNA
ADN invasif
Dégradation du phage
9
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Evolution de la structure CRISPR
 Acquisition polarisée adjacente à la séquence leader
 Perte interstitielle de spacers
 Les spacers communs renseignent sur un ancêtre commun
ADN invasif
+
+
=
Cas
Cas
Leader
Leader
sp4
sp3
DR
sp2
sp1 DR’
sp3
DR
sp2
sp1 DR’
Le polymorphisme des spacers est un indicateur phylogénétique
10
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Problématique
 Comprendre l’organisation de la structure CRISPR
 Comprendre l’origine et le rôle du CRISPR
 Comprendre le fonctionnement du CRISPR et son
parcours évolutif
 Outil de génotypage : le CRISPR comme marqueur
de microévolution?
 Transfert horizontal : détermination de la structure
minimale transposée chez différentes bactéries
 Transposition des CRISPRs et des séquences
adjacentes sur le même génome
Outils informatiques pour faciliter l’exploration, la compréhension
et l’utilisation des CRISPRs
11
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
PLAN
 Introduction : Les CRISPRs avant 2006
Etat des lieux jusqu’à fin 2005
But de la thèse
 Résultats
Investigation des CRISPRs
Le CRISPR pour la phylogénie
 Discussion
Investigations du CRISPR
Utilisation du CRISPR pour la phylogénie
 Perspectives
 Les metagenomes
12
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Outils informatiques créés
Analyse systématique
de tous les CRISPRs
des génomes séquencés
Données Gold Oct. 2005
Utilisation
du CRISPR
pour
315 génomes
complets
la phylogénie intra-espèce
804 procaryotes en cours
• Créer une base de données
• Analyse de la microévolution
Analyser les séquences flanquantes
Comparaison des CRISPRs
Identifier les spacers
Construire un catalogue par espèce
Stocker les DR
Stocker les spacers (tronçons de virus)
Effectuer des BLAST
CRISPRdb
CRISPRcompar
Identifier les CRISPRs
13
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Les programmes utilisés
Patscan
p1=24...47 15...70 p1
 Programmes non spécifiques aux CRISPRs
 Besoin de traitement manuel supplémentaire
Repeat
size
TRF
Consensus pattern (60 bp):
Besoin d’automatisation
GTGTTCCCCGCGCATCGCGGGGGTTGAAGGGTCAGGTCTGCATCAACGATCGCCCACTCC
Définition des limites du DR
14
REPuter
Start position
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
a
A
b
Création de CRISPRFinder
c
A
d
Utilisation de Vmatch (Reputer)
-Liste des répétitions maximales ayant une
taille bien définie, séparées par des séquences
de taille prédéfinie
15
CRISPRFinder
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
CRISPRFinder : difficultés (1)
!
Y. pestis C092
Positions : 1773655-1773862
Les bornes du DR: DR consensus
29 pb
GTTCACTGCCGCACAGGCAGCTTAGAAA ATGTTCGACGATTTATTTTATTTGTATTTCAG
GTTCACTGCCGCACAGGCAGCTTAGAAA ATTTATTAAAGATGCTGACAAAAAGAACTTAA
GTTCACTGCCGCACAGGCAGCTTAGAAA GTCAACGCTTCACTCCCTGCGCGGGGTATAAC
GTTCACTGCCGCACAGGCAGCCCAATAA
La taille des spacers
Clostridium botulinum A3
Positions : 131045- 131754
16
30 pb
Entre 21 et 37 pb
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
CRISPRFinder : difficultés (2)
(4626121)
1
2
3
4
5
6
Shewanella sp. ANA-3 (CRISPR_2)
AGGTTTTGCTGCCTTTTCGGCGGGTATC
** **
*
*
**
ATTTTCAGCTGCCTATTCGGCAGGTCAC
ATTTTCAGCTGCCTATTCGGCAGGTCAC
ATTTTCAGCTGCCTATTCGGCAGGTCAC
ATTTTCAGCTGCCTATTCGGCAGGTCAC
ATTTTCAGCTGCCTATTCGGCAGGTCAC
TCAAAGTCAACTTGTAAATGACGATTTTCACG
32
AGTTTGGGGCTGAGTTTGCCATTTTCCTAAAT
GATGAAGCAGACCACCTCGATTACCCCACGCT
ACTATTTATCAAGACCTTCTTTAAAATCAAAC
AGTTTGGGGCTGAGTTTGCCATTTTCCTAAAC
(4626448)
32
32
32
32
Yersinia pestis KIM (CRISPR_4)
(2875721)
1 TTATTGGGCTGCCTGTGCGGCAGTGAAC
** **
2 TTTCTAAGCTGCCTGTGCGGCAGTGAAC
3 TTTCTAAGCTGCCTGTGCGGCAGTGAAC
4 TTTCTAAGCTGCCTGTGCGGCAGTGAAC
Le DR dégénéré
(32702)
7
8
9
10
17
GTTATACCCCGCGCAGGGAGTGAAGCGTTGAC
32
TTAAGTTCTTTTTGTCAGCATCTTTAATAAAT
CTGAAATACAAATAAAATAAATCGTCGAACAT
(2875928)
32
32
Sulfolobus tokodaii str. 7 (CRISPR_2)
GATGAATCCCAAAAGGAATTGAAAG
GATGAATCCCAAAAGGAATTGAAAG
GATGAATCCCAAAAGGAATTGAAAG
GATGAATCCCAAAAGGAATTGAAAG
TGATTGATCACAATGAGAAGACTGTAAAGCTGATAAAC
TGTTGAGGCATAAATTAATCTATCCTTAATGAAAAAT
TTCTTCCTCAGCCTCCATTTTGTTTATGATTTGTAGTGCC
TTCAATAATCTCTATCTTTCCAAAATCTGTAAATGAAGAC
38
37
40
40
109 GATGAATCCCAAAAGGAATTGAAAG AAAGCACAGTCAATAACGTTATCTGGTATCATATTATCAAA 41
110 GATGAATCCCAAAAGGAATTGAAAG CTTTCTCCTTCCCTCTGATCTCTCGCTGAATTGAAAAGA 39
111 GATGAATCCCAAAAGGAATTGAAAG GTAAGTATTGATGCTAACATTGACTTCGCTGTCCCAGGGGC 41
112 GATGAATCCCAAAAGGAATTGAAGG AAGTATAATAACGATAGTACTAAAATTAATTGATCC
36
* *
***
113 GATGATTCTCAAAAGGAATTGATAA (39896)
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
CRISPRFinder : difficultés (3)
Les petits CRISPRs
Aquifex aeolicus VF5
NC_000818_6, positions : 988518-988611
GTTCCTAATGTACCGTGTGGAGTTGAAAC TTTTCGTAAGCTCTTGAAGCGCTTGTTTAAGTTCCT
GTTCCTAATGTACCGTGTGGAGTTGAAAC
Alignement des leader
18
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Les grandes étapes de CRISPRFinder
Sequence(s)
Localisations possibles
25bp - 60bp
DR
DR
23bp - 55bp
Répétition maximale
?
Identification des DR candidats
CRISPRs
confirmés
CRISPRs
putatifs
Vérification de la structure
[0.6DR - 2.5DR]
DR’
[
19
2
3
DR , DR ]
DR
23bp - 55bp
DR
Vérification
des DR aux
extrémités
Elimination des
Répétitions en
tandem
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Création de la base CRISPRdb
Filtres ajoutés pour la base
Télécharger les génomes complets sur le site NCBI
ftp://ftp.ncbi.nih.gov/genomes/Bacteria
Appliquer CRISPRFinder
Filtres sur les CRISPRs putatifs
Blast des DR et vérification de la terminaison
Vérification de la taille des DR et spacers
Vérification manuelle
Validation
20
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Bilan CRISPRdb
Mise à jour du 05/06/2008
 Des CRISPRs de un à presque 300 motifs de long (moyenne : 23)
(22 pour les bactéries et 27 pour les archées)
 Une espèce peut posséder jusqu’à 20 CRISPRs
(Methanocaldococcus
jannaschii)
 2 ou plusieurs CRISPRs de DR identiques ou différents
 Les CRISPRs constituent presque 1% du génome qui les portent
(1,1% chez Sulfolobus tokodaii)
 Les souches d’une même espèce ne partagent pas toujours les
mêmes CRISPRs
21
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
PLAN
 Introduction : Les CRISPRs avant 2006
Etat des lieux jusqu’à fin 2005
But de la thèse
 Résultats
Investigation des CRISPRs
Le CRISPR pour la phylogénie
 Discussion
Investigations du CRISPR
Utilisation du CRISPR pour la phylogénie
 Perspectives
 Améliorer
les outils
Les metagenomes
 Les métagénomes
22
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Le CRISPR pour la phylogénie intra-espèce
 Mécanisme d’évolution par délétion ou par
insertion polarisée
 Analyse de multiples allèles de différentes
souches pour un locus CRISPR donné
Lorsque l’espèce contient un ou plusieurs CRISPRs
Lorsque le CRISPR présente un polymorphisme intraespèce important
 Espèces jeunes (Y. pestis, M. tuberculosis) ou complexes
clonaux (Pseudomonas aeruginosa) contrairement aux
espèces plus anciennes (Y. pseudotuberculosis, M. canetti)
23
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Investigations (1)
 Identification d’un (plusieurs)
CRISPRs
 Consultation de la base CRISPRdb
 Utilisation de CRISPRFinder
 Quantifier le polymorphisme du
CRISPR
 Utilisation de CRISPRcomparison
 MyCRISPRdb
24
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Investigations (3)
 Choisir les amorces PCR : 20-30pb à
40 pb du CRISPR
 Flankalign
 CRISPRcomparison
Leader
F1
sp4
sp3
DR
sp2
R1
 Manipulations techniques sur une collection
représentative d’une espèce (amplification PCR
et séquençage)
25
sp1 DR’
R2
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
26
Analyse des données (1)
 Constituer un catalogue de spacers
http://crispr.u-psud.fr/crispr/Dict/Dict.php
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Analyse des données (2)
Fichiers de sortie
TableCodedAlleles
Organisation des locus CRISPR dans six souches Y. pestis
Strain
Microtus
CO92
KIM
Antiqua
Nepal516
Pestoides-F
Ref-Seq
NC_005810
NC_003143
NC_004088
NC_008150
NC_008149
NC_009381
Fichier binaire
27
1
1
1
1
1
1
1
2
3
1
1
1
1
1
1
1
1
4
1
1
Spacers
5
6
1
1
1
1
1
1
7
8
1
1
9
10
1
1
11
1
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
PLAN
 Introduction : Les CRISPRs avant 2006
Etat des lieux jusqu’à fin 2005
But de la thèse
 Résultats
Investigation des CRISPRs
Le CRISPR pour la phylogénie
 Discussion
Investigations du CRISPR
Utilisation du CRISPR pour la phylogénie
 Perspectives
 Améliorations
Les metagenomes
des outils
 Les métagénomes
28
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Comparaison de PILER-CR, CRT et CRISPRFinder
CRT
PILER-CR
 Rapidité
Rapidité
Peu de faux positifs  Trouver le DR dégénéré
 Définition du DR consensus
Mais
DR dégénéré
DR consensus
Petits CRISPRs
29
Faux positifs
Chevauchement de CRISPRs
Plusieurs propositions
Petits CRISPRs
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Comparaison de PILER-CR, CRT et CRISPRFinder
Streptococcus sanguinis SK36,
30
TTTGCAGTCCCCTCTCGAGGTGACTGGGG
GTTTCCGTCCCCTCTCGAGGTGATTGGGG
ATTTCTGTCCTCTTTAGAGGTGAATTGGG
GTTTCCGTCCCCTTTCGAGGTAACTGGGG
GTTTCCGCCCCCTTTCGAGGTGACTGGGG
GTTTCCGCCCCCTCTCGAGGTGACTGGGG
GTTTCCGTTCCCTCTCGAGGTGAATGGGG
GTTTCAGTACCCTCCCGAGGTCACTGGGG
GTTTCCGCCCCCTCTCGAGGTGAATGGGA
GTTTTCGTCCCCTCCCGAGGTGAATGGGG
GTTTCCGTACCCTCTCGAAGTGAATGGGG
GTTTCCGTACCCTCGCGAGATGAATGGAG
GTTCCCGTACCCTATCGAGCTGACTGGGG
TTTTCCGTACCCTTCCGAGGTGAATGGGG
GTTTCCGTCCCCTCTCGAGGTGTTTGAGG
GTTTCCGTACCCTTGCGAGATAACCGAGA
GTTTCCGCCCCCTCGCGAGGTGATTGGGG
GTTCCCGTACCCTCCCGAGGAGACTGGGG
GTTTCCGTACCCTCCCGAGGAGACTGAGG
TTTTCCGTCCCCTCTCAAGGAGACTGGGA
GTTTCCGCCCCCTCCCGAGGTGAATGGGA
TTTCTGACATAATCAGGATGGTGTTTATAGTTATGCAGAAAAAGG
GTTCTAAATGTTTTGAAGATGTTTCTATGAATCCATCTAGTAT
GTTGTTACAAACCTATTTACATATAAGTTTCTAGGTAGTAAGTA
TGAATTACTGATTACATTGTATTTAAAAATCATTGGTCTAGCGGA
GTTCTAACAGACTAGAGTATTACAGTTACCGAGAACAAACAGACAT
GGTCTTACCTATCTTGCTGCTGTTCTTATACACGCTAATGCCGTCTA
GTTCTTACAAAATATACTACCGAAGTAAAAGTAGGTAACATTTCATA
GTTCTTACTGAAGCGCTCACATCTAACTCCAAATTAAAGCAA
GGTCTTACGAAAGCCAGGAAGACCTAAAGGAAGGACAAAATTTCC
GGTCTTACATCGCTTGAAACTAAAAGATAGTTATTTTGGAGAAGAA
ATTCTTACGCTAGAAAATTGAAACAACAACGTAAAACCTCC
TTCTTACACAAAGACGAACACGGCGTATCTCAATTAGGACTTA
TTTCTTACAAAGACGTTGCTGTTCCTGTCCTTATTGGCGTTACTAG
GTTCTGACCGATTGAGAGTAAAGAGGGCGAAGAAAACTGCTAG
TTTCTTACTCAAACTGTACCTAACCTTTATACAGAAGAGAATAT
GCTCTCACATAAAGTAGAGATTGTCAAGACTTAAATGAGCAAG
TGTCTTACATTCAGGCATTGGAATTTTAGAACTTGATGATTT
GTTCTAACCTTTTGACAAAAAACTAGATACTGAATATCTGGAACT
GTTCTTACCAAGACAAAGTTGAAGTGTCTGAAGACTTCCTGGC
GGTCTTACAAGCTTGCTCACTATGTCTATGAGACTAAGACCTATTT
PILER-CR
CRT
NON
NON
Oui, mais
Oui, mais
NON
NON
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Problématique
 Comprendre l’organisation de la structure CRISPR
 Comprendre l’origine et le rôle du CRISPR
 Comprendre le fonctionnement du CRISPR et son
parcours évolutif
 Outil de génotypage : le CRISPR comme marqueur
de microévolution?
 Transfert horizontal : détermination de la structure
minimale transposée chez différentes bactéries
 Transposition des CRISPRs et des séquences
adjacentes sur le même génome
31
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Organisation du CRISPR (1)
DR
Le DR :
DR
Taille : 23-47pb, terminaison particulière : (C/G)AA(A)(G/C)
Espèce
Bacteroides fragilis
Streptococcus pyogenes
Escherichia coli
Yersinia pestis
Pyrobaculum aerophilum
taille
47
36
36
29
28
25
DR
GCTGTTTCCAATGGTTCAAAGATACTAATTTGAAAGCAAATCACAAC
GTTTTAGAGCTATGCTGTTTTGAATGGTCCCAAAAC
GTCGTCAGACCCAAAACCCCGAGAGGGGACGGAAAC
CGGTTTATCCCCGCTGGCGCGGGGAACTC
GTTCACTGCCGCACAGGCAGCTTAGAAA
CCAGAAATCAAAAGATAGTTGAAAC
Thermotoga petrophila
30
GTTTCAATAGTTCCTTAGAGGTATGGAAAC
Mycobacterium tuberculosis
Structure secondaire (kunin 2008)
Clustering des DR (12 groupes)
(kunin 2008, Horvath 2008)
 Diversité d’un CRISPR à l’autre (533 DR distincts pour 873 CRISPRs)
 Conservation presque parfaite au sein d’un même CRISPR
32
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Organisation du CRISPR (1)
DR
Thermoproteus neutrophilus
GAATCTCAAGTTGAGGATTGAAAG CGATCAGCTTGACGATCGTGGAGTGTATTACCGACTTCTGCTCCTCGG
GAATCTCAAGTTGAGGATTGAAAG CGTAGTGGTAATCTCTAATCTCTCTAATGATGTCCTCATTCTCCA
GAATCTCAAGTTGAGGATTGAAAG CTTCATGACCGCATTAAATATATCGGGGTCTTGCATTGCTAC
GAATCTCAAGTTGAGGATTGAAAG CCTCGAGGAAGGCGTGGGGATCCCTGGCCAGCAGCTCAGCC
GAATCTCAAGTTGAGGATTGAAAG
TTTAACCGCAGAAACTTGTCGATAACTGAAAAAACGGGGTTG
Verminephrobacter
eiseniae : 294 DRs exactement identiques
GAATCTCAAGTTGAGGATTGAAAG TTGTACTCTTATAGAAACGTATTGTGGCCACCTTACGGCGGAGTG
GAATCTCAAGTTGAGGATTGAAAG CAGTCTCCGCGGATGCTTGTGCATCGTTCGGCGCCGACAACTCA
GAATCTCAAGTTGAGGATTGAAAG ATCTTCACAGCGTAGTACACCTGCGTGTGGCTGAGGGAGAG
GAATCTCAAGTTGAGGATTGAAAG CGTCTAGGACGAGGGGCACTATCATTATGCGCCTGTCC
GAATCTCAAGTTGAGGATTGAAAG CTCAGCTTGTAGACGTTCTCCATGTATTCATCGATATAGTACA
GAATCTCAAGTTGAGGATTGAAAG CTCCACCAACGTCCTTATCTCTTTTAGGCATATTTCCATGTATTGG
GAATCTCAAAAAGAGGATTGAAAG CAAATACATGTAATACGTTGCAGTATTCTTATACAGCCTACTCTTTAC
GAATCTCAAAAAGAGGATTGAAAG AATTGCCCCACGACTTGGGGGAGAGAAACGGCGGCGTGGGGGT
GAATCTCAAAGAGAGGATTGAAAG AGGAGAGCGGCGTCGACGACGTCCGCCCTTCCGGGGAACTTGGGA
GAATCTCAAAAAGAGGATTGAAAG ATAACATCCATAAGGTTTATTGGTCGTGCGAATGGCACCTCTTCATTGGGCAGA
GAATCTCAAAGAGAGGATTGAAAG TCCACCACAGAGCCCGTAATTGTATACCACCGCGAATACCT
GAATCTCAAAGAGAGGATTGAAAG ATCTGTATATGCGCCAACCTGTCAATAAGCGGGTCTGCGTTTT
GAATCTCGAAGAGAGGATTGAAAG TGCACCGGAATGCACCGGAAAACCTACACTGTGCCCCTGA
GAATCTTAAGTTGAGGATTGAAAG
33
Un système de maintenance de l’intégrité du DR?
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Organisation du CRISPR (2)
DR
Les spacers :
 Taille constante ou variable
 Signature particulière sur le génome d’origine (protospacer) (Deveau 2008)
 Identification de virus à partir des spacers (Andersson,
science 2008)
 Le même spacer sur deux CRISPRs différents du
même génome ou chez des souches voisines
 Duplication ou acquisition indépendante d’un spacer
sur le même CRISPR (Horvath 2008)
 417 spacers présents en deux copies parmi 21497 (< 2%)
 89 souches parmi 712 (~13%)
34
Methanothermobacter thermautotrophicusus
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Problématique
 Comprendre l’organisation de la structure CRISPR
 Comprendre l’origine et le rôle du CRISPR
 Comprendre le fonctionnement du CRISPR et son
parcours évolutif
 Outil de génotypage : le CRISPR comme marqueur
de microévolution?
 Transfert horizontal : détermination de la structure
minimale transposée chez différentes bactéries
 Transposition des CRISPRs et des séquences
adjacentes sur le même génome
35
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Démonstration du rôle du CRISPR
Implication dans l’acquisition d’une
résistance contre les phages (Barrangou
et col., Science 2007), (Horvath 2008), (Devau
2008)
-Autre rôle?
- Régulation de certains gènes?
 Modèle interférence ARN chez les procaryotes (Makarova 2006)
36
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Problématique
 Comprendre l’organisation de la structure CRISPR
 Comprendre l’origine et le rôle du CRISPR
 Comprendre le fonctionnement du CRISPR et son
parcours évolutif
 Outil de génotypage : le CRISPR comme marqueur
de microévolution?
 Transfert horizontal : détermination de la structure
minimale transposée
 Transposition des CRISPRs et des séquences
adjacentes sur le même génome
37
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Confirmation de l’acquisition polarisée
Acquisition polarisée : (lillestol 2006), (Barrangou 2007), (Horvath 2008),
(Tyson& Banfield 2008), (Andersson 2008)
Leader
38
Le CRISPR NC_007503_3 de Carboxydothermus hydrogenoformans Z-2901.
Le DR jaune + le leader chez NC_007503_3 et NC_007503_4
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Acquisition de nouveaux motifs
Comment le dernier motif est-il ajouté?
ADN invasif
Leader
DR3
sp3
DR2
sp2
DR1
sp1 DR’
sp3
DR2
sp2
DR1
sp1 DR’
sp3
DR2
sp2
DR1
sp1 DR’
DR3
copie
sp4
Leader
DR3
copie
DR3
DR3
copie
sp4
Leader
DR3
Le DR adjacent au leader est le dernier DR acquis ou le premier DR acquis?
sp4
Leader
39
Leader
DR3
sp4
DR3
sp3
DR2
sp2
DR1
sp1 DR’
sp3
DR2
sp2
DR1
sp1 DR’
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Problématique
 Comprendre l’organisation de la structure CRISPR
 Comprendre l’origine et le rôle du CRISPR
 Comprendre le fonctionnement du CRISPR et son
parcours évolutif
 Outil de génotypage : le CRISPR comme marqueur
de microévolution?
 Transfert horizontal : détermination de la structure
minimale transposée chez différentes bactéries
 Transposition des CRISPRs et des séquences
adjacentes sur le même génome
40
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Le CRISPR comme marqueur phylogénétique
 Avantages:
 Facilité technique (PCR ou spoligotypage)
 Rapidité
 Importation et échangeabilité inter-laboratoires
 Limites:
 60% des bactéries n’ont pas de CRISPR
 Acquisition indépendante du même spacer
 CRISPR non polymorphes ou absents (Lactobacillus casei )
 CRISPR très polymorphe (Y. pseudotuberculosis, M. canettii)
 Bon outil de différenciation de souches + outil
complémentaire pour étudier la micro-évolution
41
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Problématique
 Comprendre l’organisation de la structure CRISPR
 Comprendre l’origine et le rôle du CRISPR
 Comprendre le fonctionnement du CRISPR et son
parcours évolutif
 Outil de génotypage : le CRISPR comme marqueur de
microévolution?
 Transfert horizontal : détermination de la structure
minimale transposée chez différentes bactéries
 Transposition des CRISPRs et des séquences
adjacentes sur le même génome
42
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Transfert horizontal du CRISPR
 Transport à travers les plasmides (Godde
2007)
Legionella pneumophila Lens
 Même leader et même DR
 Le même DR chez des espèces éloignées
 %GC différent du reste du génome (Horvath
2008)
43
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Problématique
 Comprendre l’organisation de la structure CRISPR
 Comprendre l’origine et le rôle du CRISPR
 Comprendre le fonctionnement du CRISPR et son
parcours évolutif
 Outil de génotypage : le CRISPR comme marqueur de
microévolution?
 Transfert horizontal : détermination de la structure
minimale transposée chez différentes bactéries
 Transposition des CRISPRs et des séquences
adjacentes sur le même génome
44
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Création d’un nouveau CRISPR
Les essaimages de CRISPRs
Un seul groupe de gènes associés
Le même DR (quelques déviations parfois)
Spacers différents
Hypothèse : structure minimale transposée
formée d’un leader et un DR
DR
DR
45
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
PLAN
 Introduction : Les CRISPRs avant 2006
Etat des lieux jusqu’à fin 2005
But de la thèse
 Résultats
Investigation des CRISPRs
Le CRISPR pour la phylogénie
 Discussion
Investigations du CRISPR
Utilisation du CRISPR pour la phylogénie
 Perspectives
Améliorations des outils
Les métagénomes
46
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Perspectives (1)
 Investigations des petits CRISPRs




Confirmation des CRISPRs putatifs (blast DR, …)
Vérifications manuelles?
Recherche des gènes cas
Recherche de proto spacer
 Epidémiologie, phylogénie (Projets en cours)
 Exploitation des données de métagénomes
 Explorer des génomes de l’environnement (communautés
multi-espèces)
 Nature des CRISPRs, statistiques, transfert horizontal…
 Exploration des phages pour chercher les proto-spacer et
identifier leurs sites de reconnaissance
 Stockage des DR et des spacers avec possibilité de BLAST
47
 Introduction
 Résultats
 Discussion
 Perspectives
Perspectives (2)
 Diversité des DR : 24-43 pb
 Nombre de motifs : jusqu’à plus de 250 motifs
48
Institut de Génétique
et Microbiologie
LES CRISPRS, INSTRUMENTS D'ETUDE DE
L'EVOLUTION INTER ET INTRASPÉCIFIQUE CHEZ LES MICROORGANISMES
Ibtissem GRISSA
Soutenance de thèse, le 24 Juin 2008, IGM
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