Université Laval Faculté de foresterie et de géomatique Laboratoire d’entomologie forestière Bio-17250 Par D Éric Bauce Professeur titulaire r Janvier 2002 ã Tous droits de reproduction réservés. BIO-17250 Laboratoire d’entomologie forestière Professeur : Éric Bauce Description sommaire : Ce cours s’adresse aux étudiantes et étudiants qui seront appelés à œuvrer dans le secteur de l’utilisation des écosystèmes forestiers. Il traite plus spécifiquement des insectes forestiers et de leur identification. Objectif général : Développer une connaissance de base en entomologie forestière. Objectifs spécifiques : • connaître les principales caractéristiques morphologiques, anatomiques, physiologiques et taxinomiques des insectes; • acquérir le vocabulaire nécessaire à l’utilisation des clefs dichotomiques; • acquérir les connaissances nécessaires à l’identification des principaux ravageurs entomologiques forestiers à partir des caractéristiques de l’insecte et/ou des dégâts qu’il engendre. Méthodologie : Utilisation de spécimens, dissection, projection de diapositives. Évaluation : Deux examens de deux heures chacun. 2 Table des matières Table des matières ............................................................................................................................ 3 1. INTRODUCTION .............................................................................................................. 7 1.1 Situation des insectes dans le monde animal .................................................................. 7 1.1.A Situation générale............................................................................................................. 7 1.1.B Les stades d’évolution ...................................................................................................... 7 Phylogénie des arthropodes .............................................................................................................. 8 1.2 Importance des insectes dans le règne animal .............................................................. 13 1.3 Importance de la structure des insectes......................................................................... 14 1.3.A Exosquelette ................................................................................................................... 14 1.3.B La petite taille.................................................................................................................. 14 1.3.C Les ailes.......................................................................................................................... 15 1.4 Importance du développement....................................................................................... 16 1.4.A La métamorphose........................................................................................................... 16 1.4.A.a Les AMÉTABOLES ........................................................................................................ 16 1.4.A.b Les HÉMIMÉTABOLES.................................................................................................. 17 1.4.A.c Les HOLOMÉTABOLES................................................................................................. 18 1.5 Importance de la physiologie.......................................................................................... 18 1.5.A Poïkilotherme vs homéotherme...................................................................................... 18 1.5.B Diapause et quiescence ................................................................................................. 19 2.0 MORPHOLOGIE ............................................................................................................ 20 2.1 Régions et parties de l’insecte........................................................................................ 20 2.1.A Régions........................................................................................................................... 20 2.1.B Parties............................................................................................................................. 21 2.2 La tête............................................................................................................................. 22 2.2.A Position de l’ouverture buccale....................................................................................... 22 2.2.A.a Type Orthognathe........................................................................................................... 22 2.2.A.b Type Hypognathe ........................................................................................................... 23 2.2.B Composition de la tête.................................................................................................... 23 2.2.B.a Sclérites et sutures de la capsule crânienne.................................................................. 23 2.2.B.b Les yeux simples ............................................................................................................ 23 2.2.B.b.1 Les Ocelles ..................................................................................................................... 23 2.2.B.b.2 Les Stemmates............................................................................................................... 27 2.2.B.c Les yeux composés........................................................................................................ 27 2.2.B.d Les antennes .................................................................................................................. 27 2.2.B.e Les pièces buccales ....................................................................................................... 27 2.2.B.e.1 Type broyeur................................................................................................................... 27 2.2.B.e.2 Modification et autres types............................................................................................ 29 2.3 Le thorax......................................................................................................................... 32 2.3.A Composition du thorax.................................................................................................... 32 2.3.A.a Le Prothorax ................................................................................................................... 32 2.3.A.b Le mésothorax ................................................................................................................ 32 2.3.A.c Le métathorax................................................................................................................. 32 2.3.B Les appendices thoraciques........................................................................................... 36 2.3.B.a Les pattes ....................................................................................................................... 36 2.3.B.b Les ailes.......................................................................................................................... 37 2.4 L’abdomen ...................................................................................................................... 38 2.4.A L’abdomen de la femelle ................................................................................................ 38 2.4.A.a Le premier segment abdominal ...................................................................................... 38 2.4.A.b Du second au septième segment abdominal ................................................................. 39 2.4.A.c Huitième segment abdominal ......................................................................................... 39 3 2.4.A.d Les neuvième et dixième segments abdominaux .......................................................... 39 2.4.A.e Onzième segment abdominal......................................................................................... 39 2.4.A.f L’ovopositeur : ................................................................................................................ 39 2.4.B L’abdomen du mâle ........................................................................................................ 40 2.4.B.a Neuvième segment abdominal ....................................................................................... 40 2.4.B.b Dixième segment abdominal .......................................................................................... 40 2.4.B.c Onzième segment abdominal......................................................................................... 40 3.0 ANATOMIE ET PHYSIOLOGIE...................................................................................... 42 3.1 Le tégument.................................................................................................................... 42 3.1.A Rôle du tégument ........................................................................................................... 42 3.1.B Nature physique du tégument ........................................................................................ 42 3.1.B.a Épicuticule ...................................................................................................................... 42 3.1.B.b Procuticule ...................................................................................................................... 42 3.1.B.b.1 Exocuticule ..................................................................................................................... 43 3.1.B.b.2 Mésocuticule................................................................................................................... 43 3.1.B.b.3 Endocuticule ................................................................................................................... 43 3.1.B.c Épiderme ........................................................................................................................ 43 3.1.B.d Membrane basale........................................................................................................... 43 3.1.B.e Les pores canaux ........................................................................................................... 43 3.1.C Biochimie du tégument ................................................................................................... 44 3.1.C.a Épicuticule : absence de chitine. .................................................................................... 44 3.1.C.a.1 Couche de cément ......................................................................................................... 44 3.1.C.a.2 Couche de cire ............................................................................................................... 45 3.1.C.a.3 Couche de polyphénolique ............................................................................................. 45 3.1.C.b Procuticule ...................................................................................................................... 45 3.1.C.b.1 Chitine............................................................................................................................. 45 3.1.C.b.2 Protéine .......................................................................................................................... 45 3.1.C.b.3 Lipides ............................................................................................................................ 46 Processus de durcissement (tannage) et de pigmentation du tégument ........................................ 46 3.1.D Processus de la mue ...................................................................................................... 47 Les stades de la mue :..................................................................................................................... 47 3.1.D.a Activité des cellules épidermiques ................................................................................. 47 3.1.D.b Séparation du vieux tégument (apolyse)........................................................................ 47 3.1.D.c Formation d’une nouvelle épicuticule ............................................................................. 47 3.1.D.d Production du liquide de la mue ..................................................................................... 47 3.1.D.e Élaboration de la nouvelle procuticule............................................................................ 48 3.1.D.f Ecdysis ........................................................................................................................... 48 3.1.D.g Étirement du tégument par la pression sanguine........................................................... 48 3.1.D.h Processus de durcissement ........................................................................................... 48 3.2 Le système digestif......................................................................................................... 50 3.2.A L’intestin antérieur .......................................................................................................... 51 3.2.A.a Les glandes salivaires .................................................................................................... 51 3.2.A.b La bouche ....................................................................................................................... 51 3.2.A.c La cavité buccale............................................................................................................ 51 3.2.A.d Le pharynx ...................................................................................................................... 51 3.2.A.e Œsophage ...................................................................................................................... 51 3.2.A.f Jabot ............................................................................................................................... 51 3.2.A.g Proventricule (gésier) ..................................................................................................... 51 3.2.B L’intestin moyen (estomac) ............................................................................................ 52 3.2.B.a Caecums gastriques....................................................................................................... 52 3.2.C L’intestin postérieur ........................................................................................................ 52 3.2.C.a Le pylore ......................................................................................................................... 52 3.2.C.b L’intestin grêle (iléon) ..................................................................................................... 53 3.2.C.c Le gros intestin ............................................................................................................... 53 3.2.C.d Le rectum........................................................................................................................ 53 3.2.C.e L’anus ............................................................................................................................. 53 4 3.2.D 3.3 3.3.A 3.3.A.a 3.3.A.b 3.3.A.c 3.3.A.d 3.3.A.e 3.3.B 3.3.B.a 3.3.B.b 3.3.B.c 3.3.B.d 3.3.C 3.4 3.4.A 3.4.B 3.4.B.a 3.4.B.b 3.4.B.c 3.5 3.5.A 3.5.B 3.5.C 3.5.C.a 3.5.C.b 3.5.C.c 3.5.C.d 3.6 3.6.A 3.6.A.a 3.6.A.b 3.6.A.c 3.6.A.d 3.6.B 3.6.B.a 3.6.B.b 3.6.B.c 3.6.C 3.6.C.a 3.6.C.b 3.6.C.c 3.6.D 3.6.D.a 3.6.D.a.1 3.6.D.a.2 3.6.D.a.3 3.6.D.a.4 3.6.D.b 3.6.D.b.1 3.6.D.b.2 3.6.D.c 3.6.D.c.1 3.6.D.c.2 3.6.D.c.3 3.6.D.c.4 La digestion .................................................................................................................... 53 Le système respiratoire .................................................................................................. 55 Composantes du système respiratoire trachéen............................................................ 55 Stigmate ......................................................................................................................... 56 Plaque filtrante : pour éviter l’entrée de poussière. ........................................................ 56 Atrium : permet au système de rester ouvert et fonctionnel........................................... 56 Trachée .......................................................................................................................... 56 Trachéoles : .................................................................................................................... 56 Autres systèmes respiratoires ........................................................................................ 57 Insectes aquatiques respirant à la surface de l’eau : ..................................................... 57 Utilisation de l’air contenu dans les végétaux immergés : ............................................. 57 Utilisation de l’oxygène dissous dans l’eau : .................................................................. 57 Insectes endoparasites :................................................................................................. 58 Rôles du système trachéen ............................................................................................ 58 Le système circulatoire................................................................................................... 62 L’hémolymphe (sang) ..................................................................................................... 62 Le vaisseau dorsal.......................................................................................................... 63 Le cœur ......................................................................................................................... 63 L’aorte :........................................................................................................................... 63 Les sinus et diaphragmes .............................................................................................. 63 Le système reproducteur................................................................................................ 64 Le système reproducteur de la femelle .......................................................................... 64 Le système reproducteur du mâle.................................................................................. 66 La reproduction............................................................................................................... 68 Transfert de sperme ....................................................................................................... 68 Parthénogenèse ............................................................................................................. 68 Viviparité ......................................................................................................................... 68 Polyembryonie ................................................................................................................ 68 Le système nerveux ....................................................................................................... 69 Introduction ..................................................................................................................... 69 Rôles du système nerveux ............................................................................................. 69 Les fonctions du système nerveux ................................................................................. 69 Les neurones .................................................................................................................. 70 Les parties du système nerveux..................................................................................... 70 Le système nerveux central............................................................................................ 71 Le cerveau. ..................................................................................................................... 71 Le ganglion sous-oesophagien....................................................................................... 71 La chaîne nerveuse centrale. ......................................................................................... 71 Le système nerveux stomato-gastrique ......................................................................... 72 Le ganglion frontal innerve la bouche ............................................................................ 72 Le ganglion hypocérébral (ou occipital........................................................................... 72 Le ganglion ventral ......................................................................................................... 72 Le système nerveux périphérique .................................................................................. 72 Mécanoréception ........................................................................................................... 73 Sensilles trichoïdes......................................................................................................... 73 Sensilles basiconiques ................................................................................................... 74 Sensilles campaniformes................................................................................................ 74 Sensilles placoïdes......................................................................................................... 74 Chimioréception ............................................................................................................. 81 Olfaction (gaz) ................................................................................................................ 82 Chimioréception de contact ............................................................................................ 84 Photoréception : ............................................................................................................. 84 Récepteurs tégumentaires ............................................................................................. 85 Stemmates ..................................................................................................................... 85 Ocelles............................................................................................................................ 85 Yeux composés .............................................................................................................. 86 5 Index des figures ............................................................................................................................. 88 Annexe 1………………………………………………………………………………………..………..I à XI Clé dichotomique de détermination des ordres des insectes………………………………...…….i à vii 6 1. INTRODUCTION 1.1 1.1.A Situation des insectes dans le monde animal Situation générale Il existe, à ce jour, plus d’un million d’insectes décrit dans le monde. Certains de ces insectes sont nuisibles, d’autres sont bénéfiques, mais la plupart sont neutres. En Amérique du Nord, il y a 88 600 espèces d’insectes décrites qui se retrouvent dans 28 ordres et 600 familles. Les insectes nuisibles de toutes sortes sont au nombre de 500 à 1 000 en Amérique du Nord, ce qui représente moins de un pour cent (< 1%) des insectes. 1.1.B Les stades d’évolution Ces stades hypothétiques de l’évolution jusqu’à l’insecte actuel sont basés sur le développement d’un annélide ancestral dont le corps est segmenté en métamères. Il y eut, probablement, processus de fusionnement des segments (tagmosis). Les formes transitoires étant manquantes, ce processus demeure théorique jusqu’à ce qu’on puisse le confirmer. Ce fusionnement peut se détecter par les différentes parties de la tête de l’insecte actuel qui résulteraient du fusionnement des cinq premiers segments. Annélides (invertébrés) ➜ Insecte (fig. 1) Figure 1 : Évolution des insectes à partir des annélides. 7 Phylogénie des arthropodes (fig. 2 et 3) Les animaux sont classifiés en différents groupes où chaque membre possède quelques caractéristiques communes. L’embranchement des arthropodes (pattes articulées), englobe 80% du règne animal, 75% des espèces animales sont des insectes. Outre les arthropodes, le règne animal comprend les mollusques, les protozoaires, les nématodes, les annélides, les mammifères et bien d’autres. Il est difficile d’estimer le nombre d’insectes qu’il reste à décrire et à nommer. 2 appendices/segment, yeux, antennes ANNÉLIDES ARTHROPODES ANCESTRAUX 2 appendices articulés/segment appendices fusionnés à la tête TRILOBITES antennes absentes antennes présentes CHÉLICÉRATES trachées ARACHNIDES MANDIBULATES branchies MÉROSTOMES 2 paires d’antennes CRUSTACÉS 1 paire d’antennes 6 appendices sur thorax 2 appendices/segment PYCNOGONIDES DIPLOPODES (mille-pattes) gén. 30 paires et + INSECTES (HEXAPODES) CHILOPODES SCORPIONS PSEUDOSCORPIONS Abdomen segmenté (centipèdes) 15 paires ARAIGNÉES ACARIENS Abdomen non segmenté PAUROPODES SYMPHYLES Figure 2 : Phylogénie des arthropodes en partant des annélides. 8 Voici un exemple de classification : la tordeuse des bourgeons de l’épinette. Règne Embranchement (ou Phylum) Sous-embranchement Superclasse Classe Ordre Famille Genre Espèce à à à à à à à à à Animal Arthropoda Mandibulata Hexapoda Insecta Lépidoptera Tortricidae Choristoneura fumiferana Il peut y avoir jusqu’à vingt subdivisions, comme ceci : Règne, Sous-règne, Embranchement, Sous-embranchement, Superclasse, Classe, Sous-classe, Superordre, Ordre, Sous-ordre, Infra-ordre, Superfamille, Famille, Sous-famille, Tribu, Sous-tribu, Genre, Sous-genre, Espèce, Sous-espèce. • Embranchement ARTHROPODA : Ø Ø Ø Ø Ø Ø Ø Ø Ø • Corps segmenté (deux ou trois parties distinctes) Exosquelette ou cuticule Appendices segmentés et par paires Sclérites réunies par des membranes flexibles Symétrie bilatérale Cœur dorsal Cordon nerveux central Appendices modifiés pour manger Comprend deux sous-embranchements : les chelicerata et les mandibulata Sous-embranchement CHELICERATA : Ø Ø Ø Ø Ø Ø Antennes absentes Sans mandibules Corps en deux parties (céphalothorax et abdomen) Segments articulés (chélicères et pépipalpes) Quatre paires de pattes Comprend les classes arachnida, mérostoma, pycnogonida Ø Classe ARACHNIDA : - Inclut 11 ordres dont les ARANEA (araignées), les ACARINA (acariens), les SCORPIONIDA, les PSEUDOSCORPIONIDA, etc. 9 • Sous-embranchement MANDIBULATA : Ø Ø Ø Ø Une ou deux paires d’antennes Vraies pièces buccales (maxilles et mandibules) Corps en deux ou trois parties Trois paires de pattes ou plus Ø Classe CRUSTACEA : - Généralement aquatique sauf dans le cas des cloportes - Deux paires d’antennes (sauf les cloportes : 1 paire) - Paire d’appendices sur segment céphalothoracique Ø Classe CHILOPODA (CENTIPÈDES) : - Plus de quinze paires de pattes - Une paire d’antennes (longues) - Tronc distinct de la tête - Première paire de pattes modifiée en crochets à poison - Prédateurs (mangent d’autres arthropodes) Ø Classe DIPLOPODA (MILIIPÈDES) : - Deux paires de pattes par segment - Une paire d’antennes (longues) - Généralement détritivores Les quatre prochaines classes constituent la Superclasse des HEXAPODA (Collembola, Protura, Diplura et Insecta) Ø Classe COLLEMBODA : - Pièces buccales rétractées dans la tête - Appendices abdominaux adaptés pour le saut - Collophore (tube) - Furcula (fourchette) - Rétinacle (cran d’arrêt) - Très communs dans le sol et importants pour la décomposition de la matière organique Ø Classe PROTURA : - Tête sans antennes et sans yeux - Pièces buccales rétractées dans la tête - Abdomen avec vestiges de pattes sur plusieurs segments - Minuscules et vivants dans le sol 10 Ø Classe DIPLURA : - Comme les insectes, ils ont deux appendices terminaux (cerques) - Pièces buccales rétractées dans la tête - Vestiges de pattes abdominales Ø Classe COLLEMBODA : - Pièces buccales rétractées dans la tête - Appendices abdominaux adaptés pour le saut Ø Classe INSECTA : (fig. 4) - Pièces buccales rétractées dans la tête - Appendices abdominaux adaptés pour le saut Tête : - Alimentation et fonction sensorielle - Origine de la fusion des cinq premiers segments de l’annélide - Une paire d’antennes (appendices du quatrième segment de l’annélide) - Pièces buccales externes Thorax : - Formé de trois segments : prothorax, mésothorax, métathorax - Rôle principal : locomotion - Trois paires de pattes (une paire par segment) - Souvent deux paires d’ailes (sur mésothorax et métathorax) Abdomen : - Constitué de onze segments et contient l’appareil reproducteur - Souvent terminé par deux cerques - Absence d’appendices couplés sur la plupart des segments - Huit paires de stigmates pour la respiration Cette classification peut différer selon les auteurs. Pour un grand nombre de taxinomistes les trois classes (Collembola, Protura et Diplura) que l’on retrouve dans la superclasse des Hexapodes, se situeraient plutôt comme des ordres distincts dans la classe des insectes. 11 ARTHROPODA CHELICERATA ARACHNIDA COLLEMBOLA MANDIBULATA CRUSTACEA CHILOPODA HEXADA PROTURA DIPLURA DIPLOPODA INSECTA Figure 3 : Phylogénie des arthropodes de l’embranchement à la classe. Tête Thorax Abdomen Figure 4 : Les trois parties du corps d’un insecte. 12 1.2 Importance des insectes dans le règne animal (fig. 5) Figure 5 : Diagramme du nombre d’espèces vivantes du règne animal. L’apparition des insectes remonte au Dévonien, il y a plus de 350 millions d’années. Les premiers ordres qui ont apparu sont les Thysanura, les Ephemeroptera, les Orthoptera. Il existe, de nos jours, plus d’un million d’espèces dans le monde, ce qui représente une grande diversité si nous comparons avec le monde végétal où il existe de 350 000 à 500 000 espèces. Les insectes se retrouvent à peu près partout. Leur adaptation à différents milieux tels désert, source d’eau chaude (80° C), sommet de montagne (6 090 m), 13 milieu arctique (-20° C), nous permet de les rencontrer sous diverses formes, avec différents moyens de défense, de reproduction et d’habitudes alimentaires. Les insectes, du point de vue de l’homme, ont une importance qui se rattache à leur activité. Ainsi, ils sont bénéfiques, nuisibles ou neutres. Le succès des insectes est relatif aux caractéristiques suivantes : • • • • • • • • 1.3 Vol Adaptation Exosquelette Petite taille Métamorphose Reproduction (potentiel biotique et plasticité génétique élevés) Diapause et quiescence Système sensoriel Importance de la structure des insectes Nous allons survoler, dans cette partie, les attributs extérieurs de l’insecte qui lui ont permis d’avoir le succès que nous lui connaissons. 1.3.A • • • • • • Exosquelette Dureté et rigidité (le protège contre les dommages physiques) Empêche la dessiccation (une barrière contre les pertes d’eau) Point d’attache pour les muscles Protection contre le milieu externe (contre les produits chimiques, fortes bases, forts acides; contre les pathogènes) Tissus de réserve (90 % est récupéré lors de la mue) Base du système sensoriel, respiratoire et digestif 1.3.B La petite taille La taille de l’insecte est limitée par l’exosquelette (étant donné que ce dernier constitue une carapace) et le système respiratoire. La petite taille des insectes leur permet de trouver refuge et protection contre certains ennemis naturels, de se protéger des conditions abiotiques défavorables. 14 Le ratio surface/volume est élevé. Cela rend les insectes sujets à la dessiccation car ils offrent une grande surface pour les pertes en eau. Un si grand ratio surface/volume n’apporte pas que des désavantages. Ainsi, la faible masse d’un insecte lui permet de ne pas se briser lors des chutes de très grandes hauteurs (par ex. du haut d’un arbre). La petite taille des insectes influence l’importance relative des lois physiques auxquelles ils sont assujettis : GRAVITÉ (-) • Traction (-) ➜ crochets, ventouses, poils glandulaires pour la locomotion • Permet le vol car la gravité a moins d’impact sur une petite masse ÉNERGIE KINÉTIQUE (-) • Cohésion (+) ➜ permet de conserver l’intégrité physique de l’insecte lors de la mue • Adhésion (+) ➜ permet la locomotion sur surfaces verticales; ➜ tension de surface de l’eau 1.3.C Les ailes Les ailes rendent la dispersion plus facile de même que la recherche de mâles ou de femelles, la recherche d’hôte alterne, etc. La présence de SARCOSOMES (mitochondries géantes) adjacents aux muscles du vol et au système respiratoire permet une efficacité accrue de la conversion d’énergie pour le vol. Exemple : ABEILLE DOMESTIQUE Conversion = 2 400 cal/g de tissu/h (ce qui représente 50 fois celle de l’humain) Consommation d’oxygène = 3 000 microlitres/min/g (ce qui représente 300 fois celle de l’humain) L’utilisation des muscles indirects qui déforment le tégument permet un battement des ailes très rapide. (Fig. 6) 15 notum Articulation alaire Sclérite sub-alaire Muscle longitudinal dorsal Sclérite basalaire Muscle sub-alaire épimeron Muscle basalaire Muscle tergo sternal Suture pleurale épisternite Muscle longitudinal ventral Figure 6 : Les muscles associés au battement des ailes. 1.4 1.4.A Importance du développement La métamorphose La métamorphose est déclenchée par une chute de production de l’hormone juvénile (produite par les CORPS ALLATES). Elle permet à l’insecte d’optimiser ses activités. Exemple : 1.4.A.a Larve ➜ alimentation Adulte ➜ reproduction, dispersion Les AMÉTABOLES Cela concerne les insectes de la sous-classe des APTÉRYGOTES (primitifs, dépourvus d’ailes), ils ne font pas de métamorphose. Les larves sont semblables aux adultes. Il y a des mues même après la maturation sexuelle. Les amétaboles comprennent : les Collemboles, les Diploures, les Protures, les Microcoryphia et les Thysanoures. 16 D E C B A H G F Figure 7 : Les amétaboles. 1.4.A.b Les HÉMIMÉTABOLES Cela concerne les insectes de la sous-classe des ptérygotes (avec ailes ou anciennement ailés) qui ont une métamorphose incomplète (simple). La transformation en adulte est graduelle, la larve ressemblant de plus en plus à l’adulte. Les larves et les adultes ont généralement le même habitat et les mêmes ressources alimentaires. Toutefois, ce n’est pas le cas des Odonates, Éphéméroptères et Plécoptères dont les larves, contrairement aux adultes, sont aquatiques. 2 mm A H B 2 mm C D 2 mm I E 2 mm 2 mm F 2 mm J G 2 mm 2 mm Figure 8 : Les hémimétaboles. 17 1.4.A.c Les HOLOMÉTABOLES Cela concerne les insectes de la sous-classe des endoptérygotes qui ont une métamorphose complète. Ils se caractérisent par la présence d’un stade intermédiaire entre la larve et l’adulte, appelé nymphe (en anglais nymph = larve d’exoptérigote alors que pupa = nymphe = pupe). Chez ces insectes, larves et adultes sont anatomiquement et fonctionnellement tout à fait différents. Ceci leur permet d’exploiter des ressources et des habitats souvent très différents. La présence de stades immatures inactifs chez les Thysanoptera et chez certains Homoptera (Aleurodidae, Coccidae) en fait des exoptérygotes intermédiaires entre les hémimétaboles et les holométaboles. B A C D E F Figure 9 : Les holométaboles. 1.5 1.5.A Importance de la physiologie Poïkilotherme vs homéotherme Homéotherme : se dit d’un animal (mammifère, oiseau) dont la température interne est constante (‘ animal à sang chaud ’). Si la température ambiante diminue, l’animal peut ajuster sa température interne. Poïkilotherme : se dit d’un animal (reptiles, poissons, insectes) dont la température interne varie avec celle du milieu (‘ animal à sang froid ’). S’il y a baisse de température ambiante, la température interne diminue et le métabolisme de l’animal ralentit. 18 1.5.B Diapause et quiescence Quiescence : arrêt du développement morphogénique induit par des conditions environnementales néfastes. L’état de quiescence est levé lors du retour à des conditions plus favorables. Diapause : arrêt du développement morphogénique non induit par des conditions adverses et nécessitant une période minimum sous des conditions précises avant d’être levée. C’est un état du métabolisme car celui-ci déclenche la diapause, la maintient et la termine. Diapause obligatoire : stade additionnel dans le cycle évolutif de l’insecte et dont l’induction est sous contrôle génétique. Diapause facultative : diffère de la diapause obligatoire par son induction qui est dictée par des stimuli spécifiques (ex. photopériode, physiologie des parents, etc.). On la retrouve généralement chez les insectes dits MULTIVOLTINES (> 1 génération par an) comme les pucerons par exemple. 19 MORPHOLOGIE 2.0 2.1 2.1.A Régions et parties de l’insecte Régions (fig. 10) L’insecte est divisé en plusieurs régions pour standardiser la nomenclature morphologique. Le nom de la région réfère à la position de cette dernière. Ainsi les sclérites s’y rattachant par leur position peuvent être facilement identifiés. Positions de la région Dorsale (1) Latérales (2) Ventrale (1) Noms de la région Tergum (sur l’abdomen) Notum (sur le thorax) Pleurum Sternum Noms des sclérites Tergites Tergites Pleurites Sternites Figure 10 : Les différentes régions schématisées. 20 2.1.B Parties aile métathoracique aile mésothoracique Spirale mésothoracique tergite Bouclier prothoracique Œil composé cerque ocelle ocelle antenne coxa clypeus sternite Spiracles abdominales trochanter Spiracle métathoracique labre tibia mandibule fémur Palpe maxillaire Palpe labiale Tête tarse griffe Thorax Abdomen Figure 11 : Les trois parties du corps de l’insecte. L’insecte est composé de trois parties : Ø Tête : (alimentation et fonction sensorielle) La tête porte les yeux, les antennes et les pièces buccales. Ø Thorax : (locomotion) Le thorax est la partie médiane du corps. Il est composé de trois segments chacun porteur de certains appendices. Du devant vers l’arrière, nous retrouvons le Prothorax porteur des pattes antérieures, le Mésothorax porteur des pattes médianes et des ailes antérieures, puis le Métathorax porteur de pattes postérieures et des ailes postérieures. 21 Par rapport aux autres formes d’Arthropodes, les trois paires de pattes des insectes sont leur caractère le plus distinctif. C’est de cette caractéristique qu’a été dérivé le nom d’Hexapodes qui désigne la superclasse à laquelle les insectes appartiennent. Cependant, il existe des formes immatures comme les larves de Diptères qui sont apodes. De plus, les larves de Lépidoptères ou d’Hyménoptères possèdent des fausses pattes sur l’abdomen. Contrairement aux pattes thoraciques, ces fausses pattes sont inarticulées. Les insectes sont les seuls invertébrés. Les ailes sont une caractéristique de l’adulte et celui-ci en possède généralement deux paires. Il existe cependant des insectes qui ont une seule paire d’ailes (les Diptères, la deuxième paire ayant été modifiée en structure et utilisée comme gyroscope (altères)), ou qui sont complètement aptères. Les insectes respirent à partir d’une série de trous (stigmates) distribués sur les côtés du thorax (ordinairement deux paires) et de l’abdomen (généralement huit paires). Ø Abdomen (reproduction et digestion) Il est composé de onze segments ou moins. 2.2 La tête La tête de l’adulte est une capsule compacte formée de la coalescence des cinq premiers somites (segments primitifs) de l’annélide (selon les observations embryologiques). La capsule crânienne est sclérifiée et la plupart des sutures actuelles sont issues de développements secondaires qui ne correspondent pas aux somites originaux. 2.2.A Position de l’ouverture buccale (fig. 12) 2.2.A.a Type Orthognathe L’ouverture buccale est tournée du côté ventral. Il s’agit d’un type primitif que nous retrouvons surtout chez les espèces phytophages vivant dans un habitat ouvert. Ce type est retrouvé chez la plupart des larves défoliatrices. L’ouverture buccale fait un angle droit avec l’axe du corps. 22 Type Prognathe L’ouverture buccale est placée vers la partie antérieure de la tête et est devenue terminale. Nous retrouvons ce type chez de nombreuses espèces prédatrices de même que chez les larves qui creusent des galeries dans le bois. 2.2.A.b Type Hypognathe Caractéristique des Hémiptères et des Homoptères où les proboscis allongés allongés vont se loger entre les pattes antérieures. Ainsi, l’ouverture buccale est complètement déplacée vers l’arrière. Cette condition est souvent caractéristique des insectes qui perforent les tissus pour en extraire des substances liquides. Figure 12 : Les types de position buccale. 2.2.B Composition de la tête 2.2.B.a Sclérites et sutures de la capsule crânienne (fig. 13) 2.2.B.b Les yeux simples 2.2.B.b.1 Les Ocelles (fig. 15) Ce sont des yeux simples que nous retrouvons chez les insectes adultes. La plupart des adultes possèdent deux ou trois ocelles dont la fonction serait de capter la lumière et l’obscurité, de même que de percevoir une image diffuse des objets environnants. 23 ver cs ver fs ocs oc cvx as e ant atp sgs e sas clp lbr pg sqs es atp md po ge fr sos es os pos oc fr ge ocp ocs ptp md lbm clp A mx lbr p B os ver cs ocp e ocs pos for ge po pg ptp sgs lbm md mx C Figure 13 : Les sclérites et les sutures de la capsule crânienne. A : vue antérieure; B : vue latérale; C : vue postérieure; ant : antenne; as : suture antennaire; atp : fosse tentoriale antérieure; clp : clipéus; cs : suture ecdysiale; cvx : cervix; e : œil composé; es : suture épistomale; for : foramen magnum; fr : front; fs : suture frontale; lbm : labium; lbr : labre; md : mandibule; mx : maxille; oc : ocelle; ccp : occiput; ocs : suture oculaire; os : suture occipitale; p : palpe; pg : postgena; po : postocciput; pos : suture postoccipitale; ptp : fosse tentoriale postérieure; sas : suture subantennaire; sgs : suture subgénale; sos : suture suboculaire; ver : vertex. 24 OCP POS DTA POR PO TTB PTP LBA SGR ATA EPR MXA SGS ATP GE CLP ES MA LBR ATP Figure 14 : Vue montrant le tentorium (capsule céphalique enlevée). ATA : bras antérieur; ATP : fosse tentoriale antérieure; CLP : clypéus; DTA : bras dorsal; EPR : bord épistomal; ES : suture épistomale; GE : gena; LBA : articulation labiale; LBR : labre; MA : articulation mandibulaire; MXA : articulation maxillaires; OCP : occiput; PO : postocciput; POR : bord postocciputal; POS : suture postocciputale; PTP : fosse tentoriale postérieure; SGR : bord subgénal; SGS : suture subgénale; TTB : corps du tentorium. cornée cornée Cristallin B A Cellules cornéennes rhabdom Cellules pigmentaires rétiniennes Cellules pigmentaires de l’iris Cellules rétiniennes Cellules rétiniennes Nerf ocellaire Nerf ocellaire Figure 15 : Section à travers deux types d’ocelle; (a) : larve de Dytiscus (Coleoptera : Dytiscidae); (b) : ocelle schématique. 25 Capsule céphalique épicuticule exocuticule endocuticule épiderme Stemmate tripartite stemmates antenne A Noyau de la Cellule cornéenne Lentille cristalline Rhabdom distal Cellule sensorielle Rhabdom proximal Cellule cornéenne Noyau de la membrane enveloppante B Figure 16 : A : vue latérale de la tête d’une larve de Lépidoptère montrant la positiion des stemmates; B : section d’un stemmate. Facettes de l’omatidie cornée Système de lentilles Cône cristallin Cellule cornéenne Cellules pigmentaires rétine Crête oculaire rhabdom Cellule rétinienne Nerfs coordinateurs Membrane basale nerfs A B Figure 17 : Œil composé et un ommatidie. 26 2.2.B.b.2 Les Stemmates (fig. 16) Ce sont des yeux de larves placés de chaque côté de la tête. Leur nombre varie de un à six comme chez les tenthrèdes (famille d’Hyménoptères) et chez les Lépidoptères. L’efficacité visuelle des stemmates se situe entre celle des ocelles et celle des yeux composés. Elles permettent de distinguer les formes et de différencier le blanc et le noir. 2.2.B.c Les yeux composés (fig. 17) Ce sont les yeux latéraux chez les adultes seulement. Les yeux composés sont formés de la coalescence de plusieurs yeux élémentaires appelés OMMATIDIES. La qualité de la vision des adultes est fonction du nombre d’ommatidies formant l’œil composé. Par exemple, chez la libellule, nous retrouvons de 28 à 30 000 ommatidies par œil, alors que chez la fourmi nous en retrouvons de 6 à 9. Même s’il est bien adapté pour percevoir les mouvements, l’œil composé a un assez faible pouvoir de résolution. En fait, pour obtenir un pouvoir de résolution similaire à celui de l’œil humain, l’œil composé devrait avoir environ un mètre de diamètre. 2.2.B.d Les antennes (fig. 18) La forme et la grandeur des antennes varient considérablement et servent souvent comme critères de classification des insectes. Le rôle des antennes est essentiellement sensoriel. Elles agissent comme récepteurs tactiles, gustatifs, olfactifs, etc. 2.2.B.e Les pièces buccales (fig. 19) 2.2.B.e.1 Type broyeur (fig. 19) C’est le moins évolué des types buccaux, mais en même temps un des plus répandu. Ø Le labre Le labre ou la lèvre supérieure couvre le devant des mandibules. Sa fonction est de participer à l’introduction de la nourriture dans la bouche. La face interne du labre est recouverte d’organes gustatifs, papilles, soies, etc., formant ce que l’on appelle l’épipharynx. Ø Les mandibules La fonction des mandibules est similaire à celle des mâchoires des vertébrés. Ce sont des appendices non segmentés, fortement sclérifiés et qui agissent latéralement de façon à couper, broyer et mâcher la nourriture. 27 Figure 18 : Les types d’antennes et parties d’une antenne généralisée. A : Sétacée (Libellules, Demoiselles); B : filiforme (Sauterelle); C : monoliforme (Rhysodidae (coléoptères)); D : claviforme (Sylphidae (coléoptères)); E : claviforme (Coccinelles (coléoptères)); F : capitiforme (Dermestidae (coléoptères)); G : serriforme (Taupins); H : pectinée (Pyrrhocoridae (hémiptères)); I : plumeuse (Moustique); J : aristée (Mouche à viande); K : styliforme (Mouche à cheval); L : flabelliforme (Rhipiceridae (coléoptères)); M : lamelliforme (Hannetons, Scarabés); N : géniculée (Guêpes, Fourmis, Abeilles); ar : arista; as : suture antennaire; asc : sclérite antennaire; ask : fosse antennaire; fl : flagelle; ped : pédicelle; scp : scape; sty : stylet. 28 Ø Les maxilles Les maxilles fonctionnent latéralement, mais contrairement aux mandibules, leur structure est beaucoup plus complexe. Chaque maxille est composée de : • le cardo • le stipe • le lacinia • le galea • le palpe maxillaire (de cinq segments) Ø Le labium Le labium est le produit de la fusion de deux structures similaires aux maxilles. Sa fonction est d’agir comme une lèvre inférieure. Le labium forme donc la limite postérieure de la bouche. Il se compose des parties suivantes : • le submentum • le mentum • le prémentum • la ligula (formée de 4 lobes dont les 2 plus gros sont les paraglosses et les 2 plus petits, les glosses) • les palpes labiaux (de 3 segments) Ø L’hypopharynx C’est une prolongation du plancher de la bouche. L’hypopharynx a un peu la forme d’une langue et est situé à la base du labium entre la base des maxilles. L’hypopharynx est recouvert de soies sensorielles et les glandes salivaires débouchent à sa base. 2.2.B.e.2 Modification et autres types (fig. 20) Tout au cours de l’évolution des insectes, les pièces buccales de type broyeur se sont modifiées à divers degrés pour permettre aux insectes de se spécialiser quant à leur type d’alimentation. C’est ainsi que les pièces buccales de type piqueur (Hétéroptères), broyeur-lécheur (Abeille : Hyménoptères), piqueur-suceur (Maringouin : Diptères), épongeur (Mouche domestique : Diptères) et lécheur (Lépidoptères) se sont développées. 29 Figure 19 : Pièces buccales d’un criquet. A : maxille; B : section verticale montrant la position de l’hypopharynx; C : labium; D : mandibule avec les points d’attache des muscles; E : labre; art : points d’articulation des mandibules; cd : cardo; clp : clypéus; fr : front; g : galéa; gl : glosse; hyp : hypopharynx; lbm : labium; lbr : labre; lc : lacinie; lg : ligule; lp : palpe labial; ls : suture labiale; m : bouche; md : mandibule; mn : mentum; mx : maxille; mxp : palpe maxillaire; pgl : paraglosse; phx : pharynx; plf : palpifère; plg : palpigère; pmt : postmentum; prmt : prementum; smt : submentum; stp : stipes; tnt : tentorium; ver : vertex. 30 Figure 20 : Modification des pièces buccales à partir du type broyeur. A : perceur-épongeur (Mouche à cheval); B : épongeur (Mouche domestique); C : lécheur (Lépidoptères); D : piqueur-suceur (Maringouin (Diptères)); E : suceur (Cigale); F : broyeur-lécheur (Abeille); hyphy : hypopharynx; lb : labium; lbplp : palpe labial; lm : labre; md : mandibule; mx : maxille; mxplp : palpe maxillaire. 31 2.3 2.3.A Le thorax Composition du thorax (fig. 21) 2.3.A.a Le Prothorax Le prothorax est le segment sur lequel la première paire de pattes est attachée. Il comporte les parties suivantes : Ø Pronotum : une grande sclérite qui recouvre la partie dorsale et latérale du prothorax. Il est composé de la fusion de quatre tergites, que l’on reconnaît par les sutures transversales. Ø Propleures : tout ce qui reste de la région pleurale est une petite pleurite triangulaire sous la partie antérieure du pronotum. Cette pleurite est appelée propisterne. Ø Prosternum : une sternite étroite que l’on retrouve entre les pattes antérieures en avant du mésothorax. De chaque côté du prosternum on retrouve la fosse des pattes antérieures. 2.3.A.b Le mésothorax Le mésothorax est le deuxième segment du thorax. Il porte la deuxième paire de pattes et la première paire d’ailes. Ø Mésonotum : une sclérite carrée entre la première paire d’ailes. Il est presque entièrement recouvert par le pronotum. On peut le voir en soulevant le côté postérieur du pronotum. Ø Mésopleure : chaque mésopleure est composé de deux pleurites rectangulaires qui s’étendent obliquement et dorsalement de la fosse des pattes médianes jusqu’à la base des ailes antérieures. La suture qui sépare ces deux pleurites est la suture mésopleurale (mésopleurite : pleurite antérieure à la suture mésopleurale; mésoépimère : pleurite postérieure à la suture mésopleurale). Ø Mésosternum : la sclérite entre les pattes mésothoraciques. 2.3.A.c Le métathorax Le métathorax est presque identique au mésothorax. Il porte les pattes et les ailes postérieures. Ø Métanotum : sclérite entre les ailes métathoraciques. Ø Métapleure : comme pour le mésothorax, chacune des régions latérales est composée de deux pleurites séparées par la suture métapleurale (métaépisterne : antérieure à la suture métapleurale; métaépimère : postérieure à la suture métapleurale). Une ouverture respiratoire (stig- 32 mate métathoracique) est située au-dessus de la patte médiane, dans la suture qui divise les segments mésothoraciques et métathoraciques. Ø Métasternum : il consiste en une partie antérieure qui avance entre les deux prolongements postérieurs du mésosternum et d’une partie postérieure dont la forme est semblable à l’ensemble du mésosternum. Le premier sternum abdominal est fusionné au métasternum et semble en faire partie. Il ne devrait cependant pas être confondu avec les sterna thoraciques. AN scl-2 spr hd PN-2 wb cvx scl-3 PN-3 t-1 scl-2 n-1 t-2 pwp epm-2 epm-3 cvs spr eps-1 cx-1 epm-1 stn-2 cx-2 pls eps-2 stn-1 cx-3 eps-3 Figure 21-a : Vue latérale du thorax. An : alinotum; cvs : sclérite cervicale; cvx : cervix; cx : coxa; epm : épimère; epp : épipleure; hd : tête; n1 : pronotum; pls : suture pleurale; pn : postnotum; pwp : pleural wing process; scl : scutellum; spr : stigmate; stn : sternum abdominal; t : tergum abdominal; wb : basalaire. 33 Figure 21-b : Vue de côté et vue de dessous des trois parties du thorax d’un criquet. 34 Figure 21-c : Thorax d’un insecte ptérygote généralisé. A : notum; B : pleure; C : sternum. 35 2.3.B Les appendices thoraciques (fig. 22) 2.3.B.a Les pattes (fig. 22) En commençant près du thorax, on retrouve les cinq parties suivantes : Ø Ø Ø Ø Ø Coxa : un petit segment globulaire attaché au thorax par une membrane flexible Trochanter : c’est le deuxième segment; il est plus petit que le précédent et est partiellement fusionné avec le segment suivant Fémur : long segment qui, dans le cas des pattes sauteuses, est souvent plus gros que les autres Tibia : plus étroit que le fémur mais de longueur comparable Tarse : c’est le pied des pattes de l’insecte; il est formé de trois segments mobiles, quoique ce nombre varie de 1 à 5 selon les insectes; le tarse possède des organes de traction appelés pulvilles qui sont de petits coussinets sur le côté ventral de chaque segment tarsal; à l’extrémité de la patte on retrouve l’arolium de même que deux grandes griffes incurvées. Figure 22 : Pattes d’insectes. A : patte communément retrouvée chez les insectes; B : patte de ravisseur (mante religieuse); C : patte d’accrocheur (poux); D : patte de sauteur (criquet); E : patte de nageur (coléoptère aquatique); F : patte de collecteur de pollen (abeille). 36 2.3.B.b Les ailes (fig. 23 et 24) Les ailes sont des évaginations de la paroi du corps (tégument) et sont supportées par des nervures. Ces nervures émanent de la base de l’aile, c’est-à-dire près du thorax, et se terminent à son apex. Les bords antérieurs et postérieurs de l’aile sont respectivement les bords costal et anal. À partir du bord costal les nervures sont : la costale, sous-costale, radiale, médiane, cubitale, cubitale postérieure, anale et jugale. Généralement, les nervures forment des ramifications en gagnant leur extrémité apicale. On donne à chaque ramification une lettre correspondant à la nervure principale et un numéro correspondant à sa position par rapport à la bordure costale et à la bordure anale : C, Sc1, Sc2, R1, R2, R3, R4, R5, M1, M2, M3, M4, Cu1a, Cu1b, Cu2, PCu, A1, A2, A3, A4, A5, J1, J2. La position et le nombre de nervures varient considérablement d’une espèce à l’autre. De plus, la nervation des ailes est souvent utilisée comme critère d’identification. Figure 23 : Nervation de l’aile d’un insecte. (a) : nervation complète hypothétique; (b) : aile de mouche à cheval (Tabanidae). 37 Membrane ailaire nerf épiderme cuticule trachée hémocèle veine Figure 24 : Section transversale de l’aile d’un insecte. 2.4 L’abdomen L’abdomen est la plus grande région du corps et est composé d’au plus onze segments. Les sept premiers segments sont pratiquement identiques chez les deux sexes, mais les segments apicaux et leurs appendices diffèrent considérablement. L’abdomen de la femelle est beaucoup plus gros que celui du mâle et peut être reconnu par l’ovipositeur et les appendices postérieurs. 2.4.A L’abdomen de la femelle (fig. 25-a) 2.4.A.a Le premier segment abdominal Ø Tergum : sorte de bouclier dorsal situé juste au-dessus des fosses de la troisième Ø Ø paire de pattes. Ø Tympan (chez le criquet) : structure en forme de croissant partiellement entourée par les bords latéraux du tergum. Cette structure est recouverte d’une membrane semi-transparante. Ø Premier stigmate abdominal : ouverture respiratoire en avant de chaque tympan. Pleures : ils semblent être absents. Sternum : comme déjà mentionné, le sternum du premier segment abdominal est fusionné au métasternum. Figure 25-a : Vue latérale de l’abdomen d’un insecte femelle. 38 2.4.A.b Du second au septième segment abdominal Ces segments sont tous à peu près semblables. Ø Tergum : la plus grande plaque dorsale. Ø Pleures : ils sont très petits et sont joints aux bords latéraux du tergum. Il existe une légère suture diagonale appelée le pli pleural. Ø Stigmate : chacun des huit premiers segments abdominaux porte une paire de stigmates. Sauf pour le premier segment, les stigmates sont situés sur le pli pleural, près du bord antérieur de chaque segment. Sternum : la plaque ventrale de chaque segment. Ø 2.4.A.c Huitième segment abdominal Il ressemble aux sept premiers segments, sauf que le sternum est presque deux fois plus long et est connu sous le nom de plaque sousgénitale. Ø Guide de l’œuf : c’est la partie postérieure de la plaque sous-génitale. Le guide de l’œuf a la forme d’une épine recourbée vers le haut. 2.4.A.d Les neuvième et dixième segments abdominaux Essentiellement comme ceux du mâle. Le neuvième sternum est manquant. 2.4.A.e Onzième segment abdominal Comme pour le mâle, ce segment a été réduit au tergum seulement. Ø Plaques podicales : plus grosses que celles du mâle, l’anus est placé entre ces Ø plaques. Cerques : plus petits que ceux du mâle. 2.4.A.f L’ovopositeur : (fig. 25-c) Consiste en trois paires de valves mobiles. Il est situé entre les plaques podicales et la plaque sous-génitale. Ø Valves dorsales : proviennent du neuvième segment et s’étendent vers l’arrière sous les dixième et onzième segments. Ø Valves ventrales : proviennent du huitième segment et sont situées au-dessus de la plaque sous-génitale. Ø Valves centrales : proviennent du neuvième segment et sont situées entre les deux autres paires de valves. Les valves centrales sont beaucoup plus petites que les deux autres paires et leur fonction est de placer les œufs dans le trou creusé par les valves dorsales et ventrales. 39 2.4.B L’abdomen du mâle (fig. 25-b) Les huit premiers segments de l’abdomen du mâle sont semblables aux sept premiers de la femelle sauf qu’ils sont plus petits. 2.4.B.a Neuvième segment abdominal Ø Tergum : très petit comparé au huitième segment et fusionné au dixième. Ø Pleures : fusionnés au tergum et non discernables. Ø Sternum : la grande plaque terminale du côté ventral. Ø Plaque sous-génitale : la portion postérieure du neuvième sternum, au-delà du pli membraneux. 2.4.B.b Dixième segment abdominal Très réduit, le sternum n’est plus visible et les pleures sont fusionnés au tergum et ne sont pas discernables. Ø Tergum : le dixième tergum est très réduit. Il est joint au neuvième tergum mais en est partiellement séparé par une suture du côté dorsal. 2.4.B.c Onzième segment abdominal Les pleures et le sternum sont absents. Ø Épiprocte :le sclérite dorsal et terminal en forme de bouclier. Ø Plaques podicales ou paraprocte : un des deux sclérites latéraux du tergum. L’ouverture de l’anus est située entre ces plaques. Ø Cerques : un très petit appendice. Il y en a un attaché à la base de chaque plaque podicale. Épiprocte Cerque Paraprocte Plaque sous-génitale Figure 25-b : Abdomen du criquet mâle (vue latérale). 40 Figure 25-c : Vue latérale de l’ovopositeur d’un criquet. A : avec les différentes parties ouvertes; B : avec l’ovopositeur en position normale d’attente. 41 3.0 ANATOMIE ET PHYSIOLOGIE 3.1 Le tégument Le tégument est une des plus importantes caractéristiques des insectes permettant d’expliquer leur succès évolutif. Il recouvre tout ce qui est d’origine ectodermique. 3.1.A Rôle du tégument Ø Peau (barrière physique) Ø Point d’attache des muscles Ø Tissus de réserve : un insecte peut récupérer jusqu’à 90% du tégument lors de chaque mue Ø Limite les pertes en eau : l’eau peut pénétrer mais ne peut sortir Ø Barrière contre les agressions du milieu (pathogènes, insecticides, etc.) Ø Base du système respiratoire Ø Base du système sensoriel Ø Base du système digestif 3.1.B Nature physique du tégument (fig. 26) Bien que de nature chimique semblable, certaines parties sont rigides (sclérites) alors que d’autres sont flexibles (conjonctives). Le tégument oblige l’insecte à avoir une croissance morphogénique de type disharmonique (en plateau). Cette caractéristique est souvent utilisée pour identifier le stade larvaire de certains insectes (largeur de la capsule céphalique). 3.1.B.a Épicuticule D’une épaisseur d’environ un micron, elle est composée de une à cinq couches dans lesquelles on ne retrouve pas de chitine. L’épicuticule sert de barrière contre les pertes d’eau et détermine les patrons structuraux et de couleur des insectes. 3.1.B.b Procuticule Elle regroupe au moins trois couches fortement chitinées (exo, méso et endocuticule). Elle intervient, entres autres, dans la couleur et la rigidité des unités tégumentaires (sclérites). 42 3.1.B.b.1 Exocuticule Souvent imprégnée de cuticuline et de substances colorantes, elle constitue la majeure partie des insectes à tégument dur. L’exocuticule est absente au niveau des conjonctives (parties molles). Elle est composée d’éléments relativement stables (quinone, etc.) donc difficilement récupérables lors de la mue. 3.1.B.b.2 Mésocuticule Zone diffuse entre l’exocuticule (zone durcie) et l’endocuticule (zone non durcie). 3.1.B.b.3 Endocuticule Zone non durcie qui constitue la majeure partie des insectes à tégument mou. 3.1.B.c Épiderme C’est une couche de cellules polyploïdes. Bien que chez certains insectes la division cellulaire puisse se poursuivre lors de la mue, celle-ci cesse en général après l’éclosion. Ceci expliquerait la résistance apparente de certains insectes à la radioactivité. On retrouve plusieurs types de cellules dans l’épiderme. Certaines sont dites spécialisées alors que d’autres le seront qu’à un certain stade de développement de l’insecte. On retrouve dans l’épiderme des cellules glandulaires (sécrétions), de même que des cellules trichogènes et tormogènes (rôle sensoriel). 3.1.B.d Membrane basale C’est une couche non vivante d’environ 0,5 micron d’épaisseur, formée de polysaccharides et qui sert de point d’attache aux diverses cellules, telles que les oenocytes (cellules de l’hémolymphe), qui interagissent avec les cellules de l’épiderme. 3.1.B.e Les pores canaux Ce sont des extrusions cytoplasmiques des cellules glandulaires permettant le transport des sécrétions cuticulaires. On pense que ces pores pourraient aussi intervenir pour réparer l'épicuticule lorsque celleci est, pour une raison quelconque, endommagée (par ex. une égratignure). Figure 26 : Section schématisée d’une coupe transversale de la culture montrant sclérite et conjonctive. 43 épicuticule cément cire cuticuline protéine séta chimiorécepteur poil sensoriel épicuticule exocuticule endocuticule épiderme Membrane basale Cellule termogène Cellule trichogène Corps de la cellule nerveuse Cellules des glandes nerf Figure 27 : Le tégument de l’insecte. épicuticule exocuticule endocuticule liquide de la mue épiderme A Ligne de mue B Liquide de la mue Nouvelle épicuticule et cuticule C épiderme D Figure 28 : Processus de la mue. A : exosquelette et épiderme au complet; B : séparation du vieux tégument (apolyse); C : réabsorption de la vieille endocuticule et sécrétion de la nouvelle; D : l’ancien et le nouvel exosquelette. 3.1.C Biochimie du tégument (fig. 27 et 29) 3.1.C.a 3.1.C.a.1 Épicuticule : absence de chitine. Couche de cément Sécrétée par les glandes dermales via les pores canaux (chez les lépidoptères on parle de glande de Versons). Responsable des stries, lignes et autres patrons physiques de l’apparence externe de l’insecte. 44 3.1.C.a.2 Couche de cire Hydrocarbures, acides gras et longues chaînes d’alcool. Perméabilité asymétrique causée par les canaux cireux (unité chimique et non physique). Perméabilité asymétrique : les canaux cireux sont composés d’acide gras. Les acides gras ont à une extrémité un groupe hydrophile (COO) et à l’autre un groupe hydrophobe (C-C-C-C-). Ainsi, selon l’orientation de l’acide, une molécule d’eau sera attirée ou repoussée. De plus, un transport actif par des protéines hydratées pourrait intervenir à l’intérieur de la cuticule. 3.1.C.a.3 Couche de polyphénolique Protéines (cuticuline) et polyphénols. 3.1.C.b • • • Procuticule Zone chitinisée Les diverses couches peuvent être différenciées seulement après le processus de durcissement Trois groupes de composés chimiques (chitine, protéines, lipides) 3.1.C.b.1 Chitine • Polymère d’acétylglucosamine (liaison de type β) glucose groupe aminé (NH2) + acétyl (CH3COOH). • 10% à 60% du poids sec de l’insecte. • Elle fut identifiée en 1811 à partir de champignons d’où son nom original de fungicine. En 1823, Odier l’a retrouva dans les élytres des scolytes et lui donna le nom de chitine. • Elle est chimiquement assez proche de certains composés bien connus. Par ex., si on substitue le groupe acétyl par un groupe hydroxyl on obtient la cellulose. Si en plus on change les liaisons β par des liaisons de type ∂, on obtiendra le glycogène. • Elle est insoluble dans l’eau, l’éther, les acides organiques et l’alcool. Toutefois, elle est soluble dans les acides minéraux portés à ébullition (le produit noir et mou obtenu porte le nom de chitosan). • On la retrouve associée aux acides aminés et aux quinones qui interviennent lors du processus de durcissement du tégument. • Synthèse de la chitine (fig. 29); mentionnons que le produit de départ de cette synthèse est le tréhalose. Le tréhalose est un disaccharide qui contrairement au glucose n’influence pas le pH interne de l’organisme. C’est pourquoi les insectes utilisent le tréhalose au lieu du glucose comme sucre circulatoire. Lorsque le glucose est requis, une enzyme (la tréhalase) vient scinder le tréhalose en deux molécules de glucose. C’est au niveau de cette synthèse que certains insecticides comme le Dimilin (benzophényl d’urée) agissent. 3.1.C.b.2 Protéine Elles sont relativement abondantes dans la cuticule. En 1971, Anderson identifia un groupe de protéines présent dans les zones flexibles du tégument. Il leur donna le nom de résiline. Les protéines de la cuticule portent généralement le nom de cuticuline. 45 3.1.C.b.3 Lipides Ils sont peu abondants mais de nature très variée (saturés, insaturés, avec des groupes alcools, acides, etc.) Figure 29 : La synthèse de la chitine. Processus de durcissement (tannage) et de pigmentation du tégument (fig. 30) • Selon le besoin de rigidité, ce processus interviendra de façon plus prononcée (partie molle). • C’est un processus interne qui ne requiert que l’apport d’oxygène (comme accepteur d’électrons). 46 • Le principal mode consiste à relier entre eux les éléments (micelles) de la matrice des cons- • tituants. Pour ce faire plusieurs types de liaisons peuvent intervenir : - Covalente - Pont hydrogène - Pont disulfite - Liaisons d’association entre groupes similaires Un certain nombre de produits comme les KCN (carbamate) peuvent bloquer la formation de dopa. Fait à noter, la dopa est largement utilisée par certaines peuplades pour lutter contre la maladie de Parkinson. 3.1.D Processus de la mue (fig. 28) Elle est initiée par la production d’ecdysone (hormone) laquelle serait influencée par des facteurs allant de la pression interne de l’insecte aux facteurs nutritionnels et en passant par des stimuli environnementaux. Mentionnons que lorsque les niveaux d’hormone juvénile sont abaissés, la mue proprement dite fait place à ce qu’on appelle la métamorphose. Les stades de la mue : 3.1.D.a Activité des cellules épidermiques Les cellules épidermiques et glandulaires grossissent et l’on note une intense activité des noyaux cellulaires. 3.1.D.b Séparation du vieux tégument (apolyse) Un espace dit exuvial se forme entre l’épiderme et le vieux tégument. 3.1.D.c Formation d’une nouvelle épicuticule Cette nouvelle couche est déposée entre l’épiderme et l’espace exuvial. 3.1.D.d Production du liquide de la mue Ce liquide est acheminé par les pores canaux et digérera facilement la zone non durcie du tégument (endo- et mésocuticule) et plus difficilement la zone durcie (exocuticule). L’insecte peut ainsi réabsorber, toujours via les pores canaux et les cellules glandulaires, près de 90% du vieux tégument. Seule la vieille épicuticule et une partie de l’exocuticule ne seront pas digérées par ce liquide. 47 3.1.D.e Élaboration de la nouvelle procuticule 3.1.D.f Ecdysis C’est la sortie du «nouvel» insecte par la suture ecdysiale (au niveau de cette suture on ne retrouve pas d’exocuticule. 3.1.D.g Étirement du tégument par la pression sanguine 3.1.D.h Processus de durcissement 48 Figure 30 : Processus de durcissement et de pigmentation du tégument. 49 3.2 Le système digestif Ingestion : Digestion : Absorption : capacité d’un organisme à prendre du matériel de l’extérieur. processus qui rend les produits chimiques absorbables. permet de transférer le matériel du système digestif vers les tissus qui utilisent ce matériel. Figure 31 : Le système digestif. Le système digestif des insectes est formé de trois parties d’origine différente. Ce sont : l’intestin antérieur d’origine ectodermique, l’intestin moyen ou estomac d’origine endodermique et l’intestin postérieur d’origine ectodermique. Les parties d’origine ectodermique sont des invaginations de la paroi du corps et sont donc recouvertes de cuticule. Par le fait même ces parties ne participent pas à l’absorption de la nourriture et elles sont renouvelées à chaque mue. À l’inverse, la zone d’origine endodermique (l’intestin moyen) n’est pas recouverte de cuticule et est responsable de l’absorption de nourriture. Chez certains parasitoïdes il y a absence d’intestin postérieur alors que chez d’autres insectes comme les éphémères le système digestif est complètement absent. Chez certains endoparasitoïdes il y a absence d’intestin antérieur car leur nourriture est déjà partiellement digérée avant l’ingestion. Chez plusieurs insectes de type suceur (moustiques, pucerons, etc.) l’intestin postérieur est ramené vers l’intestin antérieur formant ainsi une chambre de filtration de sorte qu’il y a communication directe entre ces deux entités, augmentant ainsi l’efficacité d’alimentation de ces insectes. Figure 32-a : Chambre de filtration. 50 3.2.A L’intestin antérieur 3.2.A.a Les glandes salivaires • Les glandes mandibulaires produisent de la salive. Chez l’abeille ces glandes produisent une phéromone. • Les glandes maxillaires produisent un liquide qui lubrifie les pièces buccales. Chez certains hyménoptères elles produisent aussi certaines toxines. • Les glandes pharynginales produisent des enzymes qui permettent la transformation du pollen en miel. • Les glandes labiales sont des glandes salivaires qui produisent des enzymes de même qu’un liquide lubrifiant. Chez les lépidoptères et les trichoptères ces glandes produisent de la soie. 3.2.A.b • Comme déjà mentionné le type de pièces buccales est fonction du type d’alimentation de l’insecte. 3.2.A.c • Œsophage Il sert de passage entre la tête et le prothorax. C’est un tube cylindrique relativement étroit. 3.2.A.f • Le pharynx Le pharynx est riche en muscles circulaires qui permettent l’ingestion des fluides. Le pharynx est donc très développé chez les insectes suceurs. 3.2.A.e • La cavité buccale Zone où le substrat nourricier commence à être mélangé au fluide digestif. Chez les insectes se nourrissant de liquide cette entité est absente. 3.2.A.d • La bouche Jabot C’est la dilatation de l’œsophage qui fait office de poche élastique permettant de régulariser la vitesse de mouvement de la nourriture dans le système digestif. 3.2.A.g Proventricule (gésier) 51 • Il sert de valve permettant de régulariser le mouvement de la nourriture dans le système digestif. Les parois du proventricule possèdent une très forte musculature. L’intérieur de la paroi est muni de plis longitudinaux armés de dents chitinisées. 3.2.B L’intestin moyen (estomac) L’intestin moyen est situé entre le premier et le quatrième segment abdominal. Étant d’origine endodermique il n’est pas recouvert de cuticule. C’est dans cette zone que les aliments sont absorbés. De plus, cette zone est caractérisée par une très forte production d’enzymes digestives. Les aliments qui pénètrent dans l’estomac n’entrent jamais en contact avec les parois de ce dernier. En effet, une membrane spécialisée, la membrane péritrophique entoure les aliments dès leur entrée dans l’estomac, protégeant ainsi les cellules de la paroi stomacale. Cette membrane est continuellement produite de sorte que l’on en retrouve des morceaux dans les excréments. 3.2.B.a Caecums gastriques Constitués d’une série de diverticules (généralement six à huit paires) dont l’ouverture est à la jonction du proventricule et de l’estomac. Les caecums gastriques ont un rôle de stockage de bactéries, d’absorption et de sécrétion d’enzymes. 3.2.C L’intestin postérieur Comme l’intestin antérieur il est d’origine ectodermique et est donc doublé intérieurement de cuticule. 3.2.C.a Le pylore C’est un système de valves qui agit sur le contrôle du mouvement de la nourriture dans le système digestif. Le pylore est le point d’attache des tubes de Malpighi, un système de tubes très fins agissant au niveau de l’excrétion. Bien qu’ils aient la même fonction que nos reins, les tubes de Malpighi ne constituent pas un système de filtration basé sur un gradient de pression. Les tubes de Malpighi fonctionnent pas diffusion (ex. : Na, H2O) et par transport actif (ex. : K) des éléments à transférer de l’hémolymphe (sang des insectes) vers l’intestin postérieur. 52 L’urate est transporté de l’hémolymphe vers l’intestin. La baisse de pH près de l’intestin transforme l’urate en acide urique (un cristal qui est évacué via l’intestin). Chez la plupart des insectes les déchets azotés sont éliminés sous forme d’acide urique (insoluble dans l’eau) car ils doivent maintenir leur intégrité aqueuse. Les oiseaux utilisent aussi l’acide urique comme produit d’évacuation des déchets azotés afin de limiter leur poids pour voler. Pour l’être humain, c’est l’urée qui remplace l’acide urique. Concernant la plupart des animaux aquatiques c’est l’ammoniaque qui remplace l’acide urique. 3.2.C.b L’intestin grêle (iléon) Bien que peu d’absorption d’éléments nutritifs s’y fasse, l’iléon refait souvent le transfert de l’eau, des sels et des acides aminés, de l’intestin vers l’hémolymphe, sinon, ils sont évacués. Chez certains insectes l’iléon sert de chambre de fermentation. 3.2.C.c Le gros intestin C’est un tube étroit difficilement discernable de l’élion et qui possède les mêmes fonctions. 3.2.C.d Le rectum Le rectum est un élargissement de l’intestin postérieur, entre le gros intestin et l’anus. Il a la même fonction que l’iléon. Chez les odonates, il a aussi un rôle de locomotion et de respiration. On y retrouve une couche de cellules épithéliales spécialisées qui jouent un rôle dans le maintien de la pression osmotique. 3.2.C.e L’anus C’est l’ouverture postérieure du tube digestif. Chez certains insectes (par ex. le moustique vivant dans l’eau salée) on y retrouve les papilles anales qui permettent de régulariser la pression osmotique de l’insecte. L’intestin postérieur a une très faible production enzymatique, ses fonctions principales étant l’absorption des liquides et l’élimination des matériaux non digérés. 3.2.D La digestion La digestion est un processus d’hydrolyse qui réduit la taille des molécules pour les rendre absorbables par les membranes. Le processus chi- 53 mique est basé sur la production d’enzymes laquelle diminue de la cavité buccale vers l’intestin postérieur. Certains insectes, comme la mouche domestique, sécrètent des enzymes sur leur nourriture afin qu’elle soit prédigérée pour ensuite être ingérée. Pour la plupart des insectes la digestion se fait principalement au niveau de l’intestin moyen. Diverses enzymes sont utilisées dans le processus de digestion. Selon le type d’alimentation, les insectes ont un bagage enzymatique varié. Ainsi, seuls les Cérambycidae (comme le longicorne) et les Anobiidae possèdent la cellulase, une enzyme permettant de digérer la cellulose. Chez les autres insectes se nourrissant de matière ligneuse, des agents symbiotiques comme des champignons et des bactéries symbiotiques sont utilisés pour digérer la cellulose. Les Scolytidae peuvent, pour leur part, digérer les hémicelluloses à l’aide de l’hémicellulase. Le processus de digestion est sous contrôle du système hormonal et du système nerveux. 54 Figure 32-b : Variations du système digestif chez les insectes. A : sauterelle; B : carabidés; C : patineur; D : cigale; E : papillon; F : mouche domestique. Aint : intestin antérieur; Cr : jabot; FilC : chambre filtrante; Gc : caecums gastriques; Mal : tubes de Malpighi; Oe : oesophage; Ph : pharynx; Pvent : proventricule; Rec : rectum; Vent : ventricule. 3.3 3.3.A Le système respiratoire Composantes du système respiratoire trachéen Chez l’homme : l’oxygène est transporté par le sang via une protéine (hémoglobine). Chez l’insecte : sauf exception, comme dans le cas de Gasterophilus intestinalis (De G.) qui possède une protéine équivalente à notre hémoglobine, l’oxygène est transporté directement aux cellules par un système de trachées. Ce système d’origine ectodermique (résultat de l’invagination de la membrane embryonnaire), donc recouvert de cuticule, débouche sur des ouvertures extérieures appelées stigmates. Selon le nombre de paires de stigmates fonctionnels qu’un insecte possède, on le classifiera comme Polypneustique (8 à 10 paires), Oligopneustique (1 à 2 paires) et Apneustique (0). Dans le cas des Apneustiques, l’air est diffusé directement à travers la cuticule. 55 3.3.A.a Stigmate : ouverture vers l’extérieur où il y a présence de deux (ouverture et fermeture) ou d’une (fermeture seulement) paires de muscles. 3.3.A.b Plaque filtrante : pour éviter l’entrée de poussière. 3.3.A.c Atrium : permet au système de rester ouvert et fonctionnel. 3.3.A.d Trachée : > 5 microns; elles sont renforcées par de larges bandes cuticulaires verticales pour éviter pour éviter leur affaissement. 3.3.A.e Trachéoles : < 5 microns; elles débouchent directement sur la cellule; près de la cellule, ces trachéoles sont remplies d’eau; cette colonne d’eau augmente en longueur lorsque l’insecte est au repos. Le système trachéen est la principale source de perte d’eau chez les insectes. Étant donné que l’ouverture des stigmates est en grande partie contrôlée par la quantité de CO2 contenue dans l’insecte, une trop forte exposition de CO2 aura comme conséquence la dessiccation de l’insecte. Le transport des gaz respiratoires se fait principalement par ventilation (air-air). La diffusion existe aussi mais de façon secondaire. Contrairement à l’oxygène, le CO2 peut être évacué par le système circulatoire sous forme de bicarbonate. Toutefois, celui-ci peut aussi être évacué via le système digestif, respiratoire ou par diffusion à travers certaines parties de la cuticule. Pour assurer son système de ventilation, l’insecte peut gonfler son abdomen (télescopage des segments abdominaux) forçant ainsi l’air à pénétrer plus rapidement dans les trachées. De plus, lorsque les stigmates sont fermés, l’insecte se contracte (aplatissements dorsaux-ventraux) de façon à ce que l’air soit poussé dans les trachéoles. Il est à noter que des liens entre les troncs trachéens permettent de relier tout le système respiratoire. Ainsi l’insecte peut respirer par un stigmate si nécessaire. Figure 33 : Schéma du système trachéen chez les insectes. 56 3.3.B Autres systèmes respiratoires Bien que la grande majorité des insectes aient un système trachéen, plusieurs variantes plus ou moins prononcées méritent d’être mentionnées. 3.3.B.a Insectes aquatiques respirant à la surface de l’eau : • Siphon respiratoire • Plastron : poils hydrophobes sous le corps de l’insecte • Emmagasinage d’air sous les élytres (par ex. : Dytique) 3.3.B.b Utilisation de l’air contenu dans les végétaux immergés : • Certains insectes peuvent capturer les bulles de gaz rejetées par les plantes • Les larves de Curculionidés (charançon) obtiennent leur oxygène à partir de l’aérenchyme des végétaux en déchirant les tiges ou les racines 3.3.B.c Utilisation de l’oxygène dissous dans l’eau : Chez les insectes aquatiques, il y aura une certaine diffusion de l’oxygène dissous dans l’eau à travers le tégument. Toutefois, cette diffusion tégumentaire ne suffit plus lorsque l’insecte est d’assez grande taille. • Trachéobranchie : présente pour la majorité des larves aquatiques et chez certaines nymphes. Leur forme et localisation sont très diverses : elles peuvent être lamellaires ou filamenteuses. Chez les larves d’éphéméroptères, elles sont présentes sur les sept premiers segments abdominaux. Chez les plécoptères, les branchies filamenteuses sont, selon les genres, céphaliques, thoraciques ou abdominales. Ici, l’oxygène entre par diffusion. • Plastron aérifère : le principe consiste à transporter sous l’eau une bulle d’air qui fait office de branchie physique. Cette bulle d’air qui contient, entre autre, de l’azote et de l’oxygène, est soumise à la loi des pressions partielles. Ainsi, à mesure que l’oxygène contenu dans la bulle est utilisé, une quantité dissoute dans l’eau vient prendre sa place par diffusion. L’azote étant très peu soluble dans l’eau, ce système s’avère être très efficace. Évidemment, si l’azote était totalement insoluble dans l’eau, l’insecte n’aurait jamais besoin de remonter à la surface pour «refaire le plein». 57 3.3.B.d Insectes endoparasites : • Chez certains Chalcidoidae, la larve de premier stade utilise un pédicelle qui fait saillie hors de l’hôte. • Les larves d’Hypoderma, endoparasite de vertébrés, perforent les tissus de l’hôte de telle sorte que leurs stigmates communiquent avec l’extérieur. • Certaines larves de Tachinides prélèvent l’oxygène directement du système trachéen de leur hôte. • Une grande proportion des insectes endoparasites prélève l’oxygène par diffusion à partir des tissus de l’hôte. • Comme déjà mentionné, Gasterophilus intestinalis (De G.) possède une protéine équivalente à notre hémoglobine. 3.3.C Rôles du système trachéen a) Respiration. b) Vision : on retrouve chez certains papillons nocturnes, derrière la rétine, une abondante quantité de trachées qui, en reflétant la lumière, améliorent la vision nocturne. c) Son : les cigales utilisent des sacs aérifères pour produire leur «chant» caractéristique. d) Support : les sacs aérifères et les trachées permettent un bon support des organes internes. e) Mue. f) Isolation thermique. g) Vol : sert à maintenir l’équilibre lors du vol et peut aussi servir d’amortisseur. h) Système de refroidissement : évaporation via les stigmates. i) Tissus connectifs : les insectes n’ayant pas de tissus connectifs, les trachées en font office. 58 j) Organe hydrostatique : grâce à un certains nombre de senseurs reliés au système trachéen, l’insecte peut détecter tout changement de pression. k) Défense : certains insectes vont propulser un jet d’air lorsqu’ils sont des menacés. D’autres vont s’en servir pour produire des sons. Figure 34 : Système trachéen chez les insectes. 59 Figure 35 : Larve d’Eristalis avec son siphon respiratoire. Figure 36 : Spiracle entouré de poils hydrofuges; à gauche, les poils sont refermés sur le stigmate empêchant l’entrée d’eau; à droite, les poils sont séparés par la tension de la surface de l’eau exposant le stigmate à l’air. Figure 37 : Les trachéo-branchies d’un éphéméroptère. 60 Figure 38 : Coléoptère sur une tige aquatique; l’antenne droite est appliquée contre une bulle d’oxygène sortie de la tige. Figure 39 : Diagramme de l’arrangement des poils chez Hydrophilus montrant le mode de formation des plastrons. 61 3.4 Le système circulatoire Le système circulatoire des insectes est un système ouvert sans vaisseaux sanguins. Il est composé d’un tube dorsal perforé sur les côtés (ostioles), fermé postérieurement et ouvert au niveau de sa partie antérieure. Ainsi, tous les organes de l’insecte baignent dans un liquide qui fait office de sang et que l’on nomme l’hémolymphe. Étant ouvert, le système circulatoire des insectes est beaucoup moins efficace que le nôtre. Toutefois, étant donné qu’il ne joue pas de rôle dans la respiration (sauf dans le cas d’un nombre limité de cellules puisant leur oxygène de l’hémolymphe), ce système demeure suffisamment efficace pour les besoins de l’insecte. Bien que l’hémolymphe circule généralement de la partie postérieure du tube dorsal vers la partie antérieure, cette orientation peut être renversée au besoin. Par exemple, certains insectes renversent le sens de leur circulation sanguine pour pousser leur ovipositeur vers l’extérieur. Ce système de circulation renversée est souvent utilisé lors de la mue pour augmenter le volume de certaines parties du corps. Le système circulatoire comprend l’hémolymphe (sang) et le vaisseau dorsal. Figure 40 : Structure du système circulatoire, les flèches indiquent le sens de la circulation. 3.4.A L’hémolymphe (sang) L’hémolymphe est un liquide qui contient des cellules sanguines, les hémocytes circulant dans une cavité nommée hémocelle. L’hémolymphe ne contient pas d’hémoglobine car chez les insectes l’oxygène est absorbé surtout physiquement et non chimiquement. L’hémolymphe contient de l’eau, des hormones, des produits de digestion, des déchets métaboliques de même que diverses inclusions solides telles que bactéries, cellules de corps gras, cristaux, etc. En ajustant leur contenu en eau, les insectes peuvent faire varier leur volume sanguin de 0,9% à 45% de leur volume total en quelques heures. Cette capacité est souvent utilisée pour minimiser le poids de l’insecte lors du vol. De plus, cette capacité permet de réduire les chances de cristallisation de l’eau à l’intérieur des cellules lorsque l’insecte est exposé à de très basses températures. 62 3.4.B Le vaisseau dorsal Figure 41 : Vue en plongée du cœur dorsal et du diaphragme dorsal. 3.4.B.a Le cœur : tube fermé à l’extrémité postérieure et qui s’étend du neuvième segment au deuxième segment abdominal. Il est composé d’un certain nombre de chambres ayant chacune deux ouvertures ou ostioles. Selon l’insecte, les conditions de température, les activités et le statut physiologique de l’animal, le cœur peut effectuer de 15 à 150 battements à la minute. Ces battements sont toutefois sous régulation hormonale et nerveuse. 3.4.B.b L’aorte : au niveau du thorax et de la tête, le vaisseau dorsal porte le nom d’aorte. Il s’agit ici d’un tube non contractile qui peut néanmoins s’associer à des organes pulsatifs pour diriger le sang vers les ailes, les pattes et les antennes. 3.4.B.c Les sinus et diaphragmes : la cavité hémocellique se divise en trois sinus délimités par deux diaphragmes. Le diaphragme dorsal sépare le sinus dorsal du sinus périviscéral du sinus ventral. Le diaphragme ventral sépare le sinus ventral du sinus périviscéral. Les diaphragmes sont des cloisons fibromusculaires. 63 Sinus périviscéral Figure 42 : Vue en coupe montrant la position du cœur et des diaphragmes. 3.5 Le système reproducteur Les insectes sont bisexuels, c’est-à-dire que l’on retrouve mâles et femelles. La reproduction sans l’intermédiaire du mâle peut avoir lieu (parthénogenèse), mais habituellement la combinaison du sperme et de l’ovule est nécessaire pour produire un nouvel individu. Le système reproducteur comprend une paire de gonades (ovaires pour la femelle et testicules pour le mâle) qui est située dans l’abdomen, un conduit partant de chaque gonade se rejoignant pour former le conduit principal qui débouche hors du corps de l’insecte. De plus, le système reproducteur comprend des glandes spécialisées et des chambres pour l’entreposage du sperme. Il y a un parallèle entre le système reproducteur du mâle et celui de la femelle et la plupart des parties des deux systèmes possèdent une symétrie bilatérale. 3.5.A Le système reproducteur de la femelle Les gonades de la femelle (ou les ovaires) déchargent les œufs dans une paire d’oviductes latéraux, presque toujours formée à partir du mésoderme. Chaque ovaire est composée habituellement de tubes à œufs qui portent le nom d’ovarioles et sont occasionnellement attachés ensemble par une membrane extérieure formant un organe plus ou moins compact. Il y a généralement de quatre à huit ovarioles dans chaque ovaire, mais certains hyménoptères peuvent en 64 avoir plus de 200 (par ex. la reine chez les termites). Par contre, chez certains diptères vivipares, l’ovaire est constitué d’un seul ovariole. Un ovariole comprend un filament terminal, un germarium et un vitellarium. Les filaments terminaux de tous les ovarioles d’un même côté se rejoignent souvent pour former un ligament de suspension. Le germarium apical contient les cellules germinales (ou oogonia). Ces dernières se différencient par la suite en oocytes et quelquefois, lorsque présentes, en trophocytes. Le vitellarium est constitué d’une série d’œufs en développement, le plus petit et le plus jeune étant le plus près du germarium. Les ovarioles aboutissent à un conduit élargi, le calice ovarien et se prolonge par l’oviducte. Le vagin est formé par la réunion des deux oviductes. La spermathèque ou réceptacle séminal est un organe en forme de sac qui débouche dans le vagin. Les spermatozoïdes reçus lors de l’accouplement sont entreposés dans la spermathèque et passent par le conduit qui rejoint le vagin pour fertiliser les œufs à mesure qu’ils passent dans le vagin avant d’être déposés. Les glandes accessoires sont souvent présentes et servent à la production de colle utilisée pour que l’œuf adhère au substrat, ou encore, à la production d’une substance utilisée pour la formation du chorion. Figure 43 : Les différentes composantes du système reproducteur femelle. 65 Conduit spermatique Figure 44 : Système reproducteur femelle chez les lépidoptères supérieurs. filament terminal germarium cellules nourricières oocytes follicules A B Figure 45 : Schéma de deux types d’ovarioles chez l’insecte femelle. 3.5.B Le système reproducteur du mâle Les parties du système reproducteur des mâles comprennent la paire de gonades, les testicules et deux conduits latéraux, les vases déférents. Chaque testicule est composé de follicules d’un nombre variable qui s’ouvrent par un passage étroit, les vases efférents pour se terminer au vase déférent. Les testi66 cules sont couverts par une couche de cellules épithéliales. À l’apex du follicule, on retrouve le germanium. Les vases déférents se rejoignent pour former le canal éjaculateur qui s’ouvre à l’extérieur par l’édéage ou le pénis. En plus de ces parties essentielles il y a fréquemment une paire de vésicules séminales, ou réservoir de sperme, formées par l’élargissement d’une section des vases déférents. Des glandes accessoires sont souvent présentes et servent à la formation de spermatophores (capsule entourant le sperme) et aide à la conservation du sperme. Figure 46 : Système reproducteur chez les insectes mâles. Figure 47 : Diagramme d’un follicule montrant le développement du sperme. 67 3.5.C La reproduction Chez la plupart des insectes la reproduction dépend de la copulation entre adultes de sexes opposés. La femelle dépose les œufs et après l’éclosion, un insecte immature passera par plusieurs stades pour arriver à l’adulte. Les exceptions de ces généralités ne sont pas rares. 3.5.C.a Transfert de sperme Il y a généralement présence d’accouplement mais le transfert du sperme a lieu de façon particulière. Chez plusieurs aptérygotes les mâles déposent leur semence à l’extérieur en petites gouttelettes. Ces dernières sont prises par les parties génitales de la femelle lorsqu’elle se déplace sur elles. La libellule a un mode de transfert qui lui est propre : avant l’accouplement, le mâle transfert des spermatozoïdes dans un organe secondaire de copulation près du début de l’abdomen, puis la femelle vient les chercher lorsqu’ils sont tous les deux en vol. 3.5.C.b Parthénogenèse Dans ce type de reproduction, les œufs font leur complet développement sans avoir été fertilisés. Il y a des représentants dans la plupart des ordres. La parthénogenèse est obligatoire lorsque les mâles sont absents ou très rares et non fonctionnels. Elle est facultative lorsqu’elle coexiste avec la reproduction normale bisexuelle. Chez la plupart des hyménoptères les femelles pondent deux types d’œufs. Ceux qui sont non fertilisés ont seulement le nombre réduit de chromosomes (haploïde) et donnent naissance à des mâles exclusivement, tandis que les œufs fertilisés avec le nombre complet de chromosomes (diploïde) donnent exclusivement naissance à des femelles. 3.5.C.c Viviparité Chez certains insectes le développement embryonnaire est complété à l’intérieur du corps de la femelle parente qui, alors, produit des jeunes insectes au lieu des œufs. 3.5.C.d Polyembryonie La polyembryonie est la production de deux embryons ou plus à partir d’un seul œuf. Celui-ci peut être fertilisé ou se développer de façon parthénogénétique. 68 3.6 3.6.A Le système nerveux Introduction Le système nerveux des insectes n’est pas unique. On le retrouve chez tous les arthropodes. Éffecteurs : Organe de réponse aux stimuli reçus par des organes récepteurs. Système nerveux : Système conducteur qui assure le fonctionnement rapide et coordonné des éffecteurs. Le système nerveux modifie les réponses selon les facteurs qui agissent sur l’appareil sensitif. 3.6.A.a Rôles du système nerveux Le système nerveux permet à l’insecte de répondre aux stimuli physiques, chimiques, visuels (et autres) de façon adéquate. Le système nerveux ne doit pas être considéré comme un simple relais, il sert aussi à l’intégration de diverses activités du corps par l’intermédiaire, entre autres, du cerveau. Le système nerveux est, par ailleurs, responsable de l’apprentissage chez les insectes. Malheureusement les connaissances concernant cet aspect sont actuellement très limitées. 3.6.A.b Les fonctions du système nerveux (Fig. 48) Ø Perception (sensibilité) Ø Transmission Ø Réaction STIMULUS → RÉCEPTEUR → CELLULES NERVEUSES → ÉFFECTEUR Figure 48 : Diagramme d’un circuit nerveux, la direction du flux nerveux est représentée par les flèches. 69 Exemple : lorsqu’un criquet entre en contact avec le sol, ses ailes cessent de battre. Dans cet exemple, la pression qu’entraîne le contact avec le sol constitue le stimulus, et certaines sensilles incluses dans les tarses agissent en tant que récepteurs. Les cellules nerveuses acheminent ce stimulus jusqu’aux muscles des ailes qui sont des éffecteurs. 3.6.A.c Les neurones Le neurone (cellule nerveuse) constitue l’unité fondamentale du tissu nerveux. Il se trouve donc à la base de la fonction de transmission. Il est formé d’un corps cellulaire, le neurocyte, et de fibres, la dendrite et l’axone qui sont des prolongations cytoplasmiques. La dendrite reçoit les stimuli et les achemine jusqu’au neurocyte. L’axone retransmet les stimuli depuis le neurocyte jusqu’à la dendrite avec laquelle elle est reliée ou encore jusqu’à l’éffecteur. Les neurones sont reliés entre eux par des liens chimiques appelés synapses. * L’acétylcholine est un composé chimique qui est produit au niveau des synapses pour permettre à l’influx nerveux de passer d’un neurone à l’autre. Une fois que l’influx nerveux a traversé le pont synaptique, une enzyme, l’acétylcholinestérase, est produite pour détruire l’acétylcholine et ainsi fermer le pont synaptique et permettre ainsi au système nerveux de se relâcher. Si le pont n’était pas fermé, l’insecte finirait par mourir de convulsions nerveuses. En détruisant l’acétylcholinestérase, les insecticides chimiques (ceux qui agissent sur le système nerveux) entraînent la mort des insectes par convulsions. Ces insecticides ont par ailleurs le même effet sur les êtres humains lorsqu’ils sont utilisés à fortes doses dans le cadre de la guerre chimique. Les neurocytes forment des agrégations. Les renflements qui en résultent portent le nom de ganglions. Le centre du ganglion contient des fibres et plusieurs autres éléments, les neurocytes se retrouvant en périphérie. 3.6.A.d Les parties du système nerveux Les neurones ne se présentent pas de façon isolée. On les rencontre plutôt sous forme agglomérée constituant le système nerveux. Ce dernier se divise en trois parties : Ø Le système nerveux central Ø Le système nerveux stomato-gastrique Ø Le système nerveux périphérique Figure 49 : Système nerveux généralisé. 70 3.6.B Le système nerveux central (Fig. 50) Le système nerveux central comporte trois éléments : Ø Cerveau Ø Ganglion sous-oesophagien Ø Chaîne nerveuse ventrale 3.6.B.a Le cerveau assume l’intégration des messages reçus et, par conséquent, est le principal responsable de la fonction de réaction. Il est situé dans la région dorso-antérieure. On le divise en trois zones : le protocérébron, le deutrocérébron et le tritocérébron. Le protocérébron innerve les yeux composés et les ocelles, le deutrocérébron, les antennes et le tritocérébron, le labre et l’épipharynx. Dans le protocérébron, il existe un ensemble de cellules, la pars intercérébrale, ayant la propriété de sécréter des hormones. Ces dernières sont acheminées vers les corps cardiaques (ganglions) qui sécrètent à leur tour des hormones vers les corps allates. Les corps allates produisent l’hormone juvénile responsable de la métamorphose et de la formation du vitellus de l’œuf. 3.6.B.b Le ganglion sous-oesophagien est issu de la fusion de trois ganglions. Il innerve les mandibules, les maxilles et le labium. 3.6.B.c La chaîne nerveuse centrale est, pour sa part, constituée de trois paires de ganglions thoraciques et d’un maximum de huit paires de ganglions abdominaux. 71 Figure 50 : Vue latérale du cerveau et des structures associées d’un criquet : ao : aorte; br1 : protocérébron; br2 : deutrocérébron; br3 : tritocérébron; ca : corps allates; comn : commissure tritocérébrale; cec : connectif circumoesophagien; cp : canal alimentaire; fcn : connectif du ganglion frontal; fg : ganglion frontal; lbn : nerf labial; lbrn : nerf du labre; mdn : nerf mandibulaire; mxn : nerf maxillaire; ocg : ganglion occipital; ocpd : pédicel ocellaire; opl : lobe optique; phx : pharynx; rn : nerf récurrent; segn : ganglion sous-oesophagien; sld : canal salivaire; tnt : tentorium. 3.6.C Le système nerveux stomato-gastrique Ce système nerveux est formé de trois ganglions : Ø Frontal Ø Hypocérébral (occipital) Ø Ventral 3.6.C.a Le ganglion frontal innerve la bouche (voir fig. 50). 3.6.C.b Le ganglion hypocérébral (ou occipital) innerve le pharynx, l’œsophage et l’aorte (voir fig. 50). 3.6.C.c (fig.51). Le ganglion ventral innerve la partie postérieure du mésentéron Figure 51 : Diagramme montrant le cerveau et le système nerveux stomato-gastrique. 3.6.D Le système nerveux périphérique Le système nerveux périphérique (ou sensoriel) assure la fonction de perception. Il comporte un grand nombre de sensilles que l’on classe en fonction de leur mode de fonctionnement. Dans le cadre de ce cours, nous passerons en revue les récepteurs suivants : Ø Mécanorécepteurs : • Propriorécepteurs • Récepteurs de gravité • Audiorécepteurs Ø Chimiorécepteurs Ø Photorécepteurs 72 3.6.D.a Mécanoréception : au sens large la mécanoréception est définie comme la perception de toute déformation mécanique du corps. Les ondes qui se déplacent dans l’air ou dans l’eau (insectes aquatiques) agissent ainsi sur les sensilles des mécanorécepteurs. L’orientation de l’insecte dans l’espace, la position qu’occupe sa tête par rapport au thorax, le contact de son abdomen avec un objet sont autant d’informations reçues par les mécanorécepteurs. Chaque déformation mécanique du corps entraîne la dépolarisation d’un certain nombre de membranes nerveuses. Les impulsions d’origine externe deviennent alors des impulsions électriques (influx nerveux) dans le système nerveux. 3.6.D.a.1 Sensilles trichoïdes (fig. 52) Ø Poils (ou soies) associés à une cellule nerveuse (ou à plusieurs s’ils jouent un rôle dans la chimioréception). Ø Une cellule appelée trichogène produit le poil (ou la soie). Ø La cavité du poil (ou de la soie) est formée par une cellule qui porte le nom de tormogène. Base du poil Membrane articulaire scolopidie Cellule tormogène dendrite vacuole Noyau de la cellule tormogène cuticule Cellule sensorielle axon épiderme Cellule trichogène Membrane de base Noyau de la cellule trichogène Figure 52 : Diagramme de la base d’une sensille trichoïde. 73 3.6.D.a.2 Sensilles basiconiques Ø Même fonction que les sensilles trichoïdes mais le poil auquel chacune est associée est très court. 3.6.D.a.3 Sensilles campaniformes (fig. 53) Ø En forme de dôme. Ø En forte concentration dans la région du point d’insertion de l’aile. Ø Assurent la perception des degrés de compression ou d’extension à la surface du corps. Cuticule non modifiée Lamelle extérieure Lamelle intérieure Connection cuticulaire scolopidie dendrite cuticule épiderme Figure 53 : Diagramme d’une sensille campaniforme. 3.6.D.a.4 Sensilles placoïdes Ø Plaque fermant les trous formés par certaines cellules tormogènes. 1. Propriorécepteurs : ils captent toute déformation du corps de l’insecte qui dépend de son attitude, c’est-à-dire des positions de ses différentes parties. Les plaques pileuses dont il est question ci-après constituent le meilleur exemple de sites de proprioréception. 74 1.1. • • • Plaques pileuses Formées par des regroupements de poils. Elles se retrouvent dans plusieurs articulations. Chez les criquets, les sclérites cervicaux en comportent plusieurs. Ces plaques pileuses sont stimulées par des vents supérieurs à 2 m/s. Elles font montre de sensibilité directionnelle. Leur orientation permet à l’insecte une réponse en fonction de l’air qui se déplace le long de l’axe de son corps. De telles plaques pileuses assurent le maintien du mouvement des ailes et l’immobilisation des pattes durant le vol. Plaques pileuses antenne Œil composé frons Ocelle latéral Plaque pileuse Ocelle médian Figure 54 : Vue frontale de la capsule céphalique chez le criquet montrant les positions des plaques pileuses. 2. Récepteurs de gravité 2.1. Les plaques pileuses permettent aussi à l’insecte de savoir s’il est à l’horizontale, 2.2. 3. en train de monter ou de descendre. Dans cet optique, elles sont considérées comme des récepteurs de gravité. En fait, la réponse à la gravité est constituée par un ensemble de réactions qui sont dictées par les récepteurs de gravité. Les sensilles des plaques pileuses prises individuellement sont des propriorécepteurs alors que l’ensemble de toutes les sensilles qui sont reliées à l’orientation de l’insecte dans l’espace sont les récepteurs de gravité. Audiorécepteurs : ils intègrent un ensemble d’organes qui captent les compressions et les décompressions (les sons). 3.1. Scolopidie (fig. 55) • Sensille se trouvant sous l’épiderme. Elle est formée de trois cellules : un neurone, une cellule enveloppante et une cellule d’attachement. 75 3.2 Organe chordotonal • • Formé d’une ou plusieurs scolopidies. Normalement impliqué dans l’audition mais peut intervenir en tant que propriorécepteur. 3.3 Organe sous-génal (fig. 56) • • • • C’est un organe chordotonal contenant habituellement de 10 à 40 scolopidies dans la partie proximale du tibia. Associé à une articulation. Se présente en deux parties. Sensible aux vibrations du substrat et aux sons se déplaçant dans l’air. 3.4 Organe de Johnston (fig.57) • • • • C’est un organe chordotonal localisé dans le second segment de l’antenne. Présent chez les adultes, les collemboles et les diplures faisant exception. Chez certains insectes, permet au mâle de localiser les sons produits par les femelles. Pour la mouche à viande, cet organe agit comme indicateur de vitesse; il lui permet de la contrôler et de la maintenir. 76 Cuticule du tympan épiderme Cellule d’attachement Cellule d’attachement Chapeau de la scolopidie Noyau de la cellule d’attachement Chapeau de la scolopidie Tige de la scolopidie cille Régions extracellulaires cille Tige de la scolopidie cille Cellule scolopidienne Régions extracellulaires dendrite Appareil de la racine Appareil de la racine Tige de la scolopidie racine Cellule scolopidienne Région extracellulaire racine dendrite racine Noyau de la cellule scolopidienne dendrite Cellule enveloppante Noyau de la cellule enveloppante Radicelles du cille Noyau du neurone Cellule de la scolopidie Cellule enveloppante racine dendrite Cellule enveloppante Radicelles du cille Cytoplasme du neurone Plis de la cellule de Schwan Noyau de la cellule de Schwan axone axone Plis de la cellule de Schwann Figure 55 : Diagramme d’une section longitudinale d’une scolopidie du tympan d’un criquet avec les sections transversales prises au niveau indiqué. 77 Nerf sensoriel trachée cuticule Cellule sensorielle hémocelle Cellule scolopidienne scolopidie Cellule d’attachement Cellule accessoire Figure 56 : Diagramme de l’organe sous-génal d’une fourmi. poil Base du flagelle Nerf senroriel pédicelle Cellule nerveuse de l’organe de Johnston Anneau externe de scolopidie Anneau interne de scolopidie Paroi de la capsule céphalique Plaque basale Scolopidie solitaire Complexe nerveux de l’organe de Johnston Figure 57 : Diagramme de la partie basale de l’antenne d’un maringouin montrant l’organe de Johnston. 78 3.5 Organes tympanaux (fig. 58, 59 et 60) • • • • • • Ce sont des organes chordotonaux spécialisés. Il s’agit d’une mince couche de cuticule, la membrane tympanique avec en arrière plan un sac d’air lui permettant de vibrer. Un organe chordotonal s’attache à la membrane. On rencontre les organes tympaniques sur les pattes prothoraciques des grillons, sur le métathorax des noctuidae, de même que sur l’abdomen des arpenteuses. On les retrouve aussi dans plusieurs autres régions. Les deux côtés du tympan sont exposés aux sons. Tout son agissant sur la membrane tympanique met celle-ci en mouvement ce qui stimule l’organe chordotonal qui lui est attaché. Des impulsions sont alors produites dans le nerf auditif. Espace sanguin antérieur Ouverture de la cavité tympanique Cellule d’attachement scolopidie Membrane basale Nerf auditif trachée Cellule sensorielle Membrane divisant la trachée tympan tympan Cavité tympanique nerfs Espace sanguin postérieur trachée muscle Figure 58 : Section transversale d’un tibia montrant l’arrangement des organes tympanaux chez Dectius. 79 Nerf provenant d’une partie de l’organe sous-génal Cellule sensorielle de l’organe sous-génal Cellule scolopidienne de l’organe sous-génal Cellule d’attachement de l’organe sous-génal Scolopidie proximale du crista acoustica Cellules d’attachement de la scolopidie distale Bandes de support du crista acoustica Insertion d’une scolopidie dans la cellule d’attachement Membrane tympanique trachée Nerf auditif Cellule senssorielle de l’organe intermédiaire Cellule scolopidienne de l’organe intermédiaire Cellule d’attachement Cellules sensorielles du crista acoustica Cavité tympanique Membrane tympanique Cuticule du tibia Paroi de la membrane divisant la trachée Figure 59 : Section longitudinale d’un tibia de Dectius montrant l’arrangement des organes tympanaux et des organes chordotonaux associés. 80 métathorax Nerf auditif Membrane tympanique Sacs aérifères tympaniques Spiracle métathoracique trachée Ligament du phragme scutal Bügel Organe chordotonal conjonctive épaulette Membrane tympanique Première spirale abdominale Renfoncement tympanique Premier segment abdominal Cavité tympanique Figure 60 : Section horizontale du métathorax et de la base de l’abdomen d’un Noctuidae montrant les organes tympanaux. 3.6.D.b Chimioréception : Les sensilles qui participent à la chimioréception se retrouvent principalement dans les antennes, les pièces buccales et les pattes. Elles sont caractérisées par la présence de nerfs très fins dont la partie terminale est exposée grâce à de petites ouvertures dans la cuticule. Mécanisme de chimioréception A A : composé perçu B : composé non perçu C : enzyme D : protéine ¯ Les composés A et B pénètrent dans la sensille. Terminaison nerveuse 81 B ¯ Le composé A se fixe au récepteur protéique P. Le composé B est détruit par les enzymes. Les enzymes ne peuvent détruire le composé A car ce dernier est fixé à la protéine P. signal C ¯ La protéine P libère le composé A au niveau des terminaisons nerveuses. Le composé A engendre un influx nerveux et est ainsi détecté. D ¯ Le composé A est détruit par les enzymes de façon à éviter la saturation du milieu. 3.6.D.b.1 • • • Olfaction (gaz) (fig. 61 et 62) Les sensilles basiconiques à paroi mince, de même que les sensilles coeloniques sont reconnues en tant que récepteurs olfactifs. L’olfaction oriente la femelle vers un site de ponte. Elle permet aussi à l’insecte de se diriger vers sa nourriture ou vers un individu de sexe opposé. Les insectes ont eux-mêmes la capacité de rejeter certaines substances odorantes à l’extérieur de leur corps. Ces substances sont appelées phéromones (ou phérormones). Elles sont classées ci-dessous en cinq catégories : • Les traceurs servent à marquer des sentiers. 82 • • Les attractants sexuels sont produits par une glande contenue en général entre deux segments abdominaux et ont pour objet de faciliter les rencontre entre mâles et femelles. Les marqueurs de surface servent aux individus d’une même caste à se reconnaître entre eux ou indiquent la présence d’un bon site. fiche Ouverture cuticulaire dendrites Point basal Point où les dendrites dépassent de la scolopidie vacuole cuticule scolopidie dendrites Cellule trichogène Cellule tormogène Neurones sensoriels Fibres sur la partie externe de la cellule tormogène épiderme Cellule glandulaire Membrane basale nerf Figure 61 : Diagramme d’une sensille basiconique à paroi mince d’une antenne d’un criquet. Ouverture dans la cuticule cavité Ouverture du bout de la fiche Résidu du liquide de la mue fiche cuticule vacuole scolopidie Cellule tormogène dendrites Cellule trichogène Neurones sensoriels épiderme Cellule glandulaire nerf Membrane basale Figure 62 : Diagramme d’une sensille coélonique d’une antenne de criquet. 83 • Les phéromones d’alarme avertissent les autres insectes d’un danger ou déclenchent l’agressivité des insectes qui les perçoivent (cas des abeilles). Les phéromones morphogénétiques affectent la progéniture. • 3.6.D.b.2 Chimioréception de contact (liquides ou gaz concentrés) (fig.63) • Les chimiorécepteurs de contact confèrent à l’insecte la possibilité de trouver le • lieu précis de sa nourriture et de reconnaître le sexe opposé. Ils permettent en outre à la femelle de pondre à un endroit propice. Les chimiorécepteurs de contact les mieux connus sont les sensilles trichoïdes que l’on retrouve sur les pattes et les pièces buccales de Phormia. ouverture Bouts exposés des dendrites scolopidie A Cavité du poil Membrane basale vacuoles dendrite Cavité de la scolopidie Membrane articulaire Dendrite du mécanorécepteur Noyau de la cellule tormogène cuticule Cellule trichogène B épiderme Neurone sensoriel membranes nerf scolopidie dendrite Noyau de la cellule trichogène Figure 63 : A : Diagramme d’une sensille trichoïde de chimioréception; B : section transversale d’une sensille trichoïde près de la base du poil montrant les invaginations de la scolopidie entre les dendrites. 3.6.D.c Photoréception : chez les insectes, la lumière peut être perçue par les organes suivants : Ø Ø Ø Ø Récepteurs tégumentaires Ocelles Stemmates Yeux composés 84 3.6.D.c.1 • • • Récepteurs tégumentaires Les récepteurs tégumentaires peuvent se retrouver autant chez les larves à métamorphose complète ou incomplète que chez les adultes. Ils ont un certain rôle à jouer dans l’orientation par rapport à la lumière. En effet, les ténébrions, par ex., continuent à répondre à la lumière après l’occlusion des récepteurs de la vision. Pour Schistocerca, on a remarqué que ces récepteurs gouvernaient la lamellogénèse de la chitine. 3.6.D.c.2 • • • Stemmates (fig. 64) Les stemmates sont les yeux des larves à métamorphose complète. On en retrouve généralement six de chaque côté de la tête. Ils sont disposés en forme de croissant. Ils se composent d’une cornée, de sept cellules rétiniennes et parfois d’un cristallin. Les stemmates sont responsables de la perception des images et des couleurs. 3.6.D.c.3 • • • Ocelles (fig. 65) Les ocelles appartiennent aux adultes ainsi qu’aux larves à métamorphose incomplète. Ce sont des lentilles biconvexes (cuticule transparente) en communication avec des cellules nerveuses sensibles à la lumière. Ils ont pour rôle de mesurer les intensités lumineuses. Ils ne sont donc pas impliqués dans la perception des images et des couleurs. Capsule céphalique épicuticule exocuticule endocuticule épiderme Stemmate tripartite stemmates antenne A Noyau de la Cellule cornéenne Lentille cristalline Rhabdom distal Cellule sensorielle Rhabdom proximal Cellule cornéenne Noyau de la membrane enveloppante B Figure 64 : A : vue latérale de la tête d’une chenille montrant la position des stemmates; B : section d’un stemmate. 85 Lentille cuticulaire Noyau de la cellule cornéenne cuticule épiderme rhabdom pigment Cellule sensorielle Noyau de la cellule sensorielle Nerf ocellaire Figure 65 : Section à travers un ocelle dorsal d’un homoptère. 3.6.D.c.4 • • • • • • • • • Yeux composés Les yeux composés se retrouvent chez les larves des insectes à métamorphose incomplète et chez les adultes. Chaque œil composé est constitué d’un ensemble d’ommatidies qui en sont les unités sensorielles. Les lépismes n’en possèdent que dix alors que les odonates en ont dix mille par œil composé. La surface externe de chaque ommatidie constitue une facette. Chaque ommatidie possède une cornée et un cristallin (formant l’appareil dioptrique) et huit cellules rétiniennes adjacentes dont le regroupement forme un cylindre. La rétine contient des pigments microsensibles, les microvillies. On appelle le rhabdom l’ensemble de toutes les microvillies et rhabdomères, l’ensemble des microvillies d’une même cellule rétinienne. Les yeux donnent lieu soit à une apposition des images, soit à leur superposition. Dans le premier cas, on parle de yeux photoptiques, ce sont les yeux diurnes. Dans le second, les yeux sont scotoptiques, c’est-à-dire nocturnes. Dans le cas de l’apposition d’images, les microvillies sont collées au cristallin et l’étanchéité existe d’une ommatidie à l’autre. Le phénomène est plus complexe pour la superposition. Les yeux doubles : l’œil d’un insecte aquatique peut présenter deux régions distinctes. La région supérieure, par exemple, peut contenir des ommatidies de diamètre supérieur à ceux de la région du bas. L’œil du gyrin est à la fois aquatique et terres- 86 tre. Les ommatidies dorsales des odonates sont sensibles au violet et à l’ultraviolet, alors que les ventrales le sont au bleu et au vert. Facettes de l’omatidie cornée Système de lentilles Cône cristallin Cellule cornéenne Cellules pigmentaires rétine Crête oculaire rhabdom Cellule rétinienne Nerfs coordinateurs Membrane basale nerfs A B Figure 66 : A :section verticale d’une partie d’un œil composé; B : structure typique d’une ommatidie. 87 Index des figures Figure 1 : Évolution des insectes à partir des annélides. ................................................................ 7 Figure 10 : Les différentes régions schématisées. .......................................................................... 20 Figure 11 : Les trois parties du corps de l’insecte. .......................................................................... 21 Figure 12 : Les types de position buccale. ...................................................................................... 23 Figure 13 : Les sclérites et les sutures de la capsule crânienne..................................................... 24 Figure 14 : Vue montrant le tentorium (capsule céphalique enlevée). ............................................ 25 Figure 15 : Section à travers deux types d’ocelle;........................................................................... 25 Figure 16 : Vue latérale de la tête d’une larve de Lépidoptère........................................................ 26 Figure 17 : Œil composé et un ommatidie. ...................................................................................... 26 Figure 18 : Les types d’antennes et parties d’une antenne généralisée......................................... 28 Figure 19 : Pièces buccales d’un criquet......................................................................................... 30 Figure 2 : Phylogénie des arthropodes en partant des annélides. .................................................. 8 Figure 20 : Modification des pièces buccales à partir du type broyeur. .......................................... 31 Figure 21-a : Vue latérale du thorax. ............................................................................................... 33 Figure 21-b : Vue de côté et vue de dessous des trois parties du thorax d’un criquet. .................. 34 Figure 21-c : Thorax d’un insecte ptérygote généralisé. ................................................................. 35 Figure 22 : Pattes d’insectes. .......................................................................................................... 36 Figure 23 : Nervation de l’aile d’un insecte...................................................................................... 37 Figure 24 : Section transversale de l’aile d’un insecte. ................................................................... 38 Figure 25-a : Vue latérale de l’abdomen d’un insecte femelle. ....................................................... 38 Figure 25-b : Abdomen du criquet mâle (vue latérale). ................................................................... 40 Figure 25-c : Vue latérale de l'ovopositeur d'un criquet. ................................................................. 41 Figure 26 : Section schématisée montrant sclérite et conjonctive. ................................................. 43 Figure 27 : Le tégument de l’insecte. .............................................................................................. 44 Figure 28 : Processus de la mue. .................................................................................................... 44 Figure 29 : La synthèse de la chitine............................................................................................... 46 Figure 3 : Phylogénie des arthropodes de l’embranchement à la classe...................................... 12 Figure 30 : Processus de durcissement et de pigmentation du tégument. ..................................... 49 Figure 31 : Le système digestif........................................................................................................ 50 Figure 32-a : Chambre de filtration. ................................................................................................. 50 Figure 32-b : Variations du système digestif chez les insectes....................................................... 55 Figure 33 : Schéma du système trachéen chez les insectes. ......................................................... 56 Figure 34 : Système trachéen chez les insectes. ............................................................................ 59 Figure 35 : Larve d’Eristalis avec son siphon respiratoire............................................................... 60 Figure 36 : Spiracle entouré de poils hydrofuges. ........................................................................... 60 Figure 37 : Les trachéo-branchies d’un éphéméroptère. ................................................................ 60 Figure 38 : Coléoptère sur une tige aquatique; ............................................................................... 61 Figure 39 : Diagramme de l’arrangement des poils chez Hydrophilus............................................ 61 Figure 4 : Les trois parties du corps d’un insecte. ......................................................................... 12 Figure 40 : Structure du système circulatoire. ................................................................................. 62 Figure 41 : Vue en plongée du cœur dorsal et du diaphragme dorsal. ........................................... 63 Figure 42 : Vue en coupe montrant la position du cœur et des diaphragmes. ............................... 64 Figure 43 : Les différentes composantes du système reproducteur femelle................................... 65 Figure 44 : Système reproducteur femelle chez les lépidoptères supérieurs. ................................ 66 Figure 45 : Schéma de deux types d’ovarioles chez l’insecte femelle. ........................................... 66 Figure 46 : Système reproducteur chez les insectes mâles............................................................ 67 Figure 47 : Diagramme d'un folicule montrant le développement du sperme. ................................ 67 Figure 48 : Diagramme d’un circuit nerveux.................................................................................... 69 Figure 49 : Système nerveux généralisé. ........................................................................................ 70 Figure 5 : Diagramme du nombre d’espèces vivantes du règne animal. ...................................... 13 88 Figure 51 : Diagramme montrant le cerveau et le système nerveux stomato-gastrique................. 72 Figure 52 : Diagramme de la base d’une sensille trichoïde. ........................................................... 73 Figure 53 : Diagramme d’une sensille campaniforme. .................................................................... 74 Figure 54 : Vue frontale de la capsule céphalique chez le criquet .................................................. 75 Figure 55 : Section longitudinale d’une scolopidie du tympan d’un criquet..................................... 77 Figure 56 : Diagramme de l’organe sous-génal d’une fourmi. ........................................................ 78 Figure 57 : L’organe de Johnston. ................................................................................................... 78 Figure 58 : Section transversale d’un tibia. ..................................................................................... 79 Figure 59 : Section longitudinale d’un tibia de Dectius.................................................................... 80 Figure 6 : Les muscles associés au battement des ailes. ............................................................. 16 Figure 60 : Section horizontale du métathorax et de la base de l’abdomen d’un Noctuidae. ......... 81 Figure 61 : Diagramme d’une sensille basiconique......................................................................... 83 Figure 62 : Diagramme d’une sensille coélonique........................................................................... 83 Figure 63 : Diagramme d’une sensille trichoïde de chimioréception\.............................................. 84 Figure 64 : Tête d’une chenille montrant la position des stemmates\. ............................................ 85 Figure 65 : Section à travers un ocelle dorsal d’un homoptère. ...................................................... 86 Figure 66 : Section verticale d’une partie d’un œil composé........................................................... 87 Figure 7 : Les amétaboles. ............................................................................................................ 17 Figure 8 : Les hémimétaboles. ...................................................................................................... 17 Figure 9 : Les holométaboles. ....................................................................................................... 18 89