diagnostic ecologique
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Master 1 Gestion et Conservation de la Biodiversité Evaluation de la qualité de l’eau de la rivière du Kerrus Basé sur l’étude des populations piscicoles et des macro-invertébrés Estelle URIEN et Morgan TRIQUENEAUX 12/02/2016 0 TABLE DES MATIERES Introduction............................................................................................................................................. 1 Matériel et méthode ............................................................................................................................... 3 1. Site ............................................................................................................................................... 3 2. Etude du milieu aquatique à travers son peuplement et ses populations de poissons.............. 4 A. Pêche électrique ...................................................................................................................... 4 B. Scalimétrie ............................................................................................................................... 6 C. Analyse des cohortes par le modèle de Bhattacharya ............................................................ 7 D. Analyses statistiques ............................................................................................................... 7 E. Différents indices..................................................................................................................... 8 F. Indice Poissons Rivière (IPR) .................................................................................................... 9 3. Etude du milieu aquatique à travers son peuplement de macro-invertébrés .......................... 10 A. Indice Biologique Global Normalisé (IBGN) ........................................................................... 10 B. Coefficient d’Aptitude Biogène (Cb2).................................................................................... 11 C. Indice habitat « m » ............................................................................................................... 12 Résultats ................................................................................................................................................ 13 1. Pêche électrique ........................................................................................................................ 13 A. Nombre d’individu échantillonné sur la rivière du Kerrus .................................................... 13 B. Identification des différentes cohortes avec les individus capturés du Kerrus..................... 14 C. Répartition des espèces selon l’habitat ................................................................................ 15 D. Indice Poisson Rivière (IPR) ................................................................................................... 19 2. 3. Les indices.................................................................................................................................. 19 A. Indice Biologique Global Normalisé (IBGN) ........................................................................... 19 B. Coefficient d’Aptitude Biogène (Cb2) et indice d’habitat « m » ........................................... 19 C. Indices de Shannon Weaver et d’équitabilité J de Pielou ..................................................... 20 D. Indice de Simpson ................................................................................................................. 20 E. Indice de Hill .......................................................................................................................... 20 Tests physico-chimiques............................................................................................................ 21 Discussion .............................................................................................................................................. 22 Bibliographie.......................................................................................................................................... 27 Annexes ................................................................................................................................................. 29 Figure 1 : Carte des bassins versants de Bretagne .................................................................................. 1 Figure 2 : Bassin versant de l'Horn avec en rouge l'affluent du Kerrus................................................... 2 Figure 3 : Schéma de la zone d'échantillonage (couple substrat/vitesse) .............................................. 3 Figure 4 : Zone de prélèvement et de mesure des écailles pour la scalimétrie ...................................... 5 Figure 5 : Principe de la scalimétrie ........................................................................................................ 6 Figure 6 : Tableau des classe de qualité définies en fonction de la note de l'ipr .................................... 9 Figure 7 : Classes de qualités en fonction de la note ibgn .................................................................... 11 Figure 8 : Proportions des espèces présentes sur le site ...................................................................... 13 Figure 9 : Fréquence des truites en fonction de la taille ....................................................................... 14 Figure 10 : Analyse en Composantes Principales pour les differents peuplements ............................. 17 Figure 11 : Analyse en Composantes Principales pour Salmu trutta .................................................... 18 Figure 12 : Tableau des classes en fonction des notes IBGN ................................................................ 19 Figure 13 : Différentes classes d'habitabilité en fonction de la note .................................................... 20 Figure 14 : Cycle biologique de la Truitte .............................................................................................. 23 Figure 15 : Nitrates dans les eaux brutes au point de prélèvement en 2007 ....................................... 26 Tableau 1 : Nombre d'individu échantilloné sur le Kerrus .................................................................... 13 Tableau 2 : Résultat de l'IPR du Kerrus.................................................................................................. 19 Tableau 3 : Données physicochimiques ................................................................................................ 21 Annexe 1 : Liste des 138 taxons utilisés dans le protocole de l'IBGN ................................................... 29 Annexe 2 : Valeur de la note selon les taxons de macroinvertébré benthique .................................... 30 Annexe 3 : Grille de calcul de l'indice habitat "m" ................................................................................ 30 Annexe 4 : Fiche du Coefficient d'Aptitude Biogène ............................................................................. 32 Annexe 5 : Système d'Evaluation de la Qualité de l'Eau ....................................................................... 34 INTRODUCTION La Bretagne possède un réseau hydrographique important favorisé par un fort ruissellement d’eau de surface. Ce réseau s’étend sur 30 000km et se découpe en 50 bassins versants dont 5 d’entre eux occupent 55% du territoire breton (bretagne-environnement.org, 2007). Le bassin versant de l’Horn correspond aux bassins hydrographiques de l’Horn, du Kerralé, du Guillec et des ruisseaux côtiers compris entre Roscoff et l’anse de Goulven (Figure 1). FIGURE 1 : CARTE DES BASSINS VERSANTS DE BRETAGNE L’Horn, d’une longueur de 29,9 km prend sa source dans la commune de Plouvorn à une altitude de 119 mètres et se jette dans la Manche à quelques kilomètres du Guillec, près de la forêt domaniale de Santec (Gralon, 2016 ; Eau Loire Bretagne 2015). Trois sites Natura 2000 sont présents dans ce bassin versant formant ainsi un habitat favorable à la présence de différentes espèces piscicoles telles que Salmo trutta, Phoxinus phoxinus ou Platichthys flesus. Les Salmonidés présents dans ce bassin, comme le Saumon d’Atlantique, sont des espèces migratrices effectuant une partie de leur cycle biologique dans les rivières et l’autre partie dans les milieux marins. Les adultes possèdent un mécanisme d’orientation appelé « homing » leur permettant 1 de retourner dans leur rivière d’origine pour se reproduire dans des habitats tels que les radiers ou les rapides. La ponte s’y effectue entre novembre et janvier et le développement des juvéniles dès la mimars (FEDE Pêche 29, 2014). Le Saumon Atlantique est vulnérable face aux nombreuses menaces, surtout anthropiques (pollutions, barrage, …). Ces perturbations réduisent la reproduction dans les eaux douces et impact l’ensemble des populations, y compris celles en mer. Cette espèce, d’intérêt halieutique et patrimonial, semble importante à conserver en préservant leurs habitats des dégradations. Afin de restaurer les cours d’eau du bassin de l’Horn, le syndicat mixte de production et de transport d’eau a mis en place un programme d’envergure dans le cadre d’un contrat de restauration et d’entretien des rivières. Le syndicat a remplacé, aménagé, voir supprimé une cinquantaine d’ouvrages, seuils de moulins et barrages pouvant être infranchissable pour la faune piscicole. Le Kerrus est une rivière d’ordre 2 du bassin versant de l’Horn au niveau de l’affluant du Kerrus à proximité du lieu-dit de Kermoguéné près de Plounévez-Lochrist (Figure 2). FIGURE 2 : BASSIN VERSANT DE L'HORN AVEC EN ROUGE L'AFFLUENT DU KERRUS Dans l’objectif de s’interroger sur l’aptitude de cette rivière à accueillir ces différents peuplements, un diagnostic environnement de la rivière du Kerrus est établi à partir de la structure des populations, de l’abondance des macro-invertébrés et des paramètres physico-chimiques. MATERIEL ET METHODE 1. SITE Le diagnostic de la qualité de l’eau a eu lieu le 6 octobre 2015 sur la rivière du Kerrus, affluant du bassin versant de l’Horn, à pente et profondeur faibles, se situant à 8,5 km de sa source, avec une altitude de 30m au-dessus du niveau de la mer. L’opération de pêche électrique se fait en fonction du cycle biologique des truites. Les fraies s’effectuent entre novembre et janvier dans les sédiments et l’émergence des alevins se fait environ fin mars. Septembre était une période optimale afin de ne pas déranger les périodes de ponte et permet de trouver des individus de l’année passée assez grand. L’échantillonnage pour l’IBGN a été effectué sur environ 100m alors que la pêche électrique s’est déroulée sur 300m (Figure 3). De plus, une mesure physico-chimique (pH, conductivité et oxygène dissout) a été enregistrée en amont de la zone d’échantillonnage. Ces paramètres peuvent être utilisés pour le Système d’Evaluation de la Qualité de l’Eau (SEQ-Eau), et peuvent être comparé avec la grille d’évaluation du SEQ-Eau permettant une première approche pour qualifier la qualité physico-chimique du cours d’eau. FIGURE 3 : SCHEMA DE LA ZONE D'ECHANTILLONAGE (COUPLE SUBSTRAT/VITESSE) 2. ETUDE DU MILIEU AQUATIQUE A TRAVERS SON PEUPLEMENT ET SES POPULATIONS DE POISSONS A. PECHE ELECTRIQUE Matériel utilisé : - Appareil portatif de pêche électrique type « Martin-pêcheur » composé d’une anode et d’une cathode (tresse de cuivre) permettant de créer un champ électrique dans une zone active d’environ un mètre autour de l’anode - Perche afin de mesurer la profondeur - Sonde multi-paramètre pour mesure la vitesse du courant et du pH - Haveneaux - Paires de gants en caoutchouc - Waders - Plusieurs seaux - Gouttière graduée pour mesurer les individus - Pinces et lames afin de prélever et conserver les écailles - Lames de microscope - Rouleaux de ruban adhésif - Crayon gris, papier, planche pour noter - Fiche de terrain - Pissettes d’alcool - Marqueurs indélébiles - Mallette de dosage des paramètres physico-chimiques classiques de l'eau La pêche électrique se déroule de l’aval vers l’amont, c’est-à-dire dans le sens contraire du courant, afin de ne pas échantillonner deux fois les mêmes individus. Les lieux d’échantillonnage sont choisis aléatoirement avec une distance a peu près égale entre chaque point. Afin d’effectuer l’échantillonnage de poissons dans les réseaux fluviaux, il est possible d’utiliser plusieurs techniques comme des filets fixés ou dérivants, des nasses, des chaluts, voire même des sennes de plages. Cependant, ce sont des procédés difficiles à mettre en place, coûteux et surtout invasifs. Lors de cette étude, le choix de la pêche électrique a été privilégié car celle-ci n’est ni sélective, ni invasive. La pêche électrique est une technique de pêche dans le but de prélever des poissons à l’aide d’un courant électrique immergé dans l’eau à l’aide d’une cathode fixe et d’une anode mobile. Les poissons sont attirés par la dépolarisation (électrotaxie) puis tombent en narcose par le champ magnétique avant de remonter à la surface. Ils peuvent alors être capturés à l’aide d’un haveneau. Des waders et des gants en caoutchouc sont nécessaires pour ces protagonistes-ci, afin de ne pas s’électrocuter. Avant de terminer l’échantillonnage sur un point, il faut définir visuellement les abris, le substrat et le faciès comme décrits précédemment ainsi que la hauteur d’eau et la vitesse du courant. Une mallette de dosage des paramètres physico-chimiques classiques de l'eau est nécessaire pour relever la température, la conductivité, le pH, et l’oxygène dissous. Les Echantillonnages Ponctuels d’Abondances (EPA) nécessitent une équipe de plusieurs personnes : - Une personne en charge du matériel électrique - Deux pêcheurs à l’arrière, avec des haveneaux, afin de récupérer les poissons - Un dernier pêcheur en aval avec un autre haveneau - Une à deux personnes afin de récupérer les seaux avec les individus pour ensuite les identifier, les mesurer, prélever des écailles et relâcher les poissons - Une personne pour relever les caractéristiques de chaque zone Après leur capture, les poissons sont amenés dans un seau au poste de mesure et de prélèvement. Chaque individu est mesuré à l’aide d’une gouttière graduée et un prélèvement d’écaille est effectué avant qu’il soit relâché. Le temps de manipulation des poissons doit être le plus court possible. Une fois les écailles prélevées à l’aide de pinces fines entre la ligne latérale et la nageoire caudale (Figure 4), celles-ci sont placées entre deux lames de verre pour la scalimétrie. Les pinces doivent être rincées entre chaque poisson pour éviter d’éventuelles contaminations. FIGURE 4 : ZONE DE PRELEVEMENT ET DE MESURE DES ECAILLES POUR LA SCALIMETRIE B. SCALIMETRIE Matériel utilisé : - Pinces fines - Lames et lamelles - Microscope - Mélange de KOH et eau Après le prélèvement des écailles, une étude scalimétrique, c’est-à-dire la détermination de l’âge par lecture des écailles, permet de valider ou non l’établissement de différentes cohortes des espèces piscicoles, comme Salmo trutta fario, à partir de la distribution de la fréquence de taille des individus (Meunier, 1987). Les écailles font partie du squelette superficiel des poissons et ont pour fonction principal d’améliorer l’hydrodynamisme mais ont aussi un rôle de défense ou de dissimulation. Les écailles croient au cours de la vie du poisson par un rythme saisonnier (Lavoie et Hubert, 1996), notamment lié à la température, avec des alternances de croissance plus ou moins rapide (Prouzet et al., 1977). L’accroissement des écailles se fait par couches successives qui représentent des stries de croissance concentriques et parallèles appelés curculi. Au cours de la vie des poissons, la croissance ralentit et accélère annuellement au rythme des saisons, avec une augmentation de la croissance lors du réchauffement des eaux entre le printemps et l’été, ainsi qu’une diminution de la croissance lors du refroidissement entre l’automne et l’hiver. En hiver, la croissance d’une écaille est ralentie et se traduit alors par un resserrement des circuli formant alors une zone plus foncée appelée annulus. Les variations de croissance et changements environnementaux sont donc marqués et lisibles sur les écailles, il est donc possible de visualiser chacun de ces événements survenus au cours de la vie du poisson. Ainsi, il est possible de lire l’histoire biologique et environnementale de chaque individu, de plus le nombre d’annuli correspond au nombre d’hiver passé et donc à l’âge du poisson (Figure 5). FIGURE 5 : PRINCIPE DE LA SCALIMETRIE Pour que l’estimation de l’âge du spécimen soit correcte, il est nécessaire de prélever plusieurs érailles sur un même individu (Mahé et al., 2009 ; Deschamps, 2012). Mais il est tout de même préférable de minimiser le nombre d’écaille prélevé sur le poisson. Avant d’effectuer le prélèvement et entre chaque manipulation, il est primordial de vérifier la propreté des instruments utilisés pour éviter toute contamination. Le prélèvement des écailles s’effectue avec des pinces fines. Les écailles sont ensuite disposées entre deux lames de microscope, entouré de ruban adhésif, et conservées dans un endroit sec. La lecture des écailles se fait plus tard en salle, à l’aide d’un microscope. Pour éviter les erreurs d’interprétation il est important d’observer plusieurs écailles pour chaque individu prélevé. En effet, une écaille régénérée (suite à une blessure) a pu être prélevée et ne sera pas exploitable. Avant les observations, les écailles subissent un traitement et sont plongées dans une solution de KOH à 5% environ 15 minutes afin d’éliminer tout résidus et améliorer la lecture. Elles sont ensuite rincées à l’eau claire et séchées. Une fois sèches, les écailles sont montées entre une lame et une lamelle pour commencer la scalimétrie. C. ANALYSE DES COHORTES PAR LE MODELE DE BHATTACHARYA Cette analyse a été effectuée à l’aide du logiciel Fisat II. Les distributions des différentes cohortes sont retirées une à une de la distribution totale en débutant par les plus petites afin de linéariser les lois normales. Pour cela le log des différentes classes d’individus obtenues par les données bibliographiques, par exemple, est calculé à l’aide de droites de régression. Chaque droite va permettre de déterminer un ensemble d’individus appartenant à une cohorte. A la fin de l’analyse, plusieurs lois normales reflétant les classes d’âges de la population sont obtenues. D. ANALYSES STATISTIQUES Différentes méthodes ont été utilisées afin d’analyser l’ensemble des données. Tout d’abord, la richesse spécifique fût calculée avec les pourcentages respectifs de chaque espèce. Des diagrammes d’abondance pour les différentes variables ont été effectués afin de définir l’hétérogénéité du milieu et des préférences des espèces à l’aide du logiciel Excel. Enfin, les Analyses en Composantes Principales (ACP) ont été effectuées sur XLStat afin de traiter l’ensemble des variables quantitatives et qualitatives sous forme de matrice et de déterminer une corrélation entre les différentes populations de poissons ainsi qu’au sein même de la population de Salmo trutta fario, plus précisément les différentes cohortes et les paramètres du milieu. E. DIFFERENTS INDICES I NDICES DE S HANNON -W EAVER ET D ’ EQUITABILITE J DE P IELOU L’indice de Shannon-Weaver permet d’exprimer la diversité en prenant en compte le nombre d’espèces et l’abondance des individus au sein de chacune de ces espèces. Ainsi, une communauté dominée par une seule espèce aura un coefficient moindre qu’une communauté dont toutes les espèces sont codominantes. La valeur de l’indice varie de 0 (une seule espèce, ou bien une espèce dominant très largement les autres) à log S (lorsque toutes les espèces ont la même abondance). Où : pi = abondance proportionnelle ou pourcentage d’importance de l’espèce : pi = ni/N S = nombre total d’espèces ni = nombre d’individus d’une espèce dans l’échantillon N = nombre total d’individus de toutes les espèces dans l’échantillon Il est nécessaire de préciser la base du logarithme utilisée, la base la plus courant étant la base 2. L’indice de Shannon est souvent accompagné par l’indice d’équitabilité de Piélou : L’indice d’équitabilité permet de mesurer la répartition des individus au sein des espèces, indépendamment de la richesse spécifique. Sa valeur varie de 0 (dominance d’une des espèces) à 1 (équirépartition des individus dans les espèces). Où : H’max = log S (S=nombre total d’espèces) I NDICE DE S IMPSON Cet indice mesure la probabilité que deux individus sélectionnés au hasard appartiennent à la même espèce. Où : pi = proportion des individus dans l’espèce i ni = nombre d’individus dans l’espèce i N = nombre total d’individus I NDICE DE H ILL L’indice de Hill permet de mesurer l’abondance proportionnelle, permettant d’associer les indices de Shannon-Weaver et de Simpson. Hill = (1/L)/eH’ Où : 1/D : inverse de l’indice de Simpson eH’ : exponentiel de l’indice de Shannon-Weaver F. INDICE POISSONS RIVIERE (IPR) L’indice poisson rivière (IPR) estime la qualité d’un cours en prenant en compte les peuplements piscicoles comme descripteurs biologiques. En effet, chaque espèce de poisson possède un seuil de tolérance pour différentes perturbations, comme des pollutions, et chaque espèce va donc répondre différemment à ces changements de conditions écologiques et physico-chimiques dans le milieu. En revanche, cet indice est peu fiable lorsque le cours d’eau est pauvre en espèce. L’IPR consiste à mesurer l’écart entre la composition du peuplement de poisson sur une station donnée, observée à partir d’un échantillonnage par pêche électrique, avec la composition du peuplement attendue en situation de référence, c’est-à-dire dans des conditions pas ou très peu modifiées par l’homme (onema.fr). Cet indice permet d’évaluer le niveau d’altération des peuplements de poissons à partir d’un ensemble de sept métriques, ou caractéristiques, des peuplements. Elles sont sensibles à l’intensité des perturbations d’origines anthropiques et rendent compte notamment au niveau de la composition taxonomique, de la structure trophique et de l’abondance des espèces piscicole (onema.fr). La note de l’IPR correspond à la somme des scores obtenus par les sept caractéristiques. Quand le peuplement évalué est identique au peuplement attendu en situation de référence, la note est alors égale à zéro. En revanche, quand les caractéristiques échantillonné du se peuplement différencient du peuplement de référence, la note s’élève. Il existe 5 classes de qualité définies en fonction de la note de l’IPR (Figure 6). FIGURE 6 : TABLEAU DES CLASSE DE QUALITE DEFINIES EN FONCTION DE LA NOTE DE L'IPR Les calculs pour l’IPR peuvent être effectués à l’aide des feuilles de calcul Excel mises à disposition par le site de l’ONEMA en remplissant le tableau avec les données contextuelles, comme le nom du cours d’eau, de la station et la date de l’opération, avec les variables environnementales comme la pente du cours d’eau, sa profondeur moyenne, son altitude, les températures annuelles moyennes, etc., ainsi que les données de présence-absence et les effectifs bruts des espèces. 3. ETUDE DU MILIEU AQUATIQUE A TRAVERS SON PEUPLEMENT DE MACRO -INVERTEBRES A. INDICE BIOLOGIQUE GLOBAL NORMALISE (IBGN) L’objectif de l’Indice Biologique Global Normalisé est d’évaluer la qualité des cours d’eau en étudiant la population de macro-invertébrés présente dans différents types d’habitats appartenant au milieu étudié. L’étude des macro-invertébrés est choisie puisque ce sont de bons indicateurs biologiques et reflètent les caractéristiques des cours d’eau. En effet, certaines espèces sont sensibles à des paramètres, perturbations particulières comme la présence de polluants dans le milieu. Ainsi la présence et surtout l’absence d’une espèce indicatrice va renseigner sur la qualité et l’état de l’écosystème aquatiques évalué (Tachet et al., 1991). Détermination de 8 zones d’échantillonnage représentant des caractéristiques particulières : vitesses superficielles couplées à des substrats, des types de végétation différents. Une fois les zones repérées, un échantillonnage est effectué d’aval en amont afin de ne pas affecter les autres zones. Pour cela, un filet Surber assembler à un cadre de base de 1/20ème de m² est utilisé. Une fois cet outil posé sur la zone à échantillonner avec l’ouverture face au courant, l’observateur va gratter le substrat de la zone délimitée par le cadre afin de remettre en suspension les espèces qui vont être dirigées vers le fond du filet par la force du courant. Lorsque le prélèvement est effectué, le filet est récupéré et son contenu rincé à l’aide de passoires, ayant un maillage adapté à la taille des espèces pouvant être rencontrées, afin de ne récupérer que les macro-invertébrés et une petite quantité de substrat et/ou de végétation. L’échantillon obtenu est placé dans un bocal qui sera étiqueté (zone, date, type d’habitat, ...) L’analyse des échantillons va se faire en plusieurs étapes, en salle. Les observateurs vont tout d’abord séparer les macro-invertébrés des différents composants de l’échantillon à l’aide d’une loupe binoculaire et de pinces fines. Plonger le prélèvement dans de l’alcool 70°C peut aider à capturer les individus que ne seront alors plus mobiles. Un premier tri des individus peut ici être réalisé en fonction des ordres après un rapide regard sous la loupe. Une fois l’ensemble des bocaux analysés, les observateurs vont pouvoir déterminer soit jusqu’au genre soit jusque la famille à l’aide d’une clé de détermination, d’une loupe binoculaire et de pinces fines. Dès qu’un individu est identifié (Annexe 1), il est classé dans des piluliers, par exemple, numérotés, sachant que chaque numéro correspond à un taxon spécifique et que plusieurs individus de ce taxon peuvent donc être placés dans le même flacon. A la fin de cette étape d’identification, le calcul de la note IBGN peut être effectué. A partir des données, la variété taxonomique (St) va être déterminée selon le nombre total de taxons identifiés sur la totalité des prélèvements. De la même façon, le groupe indicateur (GI) sera calculé en fonction du taxon indicateur le plus élevé possible et présent de manière significative (3 ou 10 individus sur la totalité de la station). Avec ces deux paramètres, la note IBGN pourra être attribuée. En effet, la combinaison de la variété taxonomique et le groupe indicateur dans le tableau (Annexe 2) donne la note correspondant à la zone étudiée. Par exemple, si 41 taxons sont échantillonnés sur l’ensemble des 8 faciès et qu’au moins 10 individus appartenant au taxon Perlidae sont capturés, le groupe indicateur est le numéro 9 et la variété taxonomique correspond à une classe de variété de 12. La note IBGN sera alors de 20/20 pour la portion du cours d’eau étudié. En fonction de cette note, un code couleur indiquant la qualité du site concerné par l’étude sera attribué (Figure 7). FIGURE 7 : CLASSES DE QUALITES EN FONCTION DE LA NOTE IBGN B. COEFFICIENT D ’APTITUDE BIOGENE (CB2) Le Coefficient d’aptitude biogène Cb2 est calculé en complément de l’indice IBGN à partir des mêmes échantillons. Les principales différences de ce calcul par rapport à l’IBGN est la prise en compte d’un plus grand nombre de taxons indicateurs ainsi que le fait qu’il ne soit pas normalisé. Le Cb2 reste plus pertinent que l’IBGN et apporte des informations d’aptitude biogène du cours d’eau. C. INDICE HABITAT « M » Cet indice est un outil qui permet d’aider à l’interprétation des IBGN. L’indice habitat « m » permet de mettre en évidence la capacité d’une rivière à héberger une faune diversifiée et donc de déterminer la qualité des habitats (onema.fr). L’indice habitat est définit par les formules : m = N + P + P’ Où : N = hospitalité globale de la station (compris entre 0 et 40) P = couple substrat/vitesse dominant sur la station (compris entre 0 et 45) P’ = couple substrat/vitesse le plus élevé sur la station (compris entre 0 et 45) N = n x n’ Où : N = nombre de milieu relevés sur la station n’ = nombre de classes de vitesses inventoriées (<5ms<x<25ms) P=SxV Où : S = catégorie de milieu dominant dans la station (0<S<9) V = catégorie de vitesse dominante (0 = V = 5) P’ = S’ x V’ Où : S = catégorie de milieu avec la note la plus élevé inventorier (0 = S = 9) V = catégorie de vitesse avec la note la plus élevé (1 = V = 5) Les valeurs de S, V, S’ et V’ sont relevées dans l’annexe La qualité de l’indice d’habitat selon Verneaux (1982) est : m>16 : qualité habitats très bonne 14=m<14 : qualité habitat médiocre 10=m<12 : qualité habitat mauvaise m<10 : qualité habitat très mauvaise RESULTATS 1. PECHE ELECTRIQUE A. NOMBRE D’INDIVIDU ECHANTILLONNE SUR LA RIVIERE DU KERRUS TABLEAU 1 : NOMBRE D'INDIVIDU ECHANTILLONE SUR LE KERRUS Espèces Anguilla anguilla Platichthys flesus Rutilus rutilus Pseudorasbora parva 22 12 2 3 Représentation Nombre Espèce Nemacheilus barbatula Salmo trutta fario Salmo trutta trutta Phoxinus phoxinus Représentation Nombre 4 44 1 Anguilla anguilla 4% Platichthys flesus 24% Rutilus rutilus Pseudorasbora parva Barbatula barbatula 48% 13% Salmo trutta trutta 4% 1% 3% Salmo trutta fario 2% Phoxinus phoxinus FIGURE 8 : PROPORTIONS DES ESPECES PRESENTES SUR LE SITE 4 La diversité spécifique sur la zone d’échantillonnage indique que l’espèce la plus représentée est Salmo trutta, en particulier Salmo trutta fario (Tableau 1 et Figure 8). Elle englobe un effectif total de 45 individus soit près de 48% de l’effectif total de la pêche (44 pour Salmo trutta fario). Sa présence est signe de qualité du cours d’eau car cette espèce est considérée comme exigeante. La seconde espèce la plus présente est l’anguille (Anguilla anguilla) avec 22 individus, soit 24%. En une peu plus petite quantité, Platichthys flesus est présent à 13%, soit 12 individus. Quelques espèces ont été retrouvé dans la zone avec moins de 10 individus : Rutilus rutilus, Nemacheilus barbatuls et Phoxinus phoxinus. La présence d’une truite de mer (Salmo trutta fario) a également été recensée. Trois individus de Pseudorasbora parva, espèce invasive d’Asie de l’Est, ont été retrouvés dans la portion du cours d’eau étudié. Dans le cas de la répartition des individus de Salmo trutta fario, il est possible d’établir des classes d’âges en raison des effectifs élevés. B. IDENTIFICATION DES DIFFERENTES COHORTES AVEC LES INDIVIDUS CAPTURES DU KERRUS L’étude des différentes cohortes de la population a été réalisée grâce aux analyses scalimétriques réalisées précédemment, des relevés de taille ainsi qu’avec l’aide d’une recherche bibliographie. Ainsi, quatre cohortes distinctes ont été observées (Figure 9). FIGURE 9 : FREQUENCE DES TRUITES EN FONCTION DE LA TAILLE L’étude de la taille des différents individus échantillonnés permet de mettre en évidence la capture de quatre cohortes allant de 0+ à 3+. La cohorte 0+ est constituée d’individus de 60 à 110mm, la cohorte 1+ de 110 à 190mm, la cohorte 2+ de 190 à 240mm et enfin la cohorte 3+ de 240mm à 270mm. Il faut également mettre en évidence que la distinction en entre les cohortes 0+ et 1+ est difficile et qu’il y a un écart important entre les cohortes 1+ et 2+, surement dû à un manque d’échantillonnage. C. REPARTITION DES ESPECES SELON L’HABITAT Tous les poissons y compris Salmo trutta Proportion de poissons selon les différents abris ont tendance à se rendre dans des zones 15% possédant des abris (52%). Quand les individus 37% se dirigent vers des abris, ceux-ci vont préférentiellement choisir des abris de type 48% « rive » (37%) alors que les abris sous berge sont plus faiblement sélectionnés (15%). Rive Le graphique ci-dessus indique que la Sans Sous berge Proportion de poissons selon les différents faciès majorité des espèces y compris Salmo trutta vont 8% se répartir dans des zones de type plat courant 14% 5% (46%) ou plus faiblement dans des zones de type chenal lotique. Les chenaux lentiques sont le 46% 27% genre de faciès le moins colonisé. Mouille Chenal lentique Plat Courant Radié Chenal lotique Toutes les espèces de poissons, hormis Salmo trutta vont favoriser les milieux à courant moyen c'est-à-dire de 0.2 à 0.3 m/s (33%). Proportion de poissons selon les différentes vitesses (m/s) Cependant, les zones à courant faible à moyen 10% 11% et à courant moyen à rapide sont également colonisées à hauteur de 24% et 23% 23% 24% respectivement. Enfin les zones à très faible ou à l’inverse à sélectionnées. courant rapide sont peu 33% <0,1 0,1-0,2 0,2-0,3 0,3-0,4 >0,4 Dans le cas de Salmo trutta , les zones à courant moyen à rapide sont le plus choisies ( 38%) mais les individus se répartissent également Pourcentage de Salmo trutta en fonction de différentes vitesse (m/s) 7% 9% dans les zones de faible à moyen courant ( de 0.1 à 0.3 m/s) à hauteur de 46%. Tout comme les autres espèces présentes dans la 22% zone 38% d’échantillonnage, Salmo trutta se retrouve plus 24% faiblement aux vitesses de courant extrêmes. <0,1 0,1-0,2 0,2-0,3 0,3-0,4 >0,4 Il semble ici qu’il n’y ait pas de grande tendance quant à la répartition des espèces en Proportion de poissons selon les différentes profondeurs (cm) fonction des différentes profondeurs. Seules les 9% profondeurs de 40 à 50 cm (8%) et de 70-80 cm (9%) semblent ne pas être préférentiellement 20% 18% choisies par les espèces. 22% 24% 8% 20-30 Dans le cas de Salmo trutta, les individus semblent préférer des zones à profondeurs 30-40 40-50 50-60 60-70 70-80 Pourcentage de Salmo trutta en fonction de différentes profondeur (cm) 4% comprises entre 50 et 60cm (40%). A l’inverse, comme pour la majorité des espèces, les hauteurs 16% 20% d’eau comprises entre 70 et 80 cm ne sont pas 11% favorisées. 9% 40% [20-30] [50-60] [30-40] [60-70] [40-50] [70-80] Afin d’approfondir les résultats obtenus, une analyse statistique de Hill et Smith a été effectué. Les axes choisis sont les deux premiers car ont les meilleurs pourcentages d’information (47,16%) représentant les axes et donc avec la plus grandes qualité d’analyse pour l’ensemble des peuplements. L’ACP regroupant l’ensemble des peuplements de poissons (Figure 10), les variables qualitatives et quantitatives indique une corrélation positive entre la vitesse du courant (de façon très significative) le sable (moyennement significatif) et le fait de ne pas avoir d’abris (plutôt significatif), ainsi qu’entre les deux premiers et les excavations sous berge. Une autre corrélation positive apparait entre les chenaux lotiques (plutôt significatif), les abris sous rive (plutôt significatif), le facies de mouille (peu significatif) et les autres substrats (peu significatif). Une corrélation négative entre le faciès de plat courant (très significatif) et les abris sous rive (très significatif) est mise en évidence. Quatre rassemblements ressortent de cette analyse statistique : Le premier, TF 0+, correspondant à la première cohorte des Truites fario se retrouve davantage dans les plats courants sans trop d’abris ; Le deuxième avec TF 1+, TF 2+ et TF 3+ est très influencé par la vitesse du courant, et se retrouve dans des zones avec des abris dans les excavations sous berge comportant un substrat majoritairement sableux voire autre (Sable + roche) ; Le troisième, composé du Gardon, du Goujon et du Vairon, est fortement influencé par la hauteur d’eau ; Le dernier, composé de l’Anguille, de la Loche et du Flet, est plus affluant dans les zones de plat courant. FIGURE 10 : ANALYSE EN COMPOSANTES PRINCIPALES POUR LES DIFFERENTS PEUPLEMENTS L’ACP regroupant l’ensemble des cohortes des Truites fario (Figure 11), les variables qualitatives et quantitatives indique une corrélation très positive entre les abris sous rives et les chenaux lotiques (plutôt significatif) ainsi qu’une corrélation positive entre ces deux premiers et l’autre substrat (plutôt significatif). La hauteur d’eau et les abris dans les excavations sous berge sont aussi corrélés positivement (plutôt significatif). Une corrélation négative se distingue entre la vitesse (très significatif) et les abris dans les excavations sous berge ainsi qu’entre les plats courants (très significatif) et les autres substrats. Trois rassemblements ressortent de cette analyse statistique : Le premier, TF 0+, n’est qu’un peu influencé par le faciès en plat courant ; Le deuxième, TF 1+, est très influencé par la vitesse du courant ; Le dernier, composé de TF 2+ et TF 3+, est très influencé par la hauteur d’eau et est inféodé aux abris dans les excavations sous berge. Biplot (axes F1 et F2 : 74,19 %) 3 TF 1+ Vitesse Autre substrat 2 Rive Chenal lotique F2 (24,47 %) 1 Aucun abris 0 Sable TF 3+ TF 2+ -1 Hauteur TF 0+ -2 Berge Plat Courant -3 -4 -3 -2 -1 0 1 2 3 F1 (49,71 %) FIGURE 11 : ANALYSE EN COMPOSANTES PRINCIPALES POUR SALMU TRUTTA 4 D. INDICE POISSON RIVIERE (IPR) TABLEAU 2 : RESULTAT DE L'IPR DU KERRUS Nom du Date de Valeur de Classe de qualité cours d'eau l'opération l'IPR associée Le Kerrus 06/10/2015 11,394 2 Bonne Dans le tableau ci-dessus (Tableau 2) les résultats de l’IPR pour le Kerrus montrent que l’addition des sept métriques donne une valeur de 11,394 signifiant que la qualité de l’eau est bonne. 2. LES INDICES A. INDICE BIOLOGIQUE GLOBAL NORMALISE (IBGN) En tenant compte de la diversité taxonomique et du groupe indicateur (8), la note IBGN du milieu est de 18/20, correspondant à la classe de couleur « bleu ». Cette classe de couleur indique que la rivière est de « très bonne qualité ». Cependant, si l’attribution de la note doit se faire sur la base du groupe indicateur, la rivière est classée de « bonne qualité » (Figure 12). FIGURE 12 : TABLEAU DES CLASSES EN FONCTION DES NOTES IBGN B. COEFFICIENT D ’APTITUDE BIOGENE (CB2) ET INDICE D ’HABITAT « M » Pour appuyer le résultat obtenu lors de l’IBGN, le calcul du Cb2 permet de préciser la note. Il dépend de deux paramètres : l’indice de variété Iv (association entre la qualité de l’habitat et la richesse taxonomique) et l’indice nature In (la sensibilité des taxons à la qualité de l’eau). Ici, en calculant le coefficient d’aptitude biogène (Annexe 4), la note du milieu est de 15.46/20. Cette note indique une rivière de bonne qualité. En parallèle, l’indice d’habitabilité « m » révèle une note de 13.47 (Annexe 3). En se basant sur le tableau des différentes classes d’habilité en fonction de la note, celle-ci indique que la zone d’étude a une hospitalité médiocre pour les peuplements présents (Figure 13). FIGURE 13 : DIFFERENTES CLASSES D'HABITABILITE EN FONCTION DE LA NOTE En résumé, la zone échantillonnée est de bonne qualité à très bonne qualité mais ne fournit qu’une faible partie d’habitat aux espèces présentes. C. INDICES DE SHANNON WEAVER ET D’EQUITABILITE J DE PIELOU Afin de déterminer la diversité ichtyologique du milieu, l’indice de Shannon a été mesuré ainsi que celui de l’équitabilité de Pielou. Les résultats obtenus sont respectivement H = 1.43 et Hie = 0,69. Ces résultats montrent que les peuplements de poissons sur le site sont relativement diversifiés et les espèces présentent une abondance moyennement similaire. D. INDICE DE SIMPSON Dans le but de préciser la diversité spécifique des espèces abondantes, l’indice de Simpson peut être calculé. Ici, il est de 0.31, sachant qu’une valeur proche de 0 indique un maximum de diversité et à l’inverse une valeur proche de 1 indique une diversité minimale. Dans le cas de notre étude, la valeur de 0.31 indique qu’il y a une diversité des peuplements non négligeable et donc il y a une forte probabilité que deux individus prélevés au hasard sur le site soient de deux espèces différentes. E. INDICE DE HILL En conclusion, l’indice de Hill permettra de combiner les résultats obtenus par les indices de Shannon et de Simpson. Il prend en compte le nombre effectif d’individus très abondants et le nombre effectifs d’individus des espèces les plus rares. Plus cet indice se rapproche de 1, plus la diversité est faible. A l’aide de nos résultats, un indice de 0.353 est trouvé, la diversité du milieu est donc plutôt bonne. 3. TESTS PHYSICO-CHIMIQUES TABLEAU 3 : DONNEES PHYSICOCHIMIQUES O2 91,20% Conductimétrie 435 μS/cm pH 7,422 Salinité 0,1 Le tableau ci-dessus (Tableau 3) récapitule les données physicochimiques obtenues grâce à la mallette de dosage de ces paramètres. Une comparaison de ces données avec le tableau du système d’évaluation de la qualité de l’eau (Annexe 5) montre que le taux de saturation en oxygène est très bon puisqu’elle doit être de 90% lorsqu’une rivière est d’excellente qualité. La valeur du pH confirme cette tendance qui doit être inférieur à 8 pour une rivière d’excellente qualité. Aussi, la conductivité qui doit être comprise entre 180 et 2500 μS/cm permet également de dire que le cours d’eau est de qualité excellente. DISCUSSION Un diagnostic écologique est un outil mis en place pour estimer la qualité d’un milieu. En zone aquatique, ce diagnostic permet d’évaluer la qualité de l’eau. Une rivière est considérée comme « bonne » lorsque le bon fonctionnement des processus écologiques, les communautés aquatiques, floristiques et faunistiques sont présents et que son peuplement se maintient naturellement (SDAGE, 2011). L’échantillonnage réalisé sur la rivière du Kerrus a permis d’identifier la Truite fario (Salmo trutta fario), ainsi qu’une Truite de mer (Salmo trutta trutta), en grande proportion indiquant que le groupe piscicole dominant est composé de salmonidés (Portances conseils, 2006). La Truite est une espèce qui aime les eaux fraiches et bien oxygénées, au moins supérieur à 6 μg/L (Keith et al., 2011). La Loche franche et le Vairon sont des espèces d'accompagnement de la Truite (Portances conseils, 2006 ; Keith et al., 2011), leur présence dans la rivière est donc normale, même si la présence de la Loche traduit une charge organique importante dans l’eau (Portances conseils, 2006). La présence du Gardon peut s’expliquer par le fait que c’est une espèce très eurytope. Une autre espèce eurytope a été identifiée lors de ces différents EPA, le Goujon asiatique (Pseudorasbora parva), c’est une espèce invasive originaire d’Asie de l’Est. Cette espèce pourrait poser problème dans de nombreux cours d’eau français d’une part à cause sa très grande capacité d’adaptation pouvant l’amener à prendre la niche écologique de certaines espèces indigènes qui pourraient alors disparaitre et d’autre part à cause du parasite dont il est porteur sein mais qui augmente la mortalité chez d’autres espèces piscicoles : Sphaerothecum destruens (www.aquaportail.com). La Truite fario fait office d’espèce cible au sein des Plans Départementaux pour la Protection des milieux aquatiques et la Gestion des ressources piscicoles. Ceux-ci se basent sur l'état fonctionnel des populations de la truite fario et leur capacité à réaliser leur cycle biologique (Portances conseils, 2006) afin de juger de la qualité des cours d'eau. La proportion importante de Truites dans le peuplement du Kerrus témoigne d'une bonne qualité du système aquatique. De plus, la répartition des différentes classes de taille semble indiquer un bon recrutement. En effet, une part importante de poissons immatures, c’est-à-dire inférieur à 145 cm (Baglinièere et Maisse, 2002 ; Prouzet, 1982), sont présents dans la population de Truite et correspondent au recrutement de l’année passée. Même si un biais observateur ou une mauvaise lecture des écailles est possible, ce recrutement important s’explique par le fait que le Kerrus est une rivière pépinière. Les cohortes retrouvées lors de l’échantillonnage ne correspondent pas exactement à celle trouver théoriquement, ou sont parfois mal définis. Ceci peut surement s’expliquer par le fait que la croissance est propre à chaque habitat et donc à chaque population ou alors par une erreur lors des échantillonnages et manipulations : le nombre d’individu échantillonné était trop faible ou il y avait une mauvaise interprétation dans la lecture des écailles lors de la scalimétrie. Salmo trutta trutta est une espèce anadrome, c'est à dire qu'elle vit dans la mer mais se reproduit dans l'eau douce des rivières. Il est donc possible de rencontrer des Truites de mer dans les rivières comme celle retrouvée dans nos échantillonnages. Cette espèce peut être plus facilement rencontrée dans la station du Kerrus à Plouescat que dans la Station du Stain à Sizun du fait de la proximité de la mer à Plouescat, à environ quatre kilomètres. FIGURE 14 : CYCLE BIOLOGIQUE DE LA TRUITTE Une Analyse en Composantes Principales permet de mettre en évidence les répartitions de cohortes chez la Truite et ainsi comprendre quels habitats ont un enjeu de sauvegarde pour cette espèce. Salmo trutta semble être inféodée aux milieux avec des substrats rocheux à granulométrie faible (sable) à moyenne (gravier) si les substrats sont mélangés, elle se retrouve préférentiellement dans les excavations sous berge et semble être corrélés aux chenaux lotiques, ce qui sous entends une vitesse allant de 0,5m/s à plus de 1m/s. Niveau profondeur, les milieux entre 40 et 60 cm sont majoritairement choisis par les Truites. A préciser que les Truites de la première cohorte se trouvent principalement dans les plats courants sans abris. Par ailleurs, chez la Truite Salmo trutta fario, les sédiments fins et l’hypoxie ralentissent la croissance tant des embryons que celle des alevins pendant le premier mois post émergence (Ombredane, 2010). Leur attirance pour les milieux à courant élevé, et donc très oxygéné, pourrait donc être liée à leurs conditions de survie. A mesure qu’ils grandissent, les alevins délaissent les milieux à faible profondeur et recherchent des habitats plus profonds comme les plats courants dans les premiers mois de leur croissance (Lavoie & Hubert, 1996). Cependant les faciès identifiés sur le terrain ne correspondent pas à la vitesse et à la profondeur théorique, ce qui pourrait expliquer quelques incohérences dans les analyses statistiques. La note d’IPR obtenue, 11,394, est plus faible que celle des données du Réseau de Contrôle de Surveillance (RCI) de l´ONEMA. Or, l´IPR est peu sensible dans le cas des cours d’eau naturellement pauvres en espèces comme en Bretagne (Keith et al., 2011). De plus, des erreurs dans les données choisies sont possibles, effectivement certaines valeurs, comme la superficie du bassin versant, ont été difficile à identifier et pourrait donc poser un biais sur le résultat final de l’IPR. Aussi, la note IBGN est de 18/20 est caractéristique d’une qualité d’eau excellente. La note du coefficient d’aptitude biogène, 15,46/20, indique que l’eau est caractérisée par un habitat de bonne qualité. Celle de l’indice habitat, 13,47/20 indique une qualité médiocre en ce qui concerne la diversité des habitats. Ces trois dernières notes doivent tout de même être étudiées avec précaution puisque l’échantillonnage n’a pas été effectué dans des bonnes conditions météorologiques (forte pluie dans les 48h avant le relevé), aussi des erreurs d’identifications des différents taxons sont possibles pouvant largement modifier la note d’IBGN, en ajoutant à cela le biais observateur. En se basant sur le nouveau système d’évaluation de la qualité de l’eau des rivières (SEQ-Eau, 2003), les paramètres physicochimiques du Kerrus semblent indiquer que la rivière est d’excellente qualité. Il faudrait cependant analyser les autres paramètres présents sur la grille d’évaluation SEQ-Eau pour une plus grande fiabilité des interprétations et dupliquer les prélèvements avec au moins une mesure au milieu de la zone et en amont en plus de celle effectuée en aval. Ces différents indices et paramètres, ajoutés au résultat de l’IBGN indiquent que la rivière du Kerrus est de bonne, voire de très bonne qualité, autant en termes d’habitats que de qualité de l’eau. Le faible nombre d’individus de plus de trois ans chez les Truites et la faible taille des individus de la cohorte 1+ peut avoir pour explication une qualité de l’eau tout de même insuffisante pour la pérennité du cycle de développement, par la migration en eau de mer ou bien le manque d’échantillonnage. La présence de Salmo trutta, espèce migratrice emblématique des cours d’eau de Bretagne, renforce tout de même l’idée que le Kerrus est une rivière de plutôt bonne qualité (Bensettiti et Gaudillat, 2004 ; bretagne-biodiversité). Il serait cependant nécessaire de poursuivre le suivi des peuplements pour s’assurer de la stabilité des populations à long termes. Ayant besoin d’une eau oxygénée, un pH adéquat (Sigma Environmental consultants LTD, 1983) et une bonne qualité d’eau pour un bon développement des alevins (Fédération des Côtes d’Armor pour la pêche et la Protection du Milieu Aquatique, 2003), le Kerrus semble être au premier abord adéquat à la reproduction des Salmonidés. Il est intéressant de comparer ces deux bassins versant (Horn et Elorn) afin de comparer spatialement les peuplements piscicoles pouvant être influencés par les activités anthropiques comme la pollution des eaux par les nitrates dû l’agriculture. De manière générale, les notes et paramètres de la rivière du Stain, affluant du bassin versant de l’Elorn, indique une meilleure qualité de ce cours d’eau, par exemple l’IBGN du Stain est supérieur de deux points par rapport au Kerrus. La qualité des rivières en Bretagne mais aussi dans d’autres régions françaises fortement ruralisées est impactée négativement par diverses pollutions, d’origine naturelle ou non (Dreal ; Eaux et Rivières). Une des causes principales de cette baisse de qualité est l’intensification des pratiques agricoles (90%) (Eaux et rivières de Bretagne, 2016) qui va augmenter la concentration en nitrates mais également en micropolluants émergeants. La présence de ces éléments en fortes quantités va dérégler les systèmes terrestres tout d’abord puis par ruissellement, les milieux aquatiques comme les rivières. En Finistère, une très grande partie des rivières sont caractérisées par un taux en nitrates en moyenne supérieur de 1 à 4 fois la teneur limite autorisée : 25mg/L. Seules les zones situées en centre voire sud Finistère ont une teneur plus ou moins égale à 25mg/L (FIGURE 14) (Aurousseau et al., 2009). En plus des activités agricoles, les travaux d’aménagements de voiries (2%) comme les barrages et les lotissements, épuisent les cours d’eau intensifiant les concentrations en nitrates. L’expansion de l’urbanisation conduit par ailleurs à l’augmentation de substances toxiques dans les sols et dans les eaux (Eaux et rivières de Bretagne, 2016). En changeant les paramètres physico-chimiques des rivières, les peuplements de végétaux et faunistiques doivent s’adapter aux nouvelles conditions du milieu qui pourront être alors un frein à la croissance et au développement des espèces présentes et ainsi impactées. Des chercheurs du CNRS ont alors créés un système de filtrage au charbon qui retiendrait comme un aimant les molécules toxiques (CNRS, 2014). Autre solution : A New York, la ville a investi dans l’assainissement des zones de captages dans le but de limiter la propagation des substances et produits néfastes aux peuplements (Morineau ,2014). Pour finir, la dépollution des sols pourraient se faire grâce à un apport de plantes capables d’assimiler les éléments toxiques du sol ce qui limiterait leur ruissellement jusqu’aux zones aquatiques. Les plants de genre Pelargonium sont ainsi capables de retenir les métaux lourds comme le plomb. Cela pourrait permettre de limiter les changements physico-chimiques des sols et des cours d’eau (Unsworth and Ormrod, 2013). FIGURE 15 : NITRATES DANS LES EAUX BRUTES AU POINT DE PRELEVEMENT EN 2007 Au niveau des peuplements ichtyologiques, la présence de Pseudorasboras parva dans la zone échantillonnée présage une perte de diversité future dans les populations de poissons présentes dans le cours d’eau. En effet, cette espèce qui s’adapte très vite et qui déverse un champignon mortel dans l’eau et dans les autres individus qu’elle côtoie. La diversité halieutique n’étant déjà pas très élevée, l’arrivée de cette espèce doit être prise en charge et des mesures doivent être mises en place. Au Royaume-Uni, les autorités ont tentées l’éradication des populations dès qu’elles étaient identifiées. Cependant, cela à un coût et il faudrait coupler cette initiative à des contrôles des importations et des approvisionnements pour empêcher le relâchement ponctuel de cette espèce dans les eaux. En plus de cela, la sensibilisation des pêcheurs et autres intervenants des milieux aquatiques a permis la réduction de l’expansion de Pseudorasboras parva (Gozlan, 2015). BIBLIOGRAPHIE Aurousseau P., Launay J., Pouline P. (2009). Évolution de la qualité des eaux en nitrate en Bretagne : synthèse régionale au 30 septembre 2007. Rennes : conseil scientifique de l'environnement de Bretagne, 2009. - 26 p. Aquaportail.com consulté le 09/02/2016 Baglinière J.L. & Maisse G. (2002). La biologie de la truite commune (Salmo trutta) dans la rivière Scorff, Bretagne : une synthèse des études de 1972 à 1997. INRA - ENSA UMR Ecobiologie et Qualité des Hydrosystèmes Continentaux. Bensettiti F., Gaudillat V. (2004). Connaissance et gestion des habitats et des espèces d'intérêt communautaire : La documentation française. 353 p. Bretagne-environnement.org. Le réseau hydrographique breton, 2007. [En ligne] http://www.bretagne- environnement.org CNRS (2014). Une nouvelle technologie de dépollution de l'eau pour éliminer pesticides et médicaments. DREAL Bretagne (2010). L’eau en Bretagne, bilan annuel. [pdf] DREAL Bretagne. Plan de Gestion des Poissons Migrateurs. [en ligne], dernière modification le [15/12/2014]. Disponible sur : http://www.bretagne.developpement-durable.gouv.fr/plande-gestion-des-poissons-migrateurs-a1839.html Eau Loire Bretagne (2015). [En ligne] http://www.eau-loire-bretagne.fr/ Eau et Rivière de Bretagne. L’Elorn [pdf] Eau et Rivière, (2016). educatif.eau-et-rivieres.asso.fr/pdf/pollution.pdf Fédération des Côtes d’Armor pour la pêche et de la protection du Milieu Aquatique, Association pour la protection et la mise en valeur de la vallée du Léguer. Contrat pluriannuel d’entretien restauration des cours d’eau sur le bassin versant du Léguer, programme d’actionsavril 2003. FEDE Pêche 29 (2014). Description des habitats piscicoles et estimation du potentiel de production en juvéniles de Saumon atlantique sur le bassin versant de l’Elorn (Finistère). Volet Poissons Migrateurs. Contrat de Projet Etat- région 2007- 2013. Rivières de France (2016) [En ligne] Gralon.net/rivieres-France/le-keralle-113728.htm Eau France (2016). [En ligne] http://services.sandre.eaufrance.fr/ Gozlan R. (2015). Ce petit poisson qui menace nos assiettes. Keith P. et al. (2011). Les poissons d´eau douce de France. Biotope Editions, Publications scientifiques du Muséum Nationale d´Histoire Naturelle. p130-145, p342-343, p373- 374, p394-397 et p491-492 Lavoie W.J., Hubert W.A. (1996). Use of three types of stream-margin habitat by age-0 brown trout late in the growing season. Hydrobiologia, 317, 89-95. Mahé K., Bellail R., Dufour J.-L., Boiron-Leroy A., Dimeet J., Duhamel E., Elleboode R., Felix J., Grellier P., Huet J., Labastie J., Le Roy D., Lizaud O., Manten M.-L., Martin S., Metral L., Nedelec D., Verin Y. & Badts V. (2009). Synthèse française des procédures d'estimation d'âge / French summary of age estimation procedures Meunier F.J. (1987). Structure et minéralisation des écailles de quelques Osteoglossidae (Ostéichtiens, téléostéens. Ann. Sci. Nat. Zool., 13e serie, 6 :11-24 Morineau J. (2014). Dossier : l’eau de New York., Eau Île de France. Ombredane D. (2010). La survie sous gravier des œufs de salmonidés. Les Rencontres Migrateurs 23&24 mars 2010. Onema.fr consulté le 02/02/2016 Portances conseils (2006). Etat des lieux, diagnostic et usages du SAGE de l´Elorn. Prouzet P., Gaignon J.-L. (1982). Production de saumon Atlantique (Salmo salar) juveniles et adultes sur un ruisseau pepiniere de Bretagne Nord (France) a partir d'une souche irlandaise. Rev. Trav. Inst. Pêches marit, 45 (2) : 155-174. Prouzet P., Harache Y., Danel P., et Branellec J. (1977). Etude de la croissance de la truite commune Salmo trutta fario (L) dans deux rivières du Finistère. Bull. Fr. Piscic. N°267 : 62-84. Tachet H., Bournaud M. et Richoux Ph. (1991). Introduction à l’étude des macroinvertébrés des eaux douces. Université Claude Bernard LYON 1, Association française de limnologie, Ministère de l’Environnement. SDAGE Rhône- Méditerranée, secrétariat technique du SDAGE (2011). Qu’est-ce que le bon état des eaux ? [pdf] SEQ-Eau (2003). Système d’évaluation de la qualité de l’eau des cours d’eau, grille d’évaluation (version 2). MEDD et Agence de l’eau. Sigma Environmental Consultants LTD. Summary of water quality criteria for salmond hatcheries. Department of fisheries and oceans, 1983. [pdf] Unsworth M.H., Ormrod D.P. (2013). Effects of gaseous air pollutoin in agriculture and horticulture. 546 p. Verneaux J. & coll. (1982) : Expression biologique, qualitative et pratique de l’aptitude des cours d’eau au développement de la faune benthique – Un coefficient d’aptitude biogène : le Cb2. Protocole expérimental, Trav. Lab. Hydrobiol. Univ. Fr.-Comté, Besançon, 19 p. ANNEXES ANNEXE 1 : LISTE DES 138 TAXONS UTILISES DANS LE PROTOCOLE DE L'IBGN ANNEXE 2 : VALEUR DE LA NOTE SELON LES TAXONS DE MACROINVERTEBRE BENTHIQUE ANNEXE 3 : GRILLE DE CALCUL DE L'INDICE HABITAT "M" ANNEXE 4 : FICHE DU COEFFICIENT D'APTITUDE BIOGENE ANNEXE 5 : SYSTEME D'EVALUATION DE LA QUALITE DE L'EAU
