Forêt habitée de La Doré Rapport d’inventaire des milieux humides, aquatiques et particuliers CORPORATION DE DÉVELOPPEMENT FORESTIER DE LA DORÉ (CDFLD) Novembre 2008 1 Équipe de travail Supervision des travaux Guillaume Maziade, biol. Rédaction Guillaume Maziade, biol. Aude Gauthier Martel, tech. for. et faune Candide Poirier, adj. adm. Géomatique Aude Gauthier Martel, tech. for. et faune Guillaume Maziade, biologiste Inventaire terrain Aude Gauthier Martel, tech. for. et faune Michaël Gauthier, tech. patrimoine et faune Guillaume Maziade, biol. CDFLD inc. 4731, rue des Peupliers, c.p.21 La Doré (Québec) G8J 1E7 Téléphone : 418-256-3293 Fax : (418) 256-8292 www.cdfld.qc.ca 2 TABLE DES MATIÈRES 1. INTRODUCTION .......................................................................................................... 7 2. MILIEUX HUMIDES .................................................................................................... 9 2.1 Mise en contexte ....................................................................................................... 9 2.2 Classification des milieux humides ........................................................................ 11 2.3 Plan de sondage initial ............................................................................................ 14 2.4 Méthode d’échantillonnage..................................................................................... 16 2.4.1 Identification du milieu.................................................................................... 16 2.4.2 La Faune........................................................................................................... 17 2.4.3 La flore............................................................................................................. 17 2.4.4 La physico-chimie............................................................................................ 18 2.5 Résultats et discussion ............................................................................................ 19 2.5.1 Modification du plan de sondage initial........................................................... 19 2.5.2 La Faune........................................................................................................... 24 2.5.3 La flore............................................................................................................. 25 2.5.4 Espèces fauniques et floristiques à statut particulier particulières (CREDD, 2007) ........................................................................................................ 25 2.5.5 La physico-chimie............................................................................................ 25 2.5.6 Indice de biodiversité...................................................................................... 28 2.5.7 Les types de milieux humides de la Forêt habitée de La Doré ....................... 32 2.6 Conclusion .............................................................................................................. 33 3. MILIEUX AQUATIQUES ........................................................................................... 36 3.1 Mise en contexte ..................................................................................................... 36 3.2 Les tributaires des rivières à ouananiches............................................................... 37 3.2.1 Méthode d’échantillonnage (Annexe 4)........................................................... 39 3.2.1a) Données physico-chimiques ................................................................. 39 3.2.2 Résultat et discussion....................................................................................... 41 3.3 Inventaire des lacs de faille..................................................................................... 43 3.3.1 Méthodologie (Annexe 6) ................................................................................ 45 3.3.1 a) Données physico-chimiques ................................................................. 45 3.1.2 b) Données fauniques................................................................................ 46 3.3.2 Résultat et discussion....................................................................................... 47 4. MILIEUX PARTICULIERS ........................................................................................ 48 4.1.1 Ruisseau du Cran serré......................................................................................... 49 4.1.1a) Méthodologie (Annexe 7)......................................................................... 49 4.1.1b) Résultat et discussion................................................................................ 49 3 4.1.2 Pygargue à tête blanche (Haliaeetus leucocephalus) ....................................... 50 4.1.2a) Méthodologie (Annexe 8) ...................................................................... 50 4.1.2b) Résultat et discussion............................................................................. 51 5. ANNEXES.................................................................................................................... 52 6. RÉFÉRENCES ............................................................................................................. 77 4 LISTE DES TABLEAUX Tableau 1 Résultat du plan de sondage initial .......................................................... 14 Tableau 2 Synthèse des milieux humides inventoriés en fonctions des classes du plan de sondage en date du 11 juillet ................................................. 19 Tableau 3 Les milieux humides ciblés au plan de sondage en fonction des............ regroupements des milieux humides...................................................... 21 Tableau 4 Synthèse finale des milieux humides inventoriés en fonction des classes du plan de sondage..................................................................... 22 Tableau 5 Fen et marais en relation avec le taux de réussite lors de leur classification ........................................................................................... 22 Tableau 6 Indice de biodiversité des milieux humides ............................................ 28 Tableau 7 Types de milieux humides de la Forêt habitée de La Doré..................... 32 Tableau 8 Poissons capturés dans les tributaires des rivières aux Saumons et Pémonka.................................................................................................. 42 Tableau 9 Poissons capturés dans les lacs de faille ................................................. 47 LISTE DES FIGURES Figure 1 Marécage type tourbière ........................................................................... 30 Figure 2 Marécage type minéral ............................................................................. 30 5 LISTE DES CARTES Carte 1 Situation géographique du territoire à l’étude............................................ 8 Carte 2 Classification écologique et bassins versants du territoire à l’étude .......... 13 Carte 3 Plan de sondage initial................................................................................ 15 Carte 4 Plan de sondage modifié ............................................................................ 23 Carte 5a Répartition de la cassandre caliculée et indice d’abondance selon le regroupement ............................................................................................. 26 Carte 5b Répartition du lédon du Groenland et indice d’abondance selon le regroupement ............................................................................................ 27 Carte 6 Indice de biodiversité exprimé en nombre d’espèces végétales Par milieux humides ................................................................................. 29 Carte 7 Inventaire des tributaires des rivières à Ouananiche................................. 38 Carte 8 Inventaire des lacs de faille ....................................................................... 44 6 1. INTRODUCTION La Corporation de développement forestier de La Doré (CDFLD), anciennement la Corporation d’aménagement et de développement de La Doré (CADLD), a pour mandat de réaliser un plan d’affectation ainsi qu’un plan d’aménagement dans le cadre du projet de la Forêt habitée de La Doré. Ce projet, délimité par les bassins versants de la rivière aux Saumons et de la rivière Pémonka (Carte 1), met de l’emphase sur un processus d’acquisition continue de connaissances sur le territoire. Pour pouvoir bien instaurer un système semblable, des connaissances exhaustives du territoire se devaient d’être acquises au départ du projet. C’est dans ce but que la CDFLD a procédé, en 2006 et 2007, à la première étape dans l’acquisition de connaissances en réalisant un inventaire écoforestier sur le territoire forestier productif de la forêt habitée de La Doré (CADLD, 2008). Étant donné que les différents milieux forestiers, dont les milieux boisés, les milieux humides et les milieux aquatiques, sont interreliés, il est recommandé d’acquérir en parallèle des connaissances sur tous ces écosystèmes (Joly & al. 2008). C’est donc à l’été 2008, qu’une série d’inventaires a été réalisée dans le but de mieux connaître les ressources naturelles du territoire forestier non productif de la Forêt habitée de La Doré. Il s’agit de l’inventaire des milieux humides, aquatiques et particuliers. Ces inventaires permettent d’obtenir des informations complémentaires à celles acquises au cours des dernières années et répondre à l’objectif de mieux connaître la biodiversité et les écosystèmes présents sur le territoire de la Forêt habitée de La Doré. Ces nouvelles informations sont nécessaires au processus de gestion intégrée des ressources naturelles, dont la Forêt habitée est un modèle d’application. Ce document est divisé en trois sections, c’est-à-dire : Les milieux humides, les milieux aquatiques et les milieux particuliers 7 8 2. MILIEUX HUMIDES 2.1 Mise en contexte L’inventaire des milieux humides du territoire de la Forêt habitée de La Doré est un élément fort important pour mieux comprendre la dynamique du système hydrique et écosystémique des bassins versants et ce, avec l’idée d’en faire une gestion durable et respectueuse. Dans le but d’élaborer des scénarios de conservation des milieux humides et de considérer leurs différentes fonctions, l’équipe de Joly & al. (2008) suggère de prendre la problématique dans une perspective hydrologique, donc idéalement par bassins versants. Le territoire de la Forêt habitée, avec son territoire délimité par les bassins versants de la rivière aux Saumons et Pémonka, lui donne un avantage certain dans la compréhension générale des écosystèmes de son territoire. Les milieux humides représentent 5,46% de la superficie du territoire de la Forêt habitée, soit 3999 hectares sur 73182 hectares, et sont représentés par les grands types suivants : les marécages, les tourbières fen (minérotrophe) et les tourbières bog (ombrotrophe). Avec les milieux humides, il y a 9751 hectares de terre forestière improductive. Autrement dit, cela signifie que 41 % de ces milieux dits forestiers improductifs, sont des terres humides. Les autres portions improductives sont les installations hydroélectrique, les zones agricoles, les bleuetières, certains secteurs de villégiatures, les gravières, les milieux aquatiques et les dénudés secs. Les terres humides et les milieux riverains sont les endroits les plus riches et les plus diversifiés en ce qui concerne la flore et la faune (UQCN 1993) et sont les écosystèmes les plus productifs sur terre (Environnement Canada 2002; Joly & al. 2008). Cette grande fertilité des milieux humides provient de leur instabilité indue par les changements du niveau de l’eau. Cette caractéristique des terres humides a pour effet de 9 créer un processus rapide de décomposition et un apport constant en matières nutritives provenant d’une sédimentation abondante (Lavoie 1984). Les milieux humides répondent à une panoplie de valeurs et de fonctions. Les valeurs sont associées aux besoins des humains, c’est-à-dire tout ce qui concerne les loisirs, la rétention des eaux de crue, l’amélioration de la qualité de l’eau, la protection contre l’érosion, les loisirs sans consommation comme l’observation des oiseaux ainsi que la chasse et la pêche sportive. Les fonctions des milieux humides sont les aspects fondamentaux que ces milieux représentent dans l’équilibre des écosystèmes : ils reconstruisent les réserves d’eau souterraine, entretiennent le débit de base des cours d’eau, emmagasinent des éléments nutritifs (azote, phosphore, carbone et souffre) et participent au cycle de ces éléments. Ils emmagasinent des sédiments et des contaminants, font partie de la production et de l’exportation du réseau alimentaire, participent à la productivité biologique et constituent un habitat pour les plantes, les poissons et la faune sauvage (Environnement Canada 2002). Ils sont des écosystèmes à part entière avec leur propre système intégré et où les êtres vivants vivent en interdépendance les uns avec les autres (UQCN 1993). Les propriétés multiples de ces écosystèmes sont donc des arguments de poids pour leur donner une attention particulière et mieux les connaîtres. Les informations recueillies sur les milieux humides doivent dégager un aspect de leurs fonctionnements, de la diversité de leurs composantes, de leur rareté et de leur représentativité (Joly & al. 2008). C’est donc ce que cet inventaire propose. 10 2.2 Classification des milieux humides (Annexe 1) Pour que l’inventaire des milieux humides se déroule plus rapidement sur le terrain, il est conseillé de commencer par l’analyse des données cartographiques déjà existantes sur les milieux humides avec un système d’information géographique (Joly & al. 2008). L’outil géomatique utilisée pour réaliser cette étape était le logiciel arc GIS 9,2. Les informations sur les milieux humides provenaient des cartes écoforestières du ministère des ressources naturelles et de la faune (MRNF) et tous les polygones écoforestiers représentant un milieu humide, selon la banque du système d'information écoforestière (SIEF). À l’intérieur de cette nomenclature, les codes DH sur dépôt 7E ou 7T ou dépôt minéral, AL et INO étaient considérés. Cette manière d’utiliser les données de la banque du SIEF a été inspirée de la méthode de classification des milieux humides du Québec boréal de Ménard et al. (2006). Ensuite, dans le but de faire une cartographie plus fine des milieux humides et d’identifier quel type de milieu humide représentait chacun de ces polygones écoforestiers, une analyse avec des photographies aériennes était effectuée comme le suggère Joly & al. (2008). Cette étape était importante parce que les milieux humides sont souvent représentés sous forme de complexe où plusieurs types de milieux humides se côtoyaient (Rubec & al. 1997; Joly & al. 2008) et les données cartographiques ne considèrent pas ces particularités. L’agencement de ces complexes de types de milieux humides est souvent régi par les microreliefs du terrain (Fleurbec, 1987). C’est en raison de cette complexité que, pour chaque polygone représentant un milieu humide, seule la partie dominante était considérée pour la classification dans les regroupements. Le but était de classer les polygones selon un nombre restreint de regroupements, car l’élaboration de regroupements en fonction de complexes de milieux humides aurait été fastidieuse et non efficace. Les regroupements étaient constitués du type de milieu (bog, fen, marais, marécage), du bassin versant (rivière Pémonka, rivière aux Saumons, rivière du Cran ou rivière Ashuapmushuan) et de la région écologique (5d, 11 5c, 4e) dans lequel le type de milieu humide se retrouvait. Exemple de regroupement : (FEN / S / 5d). La légende de ces codes est placée à l’annexe 2. La classification écologique et les bassins versants du territoire de la Forêt habitée sont illustrés à la carte 2. Il est à noter que la codominante était aussi identifiée lors de la photo-interprétation, mais elle n’était pas considérée lors du plan de sondage. Cette information était uniquement utilisée sur le terrain lors de l’inventaire dans le but d’aider les manipulateurs à visualiser le milieu humide. 12 13 2.3 Plan de sondage initial Au total, il y a eu 23 regroupements différents. Ces regroupements étaient constitués de quatre types de milieux humides, quatre bassins versants et trois régions écologiques. À partir des regroupements de milieux humides et avec l’aide du logiciel arc GIS 9,2, un plan de sondage a été effectué de manière à inventorier 24% des milieux humides de chaque regroupement (Carte 3; Tableau 1). Tableau 1 : Résultat du plan de sondage initial # Parcelle Type # Regroupement Parcelle Type # Regroupement Parcelle Type Regroupement # Parcelle Type Regroupement 1 BOG BOG_A_4e 32 BOG BOG_S_5c 63 FEN FEN_S_5c 94 MAE MAE_S_5c 2 BOG BOG_C_5d 33 BOG BOG_S_5c 64 FEN FEN_S_5c 95 MAE MAE_S_5c 3 BOG BOG_P_4e 34 BOG BOG_S_5c 65 FEN FEN_S_5c 96 MAE MAE_S_5c 4 BOG BOG_P_5c 35 BOG BOG_S_5c 66 FEN FEN_S_5c 97 MAE MAE_S_5c 5 BOG BOG_P_5c 36 BOG BOG_S_5c 67 FEN FEN_S_5c 98 MAE MAE_S_5c 6 BOG BOG_P_5c 37 BOG BOG_S_5c 68 FEN FEN_S_5c 99 MAE MAE_S_5c 7 BOG BOG_P_5c 38 BOG BOG_S_5c 69 FEN FEN_S_5c 100 MAE MAE_S_5c 8 BOG BOG_P_5c 39 BOG BOG_S_5c 70 FEN FEN_S_5c 101 MAE MAE_S_5c 9 BOG BOG_P_5c 40 BOG BOG_S_5c 71 FEN FEN_S_5c 102 MAE MAE_S_5c 10 BOG BOG_P_5c 41 BOG BOG_S_5c 72 FEN FEN_S_5c 103 MAE MAE_S_5c 11 BOG BOG_P_5c 42 BOG BOG_S_5c 73 FEN FEN_S_5d 104 MAE MAE_S_5c 12 BOG BOG_P_5c 43 BOG BOG_S_5c 74 FEN FEN_S_5d 105 MAE MAE_S_5c 13 BOG BOG_P_5c 44 BOG BOG_S_5c 75 FEN FEN_S_5d 106 MAE MAE_S_5c 14 BOG BOG_P_5c 45 BOG BOG_S_5c 76 MAR MAR_P_5c 107 MAE MAE_S_5c 15 BOG BOG_P_5d 46 BOG BOG_S_5d 77 MAR MAR_S_5c 108 MAE MAE_S_5c 16 BOG BOG_P_5d 47 BOG BOG_S_5d 78 MAR MAR_S_5c 109 MAE MAE_S_5c 17 BOG BOG_P_5d 48 BOG BOG_S_5d 79 MAR MAR_S_5c 110 MAE MAE_S_5c 18 BOG BOG_P_5d 49 BOG BOG_S_5d 80 MAR MAR_S_5d 111 MAE MAE_S_5c 19 BOG BOG_P_5d 50 FEN FEN_P_5c 81 MAR MAR_S_5d 112 MAE MAE_S_5c 20 BOG BOG_P_5d 51 FEN FEN_P_5c 82 MAE MAE_P_4e 113 MAE MAE_S_5c 21 BOG BOG_S_4e 52 FEN FEN_P_5c 83 MAE MAE_P_5c 114 MAE MAE_S_5c 22 BOG BOG_S_5c 53 FEN FEN_P_5c 84 MAE MAE_P_5c 115 MAE MAE_S_5c 23 BOG BOG_S_5c 54 FEN FEN_P_5d 85 MAE MAE_P_5c 116 MAE MAE_S_5c 24 BOG BOG_S_5c 55 FEN FEN_P_5d 86 MAE MAE_P_5c 117 MAE MAE_S_5c 25 BOG BOG_S_5c 56 FEN FEN_P_5d 87 MAE MAE_P_5c 118 MAE MAE_S_5d 26 BOG BOG_S_5c 57 FEN FEN_S_4e 88 MAE MAE_P_5c 119 MAE MAE_S_5d 27 BOG BOG_S_5c 58 FEN FEN_S_5c 89 MAE MAE_P_5d 120 MAE MAE_S_5d 28 BOG BOG_S_5c 59 FEN FEN_S_5c 90 MAE MAE_P_5d 121 MAE MAE_S_5d 29 BOG BOG_S_5c 60 FEN FEN_S_5c 91 MAE MAE_P_5d 122 MAE MAE_S_5d 30 BOG BOG_S_5c 61 FEN FEN_S_5c 92 MAE MAE_P_5d 123 MAE MAE_S_5d 31 BOG BOG_S_5c 62 FEN FEN_S_5c 93 MAE MAE_S_4e * les codes de classement sont à l’annexe 2 124 MAE MAE_C_5d 14 15 2.4 Méthode d’échantillonnage (Annexe 3) Comme le suggère l’équipe de Joly & al. (2008), qui a conçu un guide d’élaboration d’un plan de conservation des milieux humides applicable à l’échelle d’un bassin versant, d’une municipale ou d’une MRC, la photo-interprétation est utile pour compiler les données nécessaires à l’élaboration de genre de plan, mais il est par contre nécessaire de réaliser un inventaire terrain pour affiner l’interprétation, confirmer la typologie du milieu ainsi que l’exactitude des limites déterminées. Tout d’abord, il est important de spécifier que sur le terrain, tous les déplacements étaient représentés sous forme de « virée de cheminement » de la même manière que lors de l’inventaire écoforestier (CADLD 2006). Dans ces virées, il y avait prise en note de tous les signes de présence faunique, d’espèces floristiques rares, d’écosystèmes particuliers et de tous signes de perturbation naturels ou anthropiques. Ces données serviront à préciser la répartition de la faune sur le territoire et permettront la réalisation d’analyses plus poussées pour les cas particuliers. 2.4.1 Identification du milieu Sur le terrain, le type de milieux humides était déterminé avec la clef d’identification provenant du Système de classification des terres humides du Canada, réalisé par le Groupe de travail national sur les terres humides (GTNTH) (Rubec & al. 1997). En plus de déterminer de quel type de milieu humide est la partie dominante, soit bog, fen, marais ou marécage, les manipulateurs avaient à pousser les clefs du GTNTH spécifiant les formes et sous-formes de chaque milieu humide. Il s’agissait donc de spécifier l’écologie du milieu et du coup, de mieux voir la diversité des écosystèmes présents sur le territoire. 16 2.4.2 La Faune Pour encore mieux connaître les particularités de ces milieux humides, il y avait cueillette d’informations sur la faune et la flore par la réalisation de parcelles d’échantillonnages. Ces manipulations ont été réalisées de la même manière que pour l’inventaire écoforestier (CADLD, 2006) et ce, dans le but d’uniformiser la récolte des données sur le territoire de la Forêt habitée de La Doré. Pour la faune, tous les signes (brout, trace, fèce, site d’alimentation, etc.) étaient prélevés dans un rayon de 5,64 mètres autour du point central de la première des cinq microsplacettes et devaient, si possible, être identifiés à l’espèce. De plus, toutes les roches et les souches étaient déplacées à l’intérieur de cette parcelle dans le but de trouver des amphibiens. Le but de ces exercices était d’établir un indice d’abondance de faune sur le territoire à l’étude. Si des signes de présence faunique ne pouvaient être identifiés sur le terrain, il était nécessaire de les rapporter ou les photographier et de prendre des notes explicatives (longueur, largeur, composition, etc.) pour une identification en laboratoire. 2.4.3 La flore L’échantillonnage de la flore des milieux humides se faisait par grappe de 5 microsplacettes par parcelle. Ces micros-placettes avaient chacune 1,13 mètre de rayon et leur centre était situé à 5 mètres l’un de l’autre, en direction nord. Toutes les espèces de toutes les strates (arborescente, arbustive, herbacée et muscinale) étaient identifiées, ainsi que le pourcentage de recouvrement de chacune des quatre strates. Étant donné qu’il est recommandé d’effectuer les inventaires des milieux humides dans la période de floraison ou de feuillaison où il est le plus propice de trouver un maximum d’espèces végétales en même temps (Joly & al. 2008), la prise de données s’est effectuée entre le 30 juin et le 6 août. Cette période couvre la floraison d’une grande partie d’espèces végétales dont plusieurs espèces d’orchidées, souvent considérée comme des espèces plus rares (Marie-Victorin 1995). 17 2.4.4 La physico-chimie Les données physico-chimiques des milieux humides ont quant à elles été recueillies selon le protocole de l’inventaire écologique du bloc de terres publiques intramunicipales Saint-Félicien-La Doré et des lots appartenant au Centre de la conservation de la biodiversité boréale (CADLD 2008b). Il s’agissait essentiellement de prendre un échantillon de tourbe lorsque le milieu humide échantillonné était une tourbière, et ce, dans le but d’en connaître le pH et donc de confirmer le type de tourbière (Bog ou fen). 18 2.5 Résultats et discussion 2.5.1 Modification du plan de sondage initial Dans le tableau 2, il y a représentation du cumulatif des inventaires des milieux humides en date du 11 juillet. À cette date, les bops et les marécages avaient toutes les deux un pourcentage de 79% de corrélation entre la photo-interprétation et la vérification terrain. Par contre, les fen et les marais avaient respectivement 25% et 50% de corrélation. Tableau 2 : Synthèse des milieux humides inventoriés en fonction des classes du plan de sondage en date du 11 juillet Milieu dans le plan de Nombre total Milieu après classement sondage de milieux BOG FEN MARAIS MARÉCAGE visités BOG FEN MARAIS MARÉCAGE 14 8 2 19 11 (79%) 2 (25 %) 2 (11%) 1 (5 %) 3 (37,5 %) 1 (50 %) 1 (5 %) 3 (21 %) 3 (37,5 %) 1 (50 %) 15 (79 %) La raison principale expliquant une si grande différence entre les résultats lors de la photo-interprétation et ceux terrains, origine dans la méthode utilisée lors de la photointerprétation pour déterminer le type de milieu. Selon la clef du GTNTH (Rubec & al. 1997), une des différences fondamentales entre un marais et un fen est le substrat sur lequel il repose. Un fen est sur un substrat organique (40 cm de tourbe minimum) et un marais repose sur un substrat minéral. Par photo-interprétation, il était très difficile de faire la différence entre un fen et un marais par la texture des végétaux et encore plus difficile d’en déterminer le substrat. Les informations de la banque du SIEF sont donc devenues les outils pour faire la différence entre les deux types de milieux. Dans cette banque, les codes 7E et 7T signifient un substrat organique. Pour corriger le tir, et surtout pour répondre à l’objectif de connaître quels étaient les milieux humides à protéger sur le territoire, l’effort des dernières semaines d’échantillonnage a été dirigé sur les fen et les marais. Ces milieux étant plus rares sur le territoire, il devenait important de mieux connaître leurs particularités et de vérifier leur 19 typologie qui, jusqu'à ce moment, correspondait rarement avec celle obtenue lors de la photo-interprétation. Pour cette raison, à partir de la semaine du 14 juillet, le plan de sondage a été modifié. À ce moment, 53 milieux humides, surtout des bogs et des marécages, avaient été éliminés du plan de sondage. Les parcelles numéro 63 et 64 ont été éliminées, car elles étaient très difficiles d’accès. La parcelle numéro 58 a été éliminée parce qu’elle était trop inondée. La parcelle numéro 122 a été éliminée des résultats finaux, car le milieu s’est avéré un dénudé sec. Des 49 autres parcelles éliminées, 16 ont été éliminées en raison de la difficulté de les atteindre et 33 milieux humides photo-interprétés comme des bogs ou des marécages ont été échangés pour des marais et des fens. Même après cette première modification au plan de sondage, trois autres milieux ont été échangés lors des journées suivantes parce que ces milieux humides étaient difficiles d’accès. Finalement, il y a eu 33 nouvelles parcelles de plus que celles qui étaient prévues au plan de sondage initial. Au total, 104 milieux humides ont été inventoriés (Tableau 3). Ce qui donne un total de 21,8% de tous les milieux humides du territoire de la Forêt habitée de La Doré. Le tableau 4 montre la synthèse finale des résultats obtenus sur le terrain en fonction de la correspondance avec les résultats de l’identification par photointerprétation. 20 Tableau 3 : Les milieux humides ciblés au plan de sondage en fonction des regroupements de milieux humides REGROUP BOG_A_4e BOG_C_5d BOG_P_4e BOG_P_5c BOG_P_5d BOG_S_4e BOG_S_5c BOG_S_5d FEN_P_5c FEN_P_5d FEN_S_4e 21 Nb de milieux humides total sur Forêt habitée 5 1 2 46 23 2 99 18 17 11 1 % échantillonnage initial pour le plan de sondage 24% 100% 50% 24% 24% 50% 24% 24% 24% 24% 100% Nb de milieux prévus (plan de sondage initial) 1 1 1 11 6 1 24 4 4 3 1 Numéro de parcelle pour plan de sondage initial 1 2 3 4 à 14 15 à 20 21 # de parcelle # de parcelle réalisée du plan enlevée du de sondage plan de initial sondage initial 0 1 0 2 0 3 6-10-12-13-14 4-5-7-8-9-11 16-17-19-20 15-18 0 21 22-23-24-2526-27-28-2930-33-37-3839-40-41-4243-44 ─ ─ ─ ─ 22 à 45 46 à 49 50 à 53 54 à 56 57 31-32-34-35-3645 46 à 49 50 à 53 54 à 56 57 58-63-64 ─ ─ ─ ─ 82 84-85 89-90 ─ FEN_S_5c FEN_S_5d MAR_P_5c 64 12 3 24% 24% 33% 15 3 1 58 à 72 73 à 75 76 59-60-61-62-6566-67-68-69-7071-72 73 à 75 76 MAR_S_5c MAR_S_5d MAE_P_4e MAE_P_5c MAE_P_5d MAE_S_4e 12 8 1 27 15 3 24% 24% 100% 24% 24% 33% 3 2 1 6 4 1 77 à 79 80 et 81 82 83 à 88 89 à 92 93 77 à 79 80 et 81 0 83-86-87-88 91-92 93 MAE_S_5c 102 24% 24 94 à 117 95-97-98-101102-105-106107-109-110112-113-114-117 MAE_S_5d MAE_C_5d TOTAL 26 1 499 24% 100% 24,8% 6 1 124 118 à 123 124 124 120-121 0 71 94-96-99-100103-104-108111-115-116 118-119-122123 124 -53 # de parcelle ajoutée au plan de sondage ─ ─ ─ ─ ─ ─ ─ ─ 134-136-137-146 127-128-138-139 ─ Milieux inventoriés % échantillonnage final 0 0% 0 0% 0 0% 5 11% 4 17% 0 0% 6 4 8 7 1 6% 22% 47% 64% 100% 24 6 1 38% 50% 33% 9 6 0 4 2 1 75% 75% 0% 15% 13% 33% ─ 14 14% ─ ─ 33 2 0 104 8% 0% 21,8% 125-129-132-133-140141-142-143-144-145147-158 130-160-161 ─ 148-150-151-152-156162 153-154-155-159 ─ ─ ─ ─ Tableau 4 : Synthèse finale des milieux humides inventoriés en fonction des classes du plan de sondage Milieu dans le plan de sondage Total de milieux visités Milieu après classement BOG 19 16 (84 %) FEN 46 8 (17 %) 21 (46 %) 6 (13 %) 11 (24 %) MARAIS 16 1 (6 %) 6 (37,5 %) 6 (37,5 %) 3 (19 %) MARÉCAGE 23 3 (13 %) 2 (9 %) BOG FEN MARAIS MARÉCAGE 3 (16 %) 18 (78 %) Après remaniement du plan de sondage, la précision sur les quatre types de milieux humides a été améliorée ou très peu diminuée. Les fens et les marais ont augmenté le taux de réussite à la photo-interprétation à respectivement 46% et 37,5%. Ce taux de réussite reste tout de même trop bas pour pouvoir extrapoler les résultats au reste des milieux sur la forêt habitée. Étant donné que ces deux types de milieux se faisaient différencier lors de la photo-interprétation que par le substrat sur lequel ils reposent et qu’ils ont tous les deux un rôle écologique important (voir section 2.5.6), leur résultat a été jumelé. Ce qui donne un taux de réussite lors de la classification de 63% (Tableau 5). Ce qui plus acceptable. Par contre, les bogs et les marécages ont été photo-interprétés à respectivement 84% et 78%, ce qui est acceptable. La carte 4 montre le plan de sondage final après les quelques modifications. Tableau 5 : Fen et marais en relation avec le taux de réussite lors de leur classification Fen Marais Ensemble (Fen et marais) Total de milieux visités 46 Total de milieux concordants 21 45,7% Total de milieux visités 16 Total de milieux concordants 6 37,5% Total de milieux visités 62 Total de milieux concordants 38 63% 22 23 2.5.2 La Faune Pour ce qui est de la présence d’espèce faunique à l’intérieur des milieux humides, peu d’observations ont été signalées. Il est à spécifier que les traces sont souvent difficiles à apercevoir dans les milieux humides. Les espèces fauniques identifiées étaient principalement chez les mammifères le castor (14 fois) et l’orignal (5 fois), chez les amphibiens la grenouille verte (11 fois), chez les oiseaux, l’hirondelle de rivage (4 fois) et le huard, le butor d’Amérique et la buse à queue rousse (1 fois chacun). De ces données obtenues, il n’est pas vraiment possible de pouvoir sélectionner des milieux humides pouvant nécessiter une mesure de protection particulière. Des stations d’écoutes pourraient être effectuées pour mieux connaître les différentes espèces présentes, comme dans les milieux à fort potentiel pour la sauvagine identifiés par Rempal & al. (1997). De plus, des sites de captures pourraient être installés pour savoir quelles sont les différentes espèces de micromammifères et amphibiens sur le territoire. Des 104 milieux humides visités, 38 (37% des milieux) ont été créés ou bien ont été influencés par les castors, ce qui vient appuyer la littérature expliquant que ces milieux sont fortement influencés par cette espèce (Environnement Canada, 2002). Il est donc essentiel, lors de la gestion des milieux humides, de considérer l’importance que ces animaux et leurs installations ont sur les écosystèmes de la forêt. Dans cet inventaire, aucune donnée n’a été prise quant aux invertébrés sur le territoire. Par contre, il semble essentiel de comprendre cette classe d’animaux représentant en fait, le groupe le plus important en terme de diversité dans les milieux humides riverains et jouant un rôle critique dans la chaîne alimentaire. Ces derniers sont aussi souvent analysés pour déterminer la santé des milieux humides (Environnement Canada. 2002). 24 2.5.3 La flore Les espèces floristiques avec un intérêt économique ont été comptabilisées et illustrées dans une carte d’indice d’abondance de la manière qu’effectué lors du rapport d’inventaire écoforestier (CADLD, 2008a). Les deux espèces à avoir été mises en valeur de cette façon sont la Cassandre (Carte 5a) et le Lédon du Groenland (Carte 5b). Il s’agit ici que d’exemples de la possibilité d’application des indices d'abondance, mais il est possible d’effectuer cet exercice pour n’importe quelle espèce faunique ou floristique inventoriée lors de l’inventaire. 2.5.4 Espèces fauniques et floristiques à statut particulier particulières (CREDD, 2007) Lors de l’inventaire, aucune espèce à statut n’a été répertoriée. Il est surprenant qu’aucune de ses espèces n’ait été retrouvée étant donné la richesse de ses milieux, mais cela ne veut pas dire que le territoire en soit exempt (Joly & al. 2008). Selon l’Union québécoise de la conservation de la nature (UQCN, 1993) on estime que 50% des plantes susceptibles d’être désignées menacées ou vulnérables se concentrent à l’intérieur des milieux humides. Il est par contre à considérer qu’aucun de ces milieux n’a été exhaustivement analysé, car ce n’était pas le but de cet inventaire. Le protocole comprenait 5 micro-placettes de données végétales comme dans l’inventaire écoforestier (CADLD 2006). Par contre, une attention particulière était portée lors de l’entrée et de la sortie du milieu humide. 2.5.5 La physico-chimie L’analyse des échantillons de tourbière ne n’a pas été effectuée à ce jour. Il est à spécifier que cette étape était effectuée dans le but de connaître le pH des tourbières et de confirmer le type de ces derniers qui avait été préalablement déterminé sur le terrain. Des analyses ultérieures complétant les informations déjà acquises pourront être effectuées. 25 26 27 2.5.6 Indice de biodiversité L’indice de biodiversité est le nombre moyen d’espèces végétales retrouvées dans un type de milieu humide. Cet indice donne une idée sur la richesse de ces écosystèmes et leur capacité à accueillir différentes espèces vivantes. Même s’il n’y a pas eu d’espèces particulières retrouvées dans les milieux humides, une diversité biologique intéressante a tout de moins été observée (Tableau 6; Carte 6). Certaines classes de milieux humides montrent une biodiversité plus importante. Les marécages étaient les milieux possédant la diversité floristique la plus élevée. Tableau 6 : Indice de biodiversité des milieux humides Type de milieu Marécage Marécage (minéral) Marécage (tourbe) Bog Fen Marais Indice de biodiversité 17 19 15 13 11 11 Nb de milieux 35 18 17 27 25 9 28 29 L’analyse de l’indice de biodiversité fait ressortir deux types marécages. Effectivement, selon la clef du GTNTH (Rubec & al. 1997), lorsqu’une tourbière est dominée par des arbres, des plantes arbustives et latifoliées, il s’agit d’un marécage (type tourbière) (Figure 1). L’autre type de marécage est souvent associé aux zones inondables des cours d’eau, repose sur un substrat minéral et est souvent caractérisé par des d’arbustes (type minéral) (Figure 2). Dans le tableau #4, il est possible de voir que les marécages, dit minéral, ont en moyenne un indice de biodiversité plus élevé, c’est-à-dire une moyenne de 19 espèces au lieu de 15 pour celles sur substrat de tourbe. Figure 1 : Marécage type tourbière Figure 2: Marécage type minéral 30 Par conséquent, ces deux types de marécage devraient être considérés différemment. Les marécages sur substrat minéral devraient bénéficier d’une attention particulière. Par contre, pour ce qui est de la biodiversité des fens, rien des résultats obtenus lors des sorties terrain montre une très grande diversité (indice de biodiversité de 11) (Tableau 4). Pourtant, selon la littérature, ces milieux sont propices à l’installation de plusieurs espèces végétales étant donné la circulation d’eau riche en minéraux dissous (Fleurbec, 1987). Pour cette raison, ces milieux doivent tout de même être considérés comme des endroits où il y a un bon potentiel de retrouver une grande biodiversité et des espèces floristiques particulières. Il y a donc suggestion de porter une attention particulière à ces milieux. Le résultat fut le même pour les marais (Tableau 4). Les marais sont par contre réputés pour avoir une diversité faunique considérable (Lavoie 1984). Un grand nombre d’oiseaux utilisent les marais riverains pour la nidification (Environnement Canada 2002). C’est pourquoi une attention particulière doit aussi être apportée aux marais étant donné leur importante fonction écologique. Finalement, la diversité floristique a été plus élevée les tourbières de type bogs (ombrotrophe) que dans les fens et les marais. L’indice de biodiversité était en moyenne de 13 espèces pour ces milieux (Tableau 4). Pourtant, selon la littérature (UQCN 1993) ces tourbières auraient peu de biodiversité (UQCN 1993) due entre autres au pH très acide qui les caractérise (Fleurbec, 1987). Ceci démontre que les milieux humides, en général, sont des milieux riches et peuvent abriter une biodiversité importante. 31 2.5.7 Les types de milieux humides de la Forêt habitée de La Doré Les résultats d’inventaires obtenus sur les différents milieux humides, en fonction la clef du Groupe de travail national sur les milieux humides (Rubec & al. 1997), démontrent qu’il y a 26 types de milieux humides répartis entre les quatre grands groupes de bases (fen, marais, marécage, bog). (Tableau 7) Tableau 7: Types de milieux humides de la Forêt habitée de La Doré Types de milieux humides Bog de bassin Bog de rivage Bog flottant Bog plat riparien Bog en couverture Bog plat Fen de chenal Fen de rivage Fen de ruisseau Fen flottant Fen lacustrien Marais lacustrien de rivage Marais riparien de plaine d'inondation Marais riparien de ruisseau Marais riverain Quantité 4 14 4 1 3 2 1 2 20 5 1 2 3 6 1 Types de milieux humides Marécage de bassin Marécage de plaine d'inondation Marécage de rivage Marécage riparien de ruisseau Marécage riverain Marécage lacustrien Marécage de dépression Marécage de lagg Marécage de tourbière surélevé Marécage incliné sans marge Marécage plat sans marge Quantité 1 1 1 1 18 6 1 2 1 1 2 *Les cases en bleu représentent les milieux humides riverains Au total, il y a 6 différents types bogs, 5 fens, 4 marais et 11 marécages. Des 26 types de milieux, seuls 7 sont non-riverains ce qui montre clairement le lien étroit entre les milieux aquatiques et riverains. La connaissance plus précise des différents types de milieux humides de la Forêt habitée de La Doré, a pour but de s’assurer de conserver leur biodiversité et de la diversité de leurs écosystèmes. 32 2.6 Conclusion L’objectif d’accumuler des informations sur les milieux humides du territoire de la forêt habitée de manière à pouvoir avoir une idée sommaire de leur diversité a été réalisé. Au total, 21,8% des polygones écoforestiers représentant un milieu humide dans la banque du SIEF, ont été inventoriés. Les résultats de la photo-interprétation sont très intéressants, mais ne sont par contre pas suffisant pour pouvoir généraliser ces résultats sur l’ensemble des milieux humides du territoire sans qu’il y a ait un système de vérification terrain. Il est donc primordial d’avoir un protocole efficace et rapide d’inventaire avant aménagement forestier. Dans le futur, pour rendre plus efficace la photo-interprétation, il serait intéressant de pouvoir trouver une méthode pour différencier les fens des marais, autrement que par le type de substrat. La spécialisation d’un photo-interprète sur cette problématique pourrait être une piste de solution. Lors de l’inventaire terrain, des difficultés sont survenues quant à l’identification des milieux humides. La démarcation était rarement claire entre les différents types de milieux humides se chevauchant dans un même polygone écoforestier. En fait, comme rapporté par GTNTH (Rubec & al. 1997) et Fleurbec (1987), les milieux sont souvent représentés sous forme de complexe, c’est-à-dire l’entremêlement de plusieurs milieux humides. Lors de cet inventaire, les équipes de deux manipulateurs donnaient la chance de pouvoir avoir une vision plus juste du milieu à évaluer. Dans le futur, il serait intéressant de pouvoir examiner plus exhaustivement certains milieux humides quant à leur composition réelle en type de milieux humides. Parce qu’en fait, les complexes sont généralement considérés comme plus intéressants sur le plan écologique (Joly & al. 2008), Il est aussi important de souligner que dans les éléments cartographiés, aucun milieu moins grand que 1 hectare n’est identifié (Joly & al. 2008). Même si les milieux humides 33 de grandes superficies peuvent être considérés avoir une plus grande valeur écologique (Joly & al. 2008), les plus petits milieux font aussi partis de la mosaïque complexe des écosystèmes et ne sont donc pas des éléments à négliger. Par conséquent, il serait intéressant de faire une cartographie plus fine du territoire permettant d’aller chercher certains détails importants de l’équilibre de ces écosystèmes. Dans cet inventaire, seuls les milieux humides cartographiés avaient été considérés. Il est aussi à souligner que l’inventaire forestier du quatrième décennal sera plus performant et plus précis permettant de distinguer les marais, les marécages, les tourbières ombrotrophes et tourbières minérotrophes (Joly & al. 2008). Aucune espèce menacée ou d’intérêt régional selon la liste du CREDD (2007) n’a été identifiée. Il est possible d’expliquer ce résultat par le fait que les milieux humides n’ont pas été analysés de manière exhaustive. Même si les manipulateurs avaient pour indication de bien regarder la végétation à l’entrée et à la sortie du milieu humide visé, il y a plusieurs plantes qui ont fort probablement échappé à leurs yeux. L’étape d’avoir une vue d’ensemble des milieux humides de la Forêt habitée était essentielle. Par contre, dans une étape subséquente, il serait important d’approfondir les connaissances en ciblant certains milieux démontrant de grands intérêts écologiques. Pour ce qui est des connaissances sur la faune des milieux humides, peu d’informations ont été acquises lors de cet inventaire. Des stations d’écoutes pour la faune avienne et des stations de captures pour les micromammifères et les amphibiens seraient intéressantes pour mieux en comprendre la dynamique écosystémique et mieux les protéger. De plus, il serait intéressant de rallier les caractéristiques bio-physiques des milieux humides avec les besoins de certaines espèces animales trouvant en ces lieux des éléments essentiels pour compléter leur cycle vital. Comme le suggèrent certaines études, le but serait donc de donner à ces milieux une importance qui serait relative à la présence de la faune (Rempal & al. 1997; Houde, 2006; Breton & al. 2005; Joly & al. 2008). Étant donné le lien étroit qui a été montré entre les milieux aquatiques et riverains, il devient important de pousser l’idée de l’inter-connectivité de ces milieux. Le 34 positionnement dans le réseau hydrographique (bassin versant) devient donc essentiel à la compréhension de la dynamique naturelle et à l’élaboration d’objectifs de conservation et d’exploitation. Les milieux humides répondent à une panoplie de besoins et de valeurs à l’échelle du territoire et une analyse plus poussée doit être réalisée pour ce qui est de la conservation, des valeurs économiques, esthétiques et récréatives. Pour ce qui est des milieux nécessitant une attention particulière, il faudrait favoriser les milieux faiblement représentés sur le territoire et rares. 35 3. MILIEUX AQUATIQUES 3.1 Mise en contexte L’inventaire des milieux aquatiques avait pour but de déterminer si certains lacs ou cours d’eau du territoire de la Forêt habitée pouvaient nécessiter une protection particulière. Les cibles d’inventaires ont été choisies en fonction des connaissances acquises lors des inventaires terrains des trois dernières années et par les connaissances des gens du secteur. Deux objectifs avaient été ciblés : Vérifier s’il y a présence de ouananiches dans les tributaires des rivières aux Saumons et Pémonka Vérifier les autres lacs le long de la même faille que le lac à Côté Sud pour savoir s’il y a, à ces endroits, de l’Omble chevalier (espèce susceptible d’être menacée ou vulnérable). Ces objectifs représentent des analyses très fines des milieux aquatiques du territoire de la Forêt habitée de La Doré. L’objectif était tout simplement d’obtenir, par mesure préventive, des informations permettant de protéger des milieux potentiellement fragiles. Un inventaire, plus général (filtre brut), devrait être réalisé de manière à acquérir de l’information générale sur l’ensemble des milieux aquatiques du territoire. 36 3.2 Les tributaires des rivières à ouananiches Peu d’inventaires ont été réalisés dans les tributaires des rivières Pémonka et aux Saumons. Pourtant dans les années 80, il y a eu capture de ouananiches dans la rivière Doré. Cette rivière est un tributaire important de la rivière aux Saumons. Pour vérifier si d’autres tributaires étaient hôtes de cette espèce, un inventaire systématique de tous les tributaires de ces deux rivières a été réalisé. Le but était d’échantillonner tous les tributaires compris entre les limites infranchissables pour les ouananiches et la rivière Ashuapmushuan où ils se déversent. Par contre, le projet de la Forêt habitée de La Doré ne comprend pas les secteurs privés, donc les tributaires compris dans ces tenures n’ont pas été échantillonnés (Carte 7). 37 38 3.2.1 Méthode d’échantillonnage (Annexe 4) Comme pour les milieux humides, lors des déplacements sur le terrain, il y avait prise en note de tous les signes de présence faunique, des signes de perturbations, ainsi qu’une identification de toutes les espèces floristiques spéciales et de tous les écosystèmes particuliers rencontrés. Un point GPS était pris, ainsi que des photographies ou des notes pertinentes, si nécessaire. Toutes ces données supplémentaires servaient à mieux définir l’ensemble des caractéristiques écosystémiques, floristiques et fauniques du territoire à l’étude. 3.2.1a) Données physico-chimiques Tous les tests physico-chimiques sont réalisés en triplicata et s’effectuent à 50 mètres de l’embouchure du tributaire. Le sens de l’écoulement de l’eau, ainsi que la vitesse de l’écoulement sont d’abord pris en note. La vitesse du courant est prise à l’aide d’une orange et d’un chronomètre. L’orange doit parcourir une distance connue dans un temps minimum de 20 secondes (Murphy & Willis, 1996). Pour obtenir une vitesse représentative du milieu, le test est effectué dans un courant dit « moyen », c’est-à-dire entre le centre du cours d’eau et le bord du cours d’eau. Le pH, la conductivité, l’oxygène dissous, la température et la transparence sont, quant à eux, pris au centre du tributaire. La transparence de l’eau est évaluée à l’aide d’un disque de Secchi. Le manipulateur devait se placer dos au soleil et utiliser un tuyau de PVC muni d’un plat de Pétri à l’extrémité pour éliminer la réfraction et donc diminuer le risque d’erreur (Dumont, 1981 cité dans MRNF, 1994). La couleur de l’eau était obtenue avec un outil mesurant l’unité de couleur (APHA) après que la turbidité de l’échantillon soit enlevée (MRNF, 1994). 39 Le pH et la conductivité étaient tous les deux pris au même moment. À l’aide d’une bouteille d’échantillon intégré sur toute la colonne d’eau (MRNF, 1994) pour les cours d’eau de 3 mètres et plus. Par la suite, l’échantillon devait être transvidé dans un contenant de plastique inerte style « Nalgen » pour pouvoir ensuite prendre les mesures de pH et de conductivité avec les appareils appropriés. Pour les plans d’eau de moins de 3 mètres, les électrodes du pH et du conductivimètre étaient directement mises sous la surface de l’eau. Les détails des procédures sont inscrits dans le guide de normalisation de méthodes utilisées en faune aquatique du Ministère de l’Environnement et de la Faune (1994). La mesure de l’oxygène dissous est prise en milligramme par litre (mg/L). Cette mesure devait être prise sur toute la colonne d’eau. Elle devait être prise à 0,5 mètre puis, de 1 à 14 mètres, à tous les mètres, de 16 à 20 mètres, à tous les deux mètres et à plus de 20 mètres, à tous les 4 mètres, et ce, jusqu’au fond (MRNF, 1994). Au même moment, la température était affichée sur l’écran de l’appareil et était être noté. Pour les cours d’eau de moins de 1 mètre, les électrodes de l’oxymètre étaient directement placées sous la surface de l’eau. Données fauniques Les pièges installés dans les tributaires étaient les trappes à ménés. La première était installée à 50 mètres de l’embouchure et les quatre autres trappes étaient installées à 50 mètres les unes des autres. Ces pièges étaient installés de manière à rester sur place de 18 à 24 heures et englober la période de 18:00 à 09:00 de manière à avoir un effort d’une journée qui était comparable entre tous les tributaires. 40 3.2.2 Résultat et discussion Deux des tributaires n’ont pu être échantillonnées car ils n’étaient pas assez profonds. Au total, 12 espèces de poissons ont été capturées lors de cet inventaire mais il n’y a eu aucun spécimen de ouananiche (Tableau 6). Malgré ce fait, il est tout de même difficile de pouvoir certifier que ces tributaires ne sont pas hôtes de ouananiche. Il doit tout de même y avoir une attention particulière portée à ces milieux, car ils sont en contacts directs avec des rivières importantes à ouananiche. Il est primordial d’éviter des problématiques tant au niveau de l’ensablement des frayères ainsi que le réchauffement de ces eaux. 41 Tableau 8. Poissons capturés dans les tributaires des rivières aux Saumons et Pémonka # parcelle Bourrole IDENT r1 10-JUN-08 r2 10-JUN-08 r3 10-JUN-08 r4 10-JUN-08 r5 10-JUN-08 r6 10-JUN-08 r7 10-JUN-08 r8 10-JUN-08 r9 10-JUN-08 r10 10-JUN-08 r11 10-JUN-08 r12 10-JUN-08 r13 10-JUN-08 r14 10-JUN-08 CUIN RHAT CACA RHC SAFO Remarques 1 1 r15 10-JUN-08 r16 10-JUN-08 Pas assez profond pour poser bourroles r17 10-JUN-08 Pas assez profond pour poser bourroles r18 10-JUN-08 Pas assez profond pour poser bourroles r19 10-JUN-08 Pas assez profond pour poser bourroles r20 10-JUN-08 r21 11-JUN-08 2 r22 11-JUN-08 2 r23 11-JUN-08 1 r24 11-JUN-08 3 r25 11-JUN-08 2 r26 11-JUN-08 r27 11-JUN-08 48 r28 11-JUN-08 10 3 r29 11-JUN-08 2 3 r30 11-JUN-08 1 r31 12-JUN-08 r32 12-JUN-08 r33 12-JUN-08 r34 12-JUN-08 r35 12-JUN-08 r36 12-JUN-08 Pas assez profond pour poser bourroles r37 12-JUN-08 Pas assez profond pour poser bourroles r38 12-JUN-08 Pas assez profond pour poser bourroles r39 12-JUN-08 Pas assez profond pour poser bourroles r40 12-JUN-08 Pas assez profond pour poser bourroles Pas assez profond pour poser bourroles 1 1 *Les codes des espèces ichtyologiques sont en annexe (Annexe 5) 42 3.3 Inventaire des lacs de faille En 1995, des spécimens d’Omble chevalier (Salvelinus Alpinus var. oquassa) ont été capturés dans le lac à Côté Sud se situant dans la faille géologique entre le contrefort laurentien et la plaine de la mer de Laflamme. Étant donné, le statut de cette espèce « Susceptible d’être désignée vulnérable ou menacée », un inventaire des lacs situés le long de la même faille est réalisé de manière à vérifier si d’autres lacs ont les mêmes particularités (Carte 8). 43 44 3.3.1 Méthodologie (Annexe 6) 3.3.1 a) Données physico-chimiques Le profil bathymétrique et la largeur sont des données très importantes, car elles sont corrélées avec des changements dans la distribution et l’abondance des communautés de poissons (Vannote & al. 1980; Bozek & Hubert 1992 cité dans Murphy & Willis, 1996). Le profil bathymétrique détermine aussi la profondeur des cours d’eau, ce qui est un élément très important pour l’habitat des poissons (Murphy & Willis, 1996). L’appareil utilisé pour prendre le profil bathymétrique des plans d’eau est un sonar (Murphy & Willis, 1996). La trajectoire à prendre dans ces plans d’eau, pour le profil bathymétrique, diffère par rapport à la morphologie du plan d’eau, selon le Guide de normalisation de méthodes utilisées en faune aquatique au Ministère de l’Environnement et de la Faune (1994). Le profil bathymétrique permet de trouver le point le plus profond. C’est à cet endroit que les données physico-chimiques sont prélevées (MRNF, 1994). Pour diminuer les risques d’erreurs, tous les tests physico-chimiques, c’est-à-dire la couleur, la transparence, l’oxygène dissous, le pH, la conductivité et la température, sont pris en triplicata et une moyenne est ensuite calculée. Donc, au point le plus profond du plan d’eau, la couleur, la transparence, le taux d’oxygène dissous, le pH et la conductivité doivent être pris de la même manière que pour l’inventaire des tributaires des rivières à ouananiche. 45 3.1.2 b) Données fauniques Pour pouvoir capturer l’Omble chevalier, il faut mettre des pressions de pêche aux endroits où les caractéristiques limnologiques permettent la survie de cette espèce. De plus, l’utilisation de filets maillants expérimentaux dans d’autres milieux que ceux propices aux populations de Salvelinus alpinus var. Oquassa risquerait de causer de la mortalité chez d’autres groupes d’espèces de poissons (Marc Valentine, MRNF, Communication personnelle). Les paramètres suivants sont recherchés : Être dans la partie supérieure de l’hypolimnion Température de 12°C ou moins Concentration d’oxygène dissous d’au moins 5 ppm Ne pas dépasser 20 mètres de profondeur Lorsque ces paramètres sont obtenus, il s’agissait d’installer les filets maillants expérimentaux dans la zone recherchée. Un des deux filets maillants est muni de mailles de ½, ¾, 1 et 1 ½ pouces et est d’une longueur de 48 pieds et l’autre a des mailles de 2, 2 ½ et 3 pouces et a une longueur de 36 pieds. Ces deux filets étaient installés bout à bout de manière à avoir une grosseur de maille croissante. La pêche devait durer de 18 à 24 heures et devrait englober la période entre 18:00 et 9:00 heure. De cette manière, il y avait une pression de pêche se comptant avec l’unité comparative nuit/filet (MRNF, 1994). Tous les lacs visés par cet inventaire devaient aussi être échantillonnés avec un verveux, des trappes à ménés et une seine de rivage. Ces outils de pêche, contrairement aux filets maillant expérimentaux, ont la caractéristique de ne pas créer la mort des spécimens aquatiques. Le but était d’avoir de l’information complémentaire sur la faune ichtyologique de ces milieux 46 De manière plus détaillée, un verveux est installé de manière à bloquer l’accès au tributaire avec l’ouverture dirigée vers le lac. À partir du tributaire, il faut installer 10 trappes à ménés à environ deux mètres de la rive et à une distance de 10 mètres entre chacune d’elles. Finalement, un coup de seine doit être effectué à partir du tributaire. Cette seine est composée de mailles de ½ pouces est d’une longueur de 20 pieds. S’il n’est pas possible de passer la seine sur le rivage (en raison de la présence de nombreux débris ou de milieux riverains trop profonds), les manipulateurs se déplacent, et ce, jusqu’au moment où il est possible d’effectuer les manœuvres. Il est à noter que s’il n’y a pas de tributaires, toutes ces manipulations sont reportées à l’émissaire du plan d’eau. 3.3.2 Résultat et discussion En réalité, aucun des lacs visités ne présentaient les caractéristiques permettant l’installation des filets expérimentaux pour la capture d’Omble chevalier. Malgré cela, les verveux et trappes à ménés ont été installés et ont permis de capturer 7 espèces de poissons et une espèce d’amphibien (Tableau 9). Tableau 9. Poissons capturés dans les lacs de faille # de parcelle Nom du lac Date Espèces capturées CACO_BO CACO_VE SECO_BO SECO_VE MAMA_BO NOVI_BO MAMA_VE SAFO_VE 1 2 3 4 Lac sans nom 11-août-08 lac Vert 19-août-08 1 1 lac Boudreault 20-août-08 74 4 lac Marcelin 13 1 107 1 71 26-août-08 50 * Les codes des espèces ichtyologiques sont mis en annexe (Annexe 5) 47 1 4. MILIEUX PARTICULIERS Lors de tous les déplacements effectués sur le terrain depuis les trois dernières années, toutes les particularités rencontrées étaient notées comme, par exemple, les espèces fauniques ou floristiques et les écosystèmes particuliers. Une photographie représentative du milieu ou de l’espèce devait être prise et la délimitation devait être effectuée à l’aide d’un GPS. Toutes les informations fournies par les utilisateurs du territoire concernant des caractéristiques particulières sur le territoire pouvaient faire l’objet d’inventaires plus approfondis. C’est dans cette optique que le plan d’inventaire sur les milieux particuliers a été mis sur pied. Ce plan se divise donc en deux cas : Le ruisseau du Cran serré Nidification du Pygargue à tête blanche Comme pour les milieux humides et les milieux aquatiques, lors de tous les déplacements sur le terrain, il y avait prise en note de tous les signes de présence faunique, les signes de perturbations ainsi qu’une identification de toutes les espèces floristiques spéciales et de tous les écosystèmes particuliers rencontrés. Un point GPS, des photographies ou des notes pertinentes étaient prises, si nécessaire. Toutes ces données supplémentaires servent à toujours mieux définir l’ensemble des caractéristiques écosystémiques, floristiques et fauniques du territoire à l’étude. 48 4.1.1 Ruisseau du Cran serré Cet inventaire a été monté dans le but de connaître de manière plus exhaustive le ruisseau du Cran serré qui semblait avoir des particularités au niveau écosystémique, principalement en raison de sa conformation géologique. Ceci nous laisse croire qu’il est possible de trouver à cet endroit des espèces floristiques particulières. 4.1.1a) Méthodologie (Annexe 7) Pour réaliser l’inventaire, il s’agissait tout simplement de marcher les deux rives du ruisseau où il y a prise en note de toute les espèces végétales ou écosystèmes particuliers rencontrés. 4.1.1b) Résultat et discussion Lors de cette virée, aucune espèce à statut particulier n’a été aperçue. Il est à considérer que cet inventaire était ponctuel dans le temps et qu’il est par conséquent difficile d’apercevoir certaines espèces si elles ne sont pas dans leur période de floraison. 49 4.1.2 Pygargue à tête blanche (Haliaeetus leucocephalus) Cet inventaire a été monté, car depuis les deux dernières années, sur le territoire de la Forêt de La Doré, plusieurs observations de Pygargue à tête blanche sont survenues approximativement au même endroit. Le grand nombre d’observations peut laisser présager que l’oiseau s’y serait installé et non seulement de passage. Il est à noter que malgré le fait qu’un de ces oiseaux puisse passer du temps sur ce territoire, il peut être solitaire et ne pas y nicher (Germain Savard, communication personnelle) Le but est donc de connaître le lieu de nidification de l’oiseau pour pouvoir le protéger. Le pygargue à tête blanche fait partie de la liste des espèces menacées. Il a le statut « vulnérable » (CREDD 2007). 4.1.2a) Méthodologie (Annexe 8) Avant d’aller sur le terrain, le territoire où les observations ont eu lieux doit être observé par photographie aérienne et carte avec courbes de niveaux de manière à cibler les endroits où il a un plus gros potentiel de retrouver un nid. Les caractéristiques recherchées par H. leucocephalus pour la nidification sont (CREDD, 2007): Généralement l’arbre le plus élevé pour installer le nid Nid souvent à moins de 200 mètres d’un plan d’eau avec beaucoup de poissons Une journée complète à partir du lever de soleil est nécessaire pour augmenter les chances de pouvoir apercevoir l’oiseau. Il est à considérer que les nids de ces espèces sont immenses et souvent à la cime des plus grands arbres. Sur les lieux d’observations, le secteur était ratissé et une attention particulière était portée aux secteurs pré identifiés. Dans le cas où le nid était retrouvé, ce dernier devait être géoréférencé par un point GPS. Des mesures de protection seraient par la suite prises. 50 4.1.2b) Résultat et discussion Aucun Pygargue à tête blanche n’a été aperçu. Il est très difficile de pouvoir repérer un nid de Pygargue dans une forêt dense malgré les indications de départ. D’autres inventaires, dont une évaluation aérienne devrait être réalisée pour s’assurer qu’il n’y a pas de couple nicheur à cet endroit. 51 5. ANNEXES 1. Méthode de classification des milieux humides ................................................53 2. Légende de classification des milieux humides.................................................56 3. Protocole des milieux humides ..........................................................................57 4. Protocole des tributaires à ouananiches .............................................................60 5. Codes des espèces ichtyologiques .....................................................................63 6. Protocole des lacs de failles ...............................................................................64 7. Protocole du ruisseau du cran serré ...................................................................70 8. Protocole du Pygargue à tête blanche ................................................................71 9. Glossaire terminologique ...................................................................................73 52 Annexe 1. Démarche de classification des milieux humides et plan de sondage 1. Donner un numéro à chaque polygone écoforestier (et non à chaque milieu, car un milieu peut être composé de deux polygones ou plus). Exception : pour les polygones qui sont séparés en deux à cause des limites des feuillets écoforestiers, les joindre afin d’en faire un seul polygone. 2. Faire un tableau regroupant les polygones du MRNF. Sur ce tableau, inclure la nomenclature du type de milieu supposé par le MRNF (SIEF). Cette nomenclature est inspirée, en partie, de la méthode de classification des milieux humides du Québec boréal de Darveau et al., 2006 : Tourbière=DH sur dépôt 7E ou 7T, Marais=DH sur dépôt minéral, Marécage=AL et INO. Une classe «Spécial» est ajoutée pour les milieux non conformes (DH sur dépôt R, par exemple). Cette fiche doit aussi inclure le dépôt de surface, les polygones qui ont déjà été inventoriés dans les inventaires précédents (écoforestier et TPI), le numéro du polygone, un champ pour la classification de la photo-interprétation, un champ pour les remarques et les commentaires. 3. Faire une carte à échelle rapprochée pour avoir le contour des polygones le plus fidèlement défini. 4. Repérer le polygone du milieu humide sur la photographie aérienne. 5. Déterminer la dominante du polygone (milieu) selon le contour du polygone du MRNF et non selon l’apparence sur la photo. Les classes possibles sont : BOG, FEN, MAE (marécage), MAR (marais). Si le milieu comprend deux classes ou plus très distinctement (par exemple, une partie dominante FEN et une partie plus petite, mais très évidente, MAE), noter, dans le champ des remarques et des commentaires, la ou les codominantes à l’attention des techniciens et pour le plan de sondage. Les codominantes possibles sont : Partie(s) boisées : Indique qu’il y a présence d’arbres et/ou d’arbustes dans le polygone, mais pas suffisamment, selon la photo, pour que le milieu soit classifié MAE Partie(s) MAE : Indique qu’il y a présence, dans le polygone, d’un ou plusieurs secteurs de marécages distincts de la dominante 53 Partie(s) MAR : Indique qu’il y a présence, dans le polygone, d’un ou plusieurs secteurs de marais distincts de la dominante Partie(s) BOG : Indique qu’il y a présence, dans le polygone, d’un ou plusieurs secteurs de bog distincts de la dominante Partie(s) FEN : Indique qu’il y a présence, dans le polygone, d’un ou plusieurs secteurs de fen distincts de la dominante Partie(s) AQUA : Indique que dans le polygone écoforestier, il y a une ou plusieurs parties aquatiques pérennes créées par une perturbation comme le castor, suite au découpage du MRNF. 6. Si un polygone a une dominance d’eau sur la photo, mais pas dans la base de données écoforestière, évaluer si cette eau est pérenne ou non. Si c’est le cas, lui donner la classe de «milieu aquatique» et déterminer, si possible, la cause (barrage de castor ou autre). Ces polygones devenus aquatiques seront exclus de l’inventaire des milieux humides 2008. 7. Si un milieu a une particularité, la noter pour que les techniciens aient le plus d’informations possible à leur arrivée sur le terrain. 8. Si un milieu est repéré sur la photographie aérienne, mais ne se trouve pas dans la carte écoforestière du MRNF, l’interpréter et lui donner un numéro. Il en est de même pour les polygones représentés par des lacs dans la base SIEF dont l’eau n’est pas pérenne ou inapparente sur la photographie aérienne. Ces polygones forestiers ou aquatiques devenus des milieux humides seront exclus de l’inventaire des milieux humides 2008. 9. Compiler les résultats de la photo-interprétation dans la couche des milieux humides, sur ArcGIS. 10. Dessiner les nouveaux milieux repérés et les polygones forestiers et aquatiques devenus humides à l’aide des photographies aériennes géoréférencées. Étant donné que ces milieux ne seront pas inclus aux plans de sondage, ils doivent être créés dans une couche à part. 11. Pour le plan de sondage, associer chaque polygone (milieu) au bassin versant dans lequel il se trouve et à la région écologique. Si un milieu chevauche deux 54 territoires (bassins versants ou région écologique), le classer dans celui où il a la plus grande superficie. 12. Créer les regroupements que se nommeront ainsi : (type de milieu)_(bassin versant)_(région écologique). 13. Créer une couche par regroupement. [Pour notre inventaire : 23 regroupements (4 types de milieux, 4 bassins versants, 3 régions écologiques).] 14. Déterminer le nombre de semaines et de jours/semaine d’inventaire. 15. Déterminer le nombre moyen de milieux à visiter par jour. 16. Déterminer le taux d’échantillonnage de chaque regroupement pour respecter l’échéancier. 17. Calculer le nombre de polygones (milieux) à visiter par regroupement selon le taux d’échantillonnage et le nombre de milieux total dans le regroupement. Les regroupements comprenant moins de 4 polygones (milieux) auront un taux plus élevé d’échantillonnage (un polygone = 100%, 2 polygones = 50%, 3 polygones=33%) 18. Attribuer un numéro de parcelle à chaque polygone (milieu). 19. L’emplacement de la parcelle dans chaque polygone (milieu) se trouve au centre (le plus possible) de la dominante du polygone. 20. Créer les points de parcelles sur ArcGIS. 21. Ajouter les polygones avec leur numéro dans le GPS. 55 Annexe 2. Légende de classification des milieux humides Type de milieu humide Bog Fen Marais Marécage Bassin versant Rivière aux Saumons Rivière Pémonka Rivière du Cran Rivière Ashuapmushuan Région écologique Collines du haut Saint-Maurice Plaine du lac Saint-Jean et du Saguenay Collines ceinturant le lac SaintJean 56 Code BOG FEN MAR MAE Code S P C A Code 5c 4e 5d Annexe 3. Protocole des milieux humides Avant d’aller sur le terrain À chaque vendredi, fixer les points de parcelle au centre du milieu humide dominant de chaque polygone Prendre connaissance des milieux humides à visiter durant la semaine (à faire les jeudis ou les vendredis). Bien visualiser le milieu (la dominante et les codominantes) en fonction de la photo-interprétation réalisée précédemment. Revisualiser les milieux humides lors des déplacements en véhicule avant chaque visite de milieu. Imprimer la photographie aérienne du polygone avec les chemins, les cours d’eau, les plans d’eau et le point de parcelle, ainsi qu’avec les commentaires fait lors de la photo-interprétation. À l’arrivée sur la parcelle Se rendre au point de parcelle indiqué sur le GPS. Mettre un ruban : initiales des techniciens, numéro de parcelle, date, type d’inventaire. Prendre une photographie représentative du milieu humide. Indiquer si l’observation terrain correspond à celle faite par photo-interprétation et faire la clef des milieux humides au complet (exemple : bog de bassin) Faire les cinq micros-placettes de végétation, vers le nord, comme lors de l’inventaire de la CADLD (2006). S’il n’y a pas assez de place dans le polygone pour effectuer toutes les cinq micros-placettes vers le nord, diriger les vers l’est en premier, vers le sud et ce n’est pas encore possible, vers l’ouest. Fiche physico-chimique Noter les perturbations rencontrées sur le terrain : brûlis, chablis, coupe, etc. Inscrire la classification du type de milieu humide avec l’aide des clés d’identification. 57 Pour les milieux composés de tourbe, prélever un échantillon d’environ 3 po X 3 po X 3 po (27 po3) et le placer dans un sac «Ziploc». Inscrire sur le sac le numéro de la parcelle, la date et les initiales des techniciens. Par la suite, placer le sac dans une glacière avec de la glace (Ice pack). Creuser un trou de 40 cm dans la tourbe pour déterminer sa composition et l’état de décomposition (Of, Oh, Om). Inscrire les résultats sur la fiche d’inventaire. Prendre le pH de l’eau des milieux où la nappe phréatique est visible ou, si elle est invisible, en faisant un trou suffisant pour prendre un échantillon d’eau avec une bouteille NALGENE de 500 ml. (Rincer la bouteille avec cette eau avant de prendre l’échantillon) Apporter l’échantillon d’eau pour une analyse le SOIR MÊME avec le pH-mètre. Fiche de relevé de la végétation Procéder de la même façon que : Inventaires écologiques, (CADLD 2006) Prendre le recouvrement de chaque strate ainsi que l’absence/présence de chaque espèce. Fiche de signes de présence faunique Signes de présence faunique : procéder de la même façon que : Inventaires écologiques, (CADLD 2006) Fiche de rectification des inconnus Procéder de la même façon que : Inventaires écologiques, (CADLD 2006) Au retour de la journée Procéder de la même façon que : Inventaires écologiques, (CADLD 2006). Mettre les échantillons de tourbe dans une boîte identifiée dans le congélateur. Effectuer la lecture de pH des échantillons d’eau prélevés dans la journée. Placer les spécimens floristiques dans un herbier jusqu’au moment de l’identification. L’inventaire des milieux humides a été réalisé dans le but de connaître leurs particularités, de repérer les endroits riches en biodiversité ainsi que les espèces fauniques 58 et floristiques particulières dans le but d’affecter adéquatement le territoire. Ces affectations concernent donc les bandes riveraines des milieux humides étant donné que le but était d’affecter le territoire forestier productif. 59 Annexe 4 : Protocole des tributaires à ouananiches À l’arrivée sur la parcelle : Repérer, à l’aide du GPS, le point où commence l’échantillonnage (C’est-à-dire 50 mètres après le début du tributaire Pémonka ou aux Saumons) Planter une ou des pancartes (selon besoin) indiquant le projet en cours. Placer le ruban à mesurer, si possible d’un bord à l’autre du cours d’eau, et le laisser là. Fiche de morphologie et de physico-chimie des cours d’eau - Toutes les données physico-chimiques se réalisent à la hauteur du ruban à mesurer Vitesse de l’écoulement La vitesse est déterminée à l’aide d’une balle de hockey ou d’une orange (fruit), d’un chronomètre et d’une épuisette. Se mettre entre le bord de l’eau où il n’y a pas de courant et la zone avec le maximum de courant, dans le COURANT MOYEN. Un manipulateur laisse la balle dans l’eau au niveau du ruban à mesurer (Il faut remarquer la distance du bord à laquelle la balle est lâchée). La balle doit être totalement sous l’eau et effleurer la surface (même densité que l’eau) L’autre manipulateur (qui recevra la balle ou l’orange) doit être à une distance prévue pour que la balle prenne au moins 20 secondes à la franchir. Noter le temps que la balle a pris pour franchir la distance. Répéter les mêmes manœuvres trois fois et faire une moyenne. Pour le pH, la conductivité, l’oxygène dissous et la température : -Les données se prennent à l’endroit où il y a le plus de courant sous le ruban à mesurer. 60 -Les instructions pour le fonctionnement des appareils pour ces mesures sont décrites dans le protocole des plans d’eau. pH, conductivité et température -Si l’eau est perturbée, effectuer l’échantillonnage du pH et de la conductivité à côté du point prévu et le noter. -(Si l’eau est perturbée partout, prendre la donnée tout de même et le noter en remarque). -Tremper les électrodes du pH-mètre et du conductivimètre juste sous la surface et noter. –S’il n’y a pas assez d’eau pour tremper les électrodes, prendre un échantillon avec une bouteille de style «NALGEN» de 1 L. -Prendre la température au même moment Oxygène dissous et température -Tremper les électrodes juste sous la surface et noter les résultats. -S’il n’a pas assez d’eau pou tremper les électrodes, prendre un échantillon avec une bouteille de style «NALGEN» de 1 L. -Ne pas oublier de noter la mesure de la température en même temps Couleur - Référence (protocole des lacs de faille) Transparence - Référence (protocole des lacs de faille) 61 Trappe à ménés (coup de seine si possible) Pour les tributaires, seulement cinq trappes à ménés sont installées. La première se place à 50 mètres de l’embouchure de la rivière et les quatre autres à 50 mètres les unes des autres (des points GPS devront être fait au bureau avant le départ) La pêche doit durer de 18 à 24 heures et englober la période de 18:00 à 09:00. Laisser les pièges toute la nuit. Le lendemain, sortir les trappes à ménés délicatement de l’eau. Identifiez et comptez le nombre de poissons. Pour tous les poissons vivants, il faut les identifier et les relâcher. Pour les spécimens morts, les identifier. Dans le cas de doute, passer une étiquette avec une broche dans la branchie du poisson avec le nom des coéquipiers, le numéro de la parcelle, le type de piège, la date. Placer par la suite dans un sac «ziploc» dans une glacière munie de «Ice packs». Fiche de photos Procéder de la même façon que : Inventaires écologiques, (CADLD 2006) Fiche de rectification des inconnus Procéder de la même façon que : Inventaires écologiques, (CADLD 2006) Au retour de la journée 62 Procéder de la même façon que : Inventaires écologiques, (CADLD 2006) Les filets devront être nettoyés et séchés Annexe 5 : Code des espèces ichtyologiques meunier noir ouitouche mulet perlé triton vert omble de fontaine épinoche à cinq épines naseux noir de l'Est naseux des rapides meunier rouge CACO SECO MAMA NOVI SAFO CUIN RHAT RHCA CACA Catostomus Semotilus Margariscus Notophthalmus Salvelinus Culaea Rhinichthys Rhinichthys Catostomus commersonii corporalis margarita viridescens fontinalis inconstans atratulus cataractae catostomus 63 Annexe 6. Protocole des lacs de faille À l’arrivée sur la parcelle Planter une ou des pancartes (selon les besoins) indiquant le projet en cours. (Explication du projet et raison) Fiche de morphologie et de physico-chimie des plans d’eau Profil Faire un tracé bathymétrique en fonction de la forme du lac (Guide de normalisation, MRNF). À l’aide du sonar, prendre la profondeur toutes les 10 secondes en avançant à vitesse lente et constante avec la chaloupe (Remarquer où est le point le plus profond) Une fois que le point le plus profond est ciblé, y retourner pour prendre le pH, la conductivité, la température, la couleur et la transparence. pH, conductivité et température: -Dans tous les cas, si l’eau est perturbée par la présence de sédiments en suspension, recommencer l’échantillonnage du pH et de la conductivité à côté et l’inscrire (Si l’eau est toujours perturbée, faire une remarque) Pour les plans d’eau de plus de 7 mètres de profondeur -Prendre un échantillon d’eau intégrée avec une bouteille d’échantillon intégré : -Rincer la bouteille avec l’eau du plan d’eau. -Laisser descendre la bouteille à vitesse constante jusqu’à cinq mètres et la remonter à la même vitesse. -À son arrivée, la bouteille ne doit pas être pleine. Si elle est pleine, il est possible qu’une partie de la colonne d’eau ne soit pas intégrée dans l’échantillon. Dans ce cas, recommencer le processus plus lentement. 64 -Par la suite, tremper les électrodes dans la bouteille. Ne pas oublier de noter la température en même temps. Pour les plans d’eau de 3 à 7 mètres -Prendre un échantillon d’eau intégrée avec une bouteille d’échantillon intégré : -Rincer la bouteille et laisser descendre à vitesse constante jusqu’à deux mètres du fond. -La remonter à la même vitesse. -À son arrivée, la bouteille ne doit pas être pleine, sinon recommencer le processus plus lentement. -Par la suite, tremper les électrodes dans la bouteille. Ne pas oublier de noter la température en même temps Pour les plans d’eau de moins de 3 mètres -Submerger totalement les électrodes et prendre en note les mesures. Ne pas oublier de noter la température en même temps Oxygène dissous et température : Oxymètre : -Prendre la mesure en (Mg/L). Pour les cours d’eau de moins de 1,5 mètre de profondeur - Tremper les électrodes sous la surface (si possible à cinq mètres) et noter les résultats. - S’il n’a pas assez d’eau pou tremper les électrodes, prendre un échantillon avec une bouteille de style «NALGEN». -Ne pas oublier de noter la température en même temps. 65 Pour les cours d’eau de plus de 1,5 mètre de profondeur - Avec l’oxymètre, prendre les mesures aux profondeurs suivantes : - 0,5 mètre - de 1 à 14 mètres inclusivement : à chaque mètre - de 16 à 20 mètres inclusivement : à tous les deux mètres - à partir de 24 mètres inclusivement, et ce, jusqu’au fond du cours d’eau : à tous les quatre mètres -Ne pas oublier de noter la température en même temps. *Si les mesures de températures, d’oxygène dissous et de pH ne sont pas correspondantes à celles nécessaires pour l’Omble chevalier, il est possible de vérifier si d’autres endroits sur le lac correspondraient à celles recherchées. Couleur de l’eau -Prendre des échantillons d’eau dans les éprouvettes prévues à cet effet -Selon Unité APHA (couleur apparente) Transparence -Avec un disque de Secchi, une corde graduée et un bathyscope maison, se placer dos au soleil. -La chaîne doit être maintenue verticalement -Descendre le disque jusqu’au moment où il disparaît. -Remonter le disque lentement. Le moment où il réapparaît correspond à la mesure de transparence. -Trois mesures doivent être prises dans le but dans faire une moyenne. 66 Installation des pièges pour faune aquatique Il est essentiel de poser les Filets maillants expérimentaux aux conditions de température de d’oxygène mentinnées ci-bas : Filets maillants expérimentaux Il faut poser les filets dans la partie supérieure de l’hypolimnion. C’est donc la couche sous la thermocline et la couche la plus froide et plus profonde du lac. Caractéristiques recherchées : 12ºC ou moins - Oxygène dissous de 5 ppm ou (5 mg/L) minimum -Ne pas dépasser 20 mètres de profondeur Si on ne trouve pas ces caractéristiques, il est théoriquement impossible de trouver le Salvelinus alpinus. (De plus, on risque de tuer des populations non-ciblées) DONC, ON NE MET PAS DE FILETS MAILLANTS!!!... Si le lac correspond aux caractéristiques Installer les 2 filets bout à bout dans la zone présentant les caractéristiques recherchées Seine Commencer par passer la seine à deux mètres du tributaire. À partir de ce point, allez vers la droite (la droite lorsque les manipulateurs regardent vers le plan d’eau). S’il n’est pas possible de passer la seine en raison d’une grande quantité de débris ou d’un endroit trop profond, se déplacer vers la droite jusqu’à ce qu’il soit possible d’effectuer les manœuvres. 67 S’il y a du poisson vivant, il faut l’identifier et le relâcher. Pour les spécimens morts, les identifier. Dans le cas de doute, passer une étiquette avec une broche dans la branchie du poisson et inscrire les initiales des coéquipiers, le numéro de la parcelle, le type de piège et la date. Placer le spécimen dans un sac «Ziploc» dans une glacière munie de «Ice packs». Trappe à ménés À partir de ce point, mettre la première trappe à ménés à 2 mètres du bord (ou au centre du plan d’eau s’il est plus petit que 2 mètres). Une roche doit être déposée délicatement au fond de la trappe à ménés et une bouée doit y être attachée à l’aide d’une corde. Chaque trappe à ménés doit aussi contenir un appât dans la petite poche refermable (pain). Les quatre autres trappes à ménés doivent être disposées de la même façon, c’està-dire à deux mètres du bord en allant du côté droit lorsqu’on regarde vers le plan d’eau. Une distance centre-centre de 10 mètres doit être laissée entre chacune d’elle (installer les trappes à ménés seulement si l’entrée est submergée). Verveux -Le verveux est utilisé. (gros ou petit dépendamment de la largeur de tributaire) l’ouverture pointant vers le lac. - Il doit être dans le fond du cours d’eau. Des pieux (bâton de bois ou de fer) le fixe au fond. -Les panneaux latéraux (dans le cas du petit verveux = 5 pieds pour chaque panneau) sont étendus de chaque côté de façon à bloquer la route aux poissons. Fiche faune aquatique Inscrire sur la fiche les initiales des techniciens, le numéro de la parcelle, l’heure de montée et de désinstallation des filets et des trappes à ménés ainsi que la date. Indiquer l’heure du coup de seine. Laisser toute une nuit les pièges. Le lendemain, sortir les trappes à ménés délicatement de l’eau. Identifiez et comptez le nombre de captures. S’il y a des 68 spécimens vivants, il faut les identifier et les relâcher. Pour les spécimens morts, les identifier sur place. Dans le cas de doute, passer une étiquette avec une broche dans la branchie du poisson et inscrire les initiales des techniciens, le numéro de la parcelle, le type de piège et la date. Placer le spécimen dans un sac «Ziploc» dans une glacière munie de «Ice packs». Au retour de la journée Procéder de la même façon que : Inventaires écologiques Les filets devront être nettoyés et séchés 69 Annexe 7. Protocole du ruisseau du Cran serré Ce protocole a été monté dans le but de connaître de manière plus exhaustive le ruisseau du Cran serré qui semblait avoir des particularités au niveau écosystémique principalement en raison de sa conformation physique. Ceci nous laisse croire qu’il est possible de trouver à cet endroit des espèces floristiques particulières. Une fois arrivée au ruisseau -Commencer à une extrémité du ruisseau -Marcher sur le bord du ruisseau (les deux rives) de façon à faire une battue et marquer d’un point GPS : toute espèce végétale particulière -Prendre une photo de l’habitat et décrire les caractéristiques suivantes : Approximation de la colonie (est-ce qu’elle est seule ?) Si c’est une grosse colonie, prendre un point GPS au début et la fin de la colonie Décrire l’habitat avec : le nom du technicien et la date Au retour de la journée Identifier les espèces inconnues s’il y a lieu 70 Annexe 8. Protocole pour le Pygargue à tête blanche Ce protocole a été monté en raison de plusieurs observations de Pygargue à tête blanche survenues approximativement au même endroit sur le territoire de la Forêt de La Doré lors des deux dernières années. Le but est donc de connaître le lieu de nidification de l’oiseau pour pouvoir le protéger. Habitat préférable pour la nidification du Pygargue Niche normalement dans l’arbre le plus haut de la canopée Sinon, peuvent nicher sur les falaises rocheuses Les nids sont immenses : peuvent aller jusqu'à 6 mètres d’épaisseur et peser jusqu’à 2 tonnes Nid normalement à moins de 200 mètres de l’eau (idéalement d’un cours d’eau rapide ou d’un grand lac) *Il est aussi possible que ces oiseaux ne soient que de passage Avant d’aller sur le terrain : Mettre les points d’observations sur le GPS Identifier les secteurs potentiels avant d’aller sur le terrain (haut de falaise, cran, vieux peuplements, milieux aquatiques) Amener une carte du terrain (lignes topographiques, chemins, milieux aquatiques) Arriver tôt le matin = lever du soleil 71 Une fois arrivé sur les lieux d’observation : -Faire une battue en regardant tous les endroits potentiels à partir du lieu des observations (point GPS) et ce, tranquillement en s’éloignant de ce point (considérer le domaine vital de l’oiseau) -S’il y a observation d’un pygargue, prendre un point GPS et tenter de voir le lieu de nidification Lieu de nidification -Si le lieu de nidification est trouvé -Ne pas déranger les oiseaux -Prendre un point GPS -Tenter de voir avec des jumelles s’il y a des jeunes -Prendre une photo du lieu et du nid (si possible) 72 Annexe 9. Glossaire terminologique Biodiversité Diversité des organismes vivants de toutes sources (terre, mer et autres écosystèmes aquatiques) et des réseaux écologiques dont ils font partie; elle comprend la diversité au sein des espèces, entre les espèces et dans les écosystèmes (Environnement Canada 2002). Bog (tourbière ombrotrophe) Milieu humide avec une accumulation minimale de 40 cm de tourbe. Végétation dominée par la sphaigne avec arbres et arbustes ou sans arbre. Parfois, il est possible de trouver des carex mélangés, particulièrement dans les parties plus profondes. Le pH de l’eau est normalement entre 4.0 et 4.8 ou inférieur. L’eau provient exclusivement de précipitations, sans l’effet de l’eau souterraine. La nappe phréatique se trouve généralement au niveau ou près de la surface (Groupe de travail national sur les terres humides, 1997). Codominante (milieu humide) Pour le bien de cet inventaire, le terme « codominante » signifie le type de milieux humides qui est, en terme de superficie, la deuxième plus importante dans le polygone écoforestier représentant un milieu humide. Corridor biologique L’expression « corridor biologique » (ou biocorridor) désigne un ou des milieux reliant fonctionnellement entre eux différents habitats vitaux pour une espèce ou un groupe d’espècesm(habitats; sites de reproduction, de nourrissage, de repos, de migration, etc.). Ces structures mécopaysagères permettent de « connecter » ou de « reconnecter » entre elles plusieurs sous-populations. Elles permettent la migration d’individus et la circulation de gènes (animaux, végétaux ou fongiques) d’une sous-population à une autre (Joly & al. 2008). 73 Dominante (milieu humide) Pour le bien de cet inventaire, le terme « codominante » signifie le type de milieux humides qui est, en terme de superficie, la plus importante dans le polygone écoforestier représentant un milieu humide. Écosystème Entité spatiale constituée d’une partie physique relativement stable qui sert de support à une partie biologique dynamique et d’échanges de matériel et d’énergie entre les deux parties, dans l’espace et dans le temps (Joly & al. 2008). Fen (tourbière minérotrophe) Milieu humide avec une accumulation minimale de 40 cm de tourbe. Végétation dominée par les carex, les espèces graminoïdes et les mousses brunes à demi décomposées. Il y a possibilité de voir des tapis de végétaux de type graminoïde et arbustif. L’eau est riche en minéraux dissous. La surface se trouve au même niveau que la nappe phréatique avec des fluctuations au-dessus de la surface. La circulation de surface peut se faire par l’entremise de chenaux, de mares et d’autres plans d’eau libre (Groupe de travail national sur les terres humides, 1997). Marécage Milieu humide caractérisé par la présence d’eau stagnante ou s’écoulant lentement se retrouvant de façon saisonnière ou pendant de longues périodes, ce qui donne un sous-sol continuellement saturé d’eau. La végétation est dominée par des arbres conifères ou décidus, ou un tapis végétal de grands arbustes. Les grands arbres couvrent généralement 30% de la surface. Le substrat est composé de mélanges de sols minéraux et organiques ou constitué de tourbe composée de matière ligneuse et de matière organique très décomposées. Ce tapis végétal est influencé par l’eau souterraine minérotrophe et la nappe phréatique est au même niveau que la surface, ou au-dessus d’elle (Groupe de travail national sur les terres humides, 1997). 74 Marais Milieu humide d’eau calme périodique ou persistante, ou eau de surface bougeant lentement et habituellement riche en nutriants (substances nutritives). La surface d’eau peu profonde varie de manière impressionnante. L’eau du sol reste dans la zone d’enracinement pendant presque toute la durée de la saison de croissance, sauf pendant les années de grande sécheresse. Les sédiments sont habituellement constitués d’un mélange d’éléments organiques et inorganiques meubles. La végétation est principalement composée de macrophytes aquatiques émergés, surtout de type graminoïde, tels les joncs, les roseaux, les graminées et les carex, des arbustes et d’autres espèces herbacées, tels les macrophytes latifoliées aquatiques, flottantes et partiellement submergées, et des plantes non vasculaires, telles les mousses brunes, les bryopsidées et les algues macroscopiques (Groupe de travail national sur les terres humides, 1997). Milieu humide Une terre humide, appelée également milieu humide ou zone humide, se définit comme un terrain où la nappe phréatique est à proximité ou au-dessus de la surface, ou qui est saturé d’eau assez longtemps pour créer des conditions comme des sols modifiés par l’eau et une végétation hydrophile (tolérant de longues périodes d’inondation ou du moins tolérant des inondations périodiques). Les terres humides comprennent les terres humides organiques ou «tourbière» et les terres humides minérales ou zone de sols minéraux qui subissent l’influence d’un excès d’eau, mais qui produisent peu ou pas de tourbe (Groupe de travail national sur les terres humides, 1997). Polygone écoforestier Division des cartes écoforestières cartographiés à l’échelle 1:20000 où sont cumulés les résultats de la photo-interprétation sur les peuplements forestiers et sur les dépôts de surface (Joly & al. 2008). 75 Type (de milieux humides) Dans cet inventaire, les types de milieux humides sont : tourbière ombrotrophe (bog, tourbière minérotrophe (fen), marais et marécage. Système d’inventaire écoforestier (SIEF) Système regroupant plusieurs informations permettant de décrire les peuplements forestiers à l’échelle régionale, telle que les catégories de terrain, les types de couvert, les groupements d’essences, la densité, la hauteur, l’âge du peuplement et les perturbations (Joly & al. 2008). 76 6. RÉFÉRENCES Bernatchez, L. & Giroux, M. 2000. Les poissons d’eau douce du Québec et leur répartition dans l’est du Canada. Broquet inc. 350 p. Breton, M.N., Darveau, M. & Beaulieu, J. 2005. Développement d’une méthode de classification automatisée des milieux humides et des milieux riverains en forêt boréale. Rapport technique No. Q2005-1. Canards Illimités – Québec. 25 p. CADLD, 2006. Plan d’inventaire écoforestier de la Forêt de La Doré. Corporation d’aménagement et de développement de La Doré. 24 p. CADLD, 2008a. Rapport d’inventaire écoforestier de la Forêt de La Doré. Corporation d’aménagement et de développement de La Doré. 27 p. CADLD, 2008b. Inventaire écologique du bloc de terres publiques intramunicipales Saint-Félicien – La Doré et des lots appartenant au Centre de la biodiversité boréale. Corporation d’aménagement et de développement de La Doré. 29 p. CREDD, 2007. Site des espèces menacées au Saguenay Lac-St-Jean. Conseil régional de l’environnement et du développement durable au Saguenay Lac-St-Jean. Site visité le 20 septembre 2008 : www.especesmenacees.org Émond, G. 2003. Les Habitats. Plan de cours, cahier de laboratoire et notes théoriques. Cégep de Saint-Félicien. 136 p. Environnement Canada. 2002. À la jonction de la terre et de l’eau : Apprécier les terres humides des Grands Lacs. Environnement Canada, Toronto, ON. 72 pp. Fleurbec 1987. Plantes sauvages des lacs, rivières et tourbières. Fleurbec éditeur, SaintAugustin (Port-Neuf), Québec. 391 p. Houde, L. 2006. Identification des milieux humides à titre de sites fauniques d’intérêt (SFI). Ministère des ressources naturelles et de la faune. Faune Québec. Direction de l’aménagement de la faune de la Mauricie. Rapport technique. 16 pages et annexes. Joly, M, Primeau, S., Sager M. & Bazoge A. 2008. 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