Actualités sanitaires - FREDON Pays de la Loire

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RESEAU DE SURVEILLANCE BIOLOGIQUE DU TERRITOIRE 2016
PAYS DE LA LOIRE
rédigé par Noémie JACQUEMIN - FREDON Pays de la Loire
ACTUALITES
Les ravageurs
Pucerons
Des infestations qui peuvent
être importantes
Acariens tétranyques
Différentes cultures touchées.
Vigilance
Thrips
Eliminer les vieilles cultures
infestées
Psylle de l’Elaeagnus
Différents stades
Otiorhynques
Présence d’adultes
Point sur le réseau de piégeage
Cossus, Zeuzère
Vols en cours selon les sites
A
ctualités sanitaires
 Ravageurs courants
Pucerons
développement.
En culture florale, nous n’avons pas eu de retour récent d’observations. Les suivis se mettent en place sur les parcelles de cyclamens et
chrysanthèmes.
Côté auxiliaires, ils sont diversifiés et très actifs. On observe notamment des syrphes, des
coccinelles (larves et adultes), des chrysopes,
des momies de pucerons, des pucerons mycosés et des larves de cécidomyies aphidiphages.
Eliminer les vieilles cultures de printemps infestées car elles sont source de contamination
des nouvelles productions.
En pépinière, les populations peuvent être localement importantes sous abri et en extérieur.
Le temps doux et humide est propice à leur
La vigilance est donc de rigueur pour détecter
au plus tôt les foyers et suivre l’évolution des
populations et des auxiliaires.
Mineuse du marronnier
Augmentation des captures
Pyrale du buis
Intensification des vols
Tordeuse européenne de
l’œillet
FREDON PdL
Vols faibles et présence de chenilles
Larve de coccinelle Scymnus à proximité de foyers
de pucerons sur Viburnum tinus
Maladies
Oïdium
Différentes espèces touchées
Marssonina rosae
Progression des infestations
FREDON PdL
Momies de pucerons et cécidomyies aphidiphages (larves orange)
Plomb parasitaire
Infestation importante cette
année
FREDON PdL
Ecophytopic
Œuf de chrysope
ABONNEMENT BSV
Retrouvez le bulletin de santé du végétal
sur le web...
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RESEAU DE SURVEILLANCE BIOLOGIQUE DU TERRITOIRE 2016
PAYS DE LA LOIRE
BSV ORNEMENT–N°08 DU 08 JUILLET 2016
A
ctualités sanitaires
Pucerons
Le tableau suivant montre un résumé des infestations de pucerons sur plusieurs cultures suivies par protocoles.
Cultures
Caractéristiques
Dpt
Niveau d’infestation
Evolution
Viburnum
tinus
Extérieur, conteneur 4 L
49
10% d’individus isolés

(2 cultures)
Tunnel, conteneur 4 L
49
60% de colonies

Photinia
Fraseri ‘Red Robin’, extérieur, 10 L
72
0%

Fraseri ‘Red Robin’, extérieur, 10 L
49
0%

Fraseri ‘Red Robin’, extérieur, 10 L
49
20% d’individus isolés, 40% de colonies,
20% colonies + ailés

Décorosier® ‘Vesuvia’ en
extérieur, conteneur 2 L
49
10% d’individus isolés

(3 cultures)
Rosier (3 cultures)
Observations d’auxiliaires
Commentaires
Taille semaine 18
Syrphes, cécidomyies
Taille semaine 22
Macrosiphum euphorbiae
et Macrosiphum rosae
10% de colonies
Différentes variétés, pleine
-terre, en extérieur
85
10% d’individus isolés

Décorosier® en extérieur,
conteneur 2 L. Utilisation
de Potentilla fruticosa
‘GoldFinger’ comme plante
de service.
44
40% de colonies

Chrysopes
Acariens tétranyques
Beaucoup de signalements de présence d’acariens tétranyques
sur différentes cultures sous abri : Ceanothus thyrsiflorus, C. prostatus, Escallonia, Euonymus japonicus, Rhododendron, Rosa,
Viburnum x bodnantense 'dawn' et un début d’infestation sur Choisya .
Une première détection d’acariens tétranyques a été faite sur une
culture de rosier en extérieur.
Evaluation du risque : les acariens tétranyques profitent des conditions chaudes et d’une hygrométrie faible pour se développer.
Les conditions climatiques actuelles vont donc favoriser un développent plus rapide des populations.
FREDON PdL
Dégâts d’acariens tétranyques sur Euonymus japonicus (apex)
FREDON PdL
Maintenir une vigilance sur les végétaux sensibles.
Lutte mécanique : Bassinage des feuilles pour créer un climat
moins favorable.
Lutte biologique : acariens prédateurs, cécidomyie prédatrice,
coccinelle prédatrice, thrips prédateur.
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Larve de cécidomyie prédatrice d’acariens tétranyques
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Thrips
En cultures florales, éliminer les vieilles cultures de printemps
infestées car elles sont source de contamination des nouvelles
productions.
Evaluation du risque : les journées ensoleillées et la floraison des
plantes sensibles favorisent leur développement.
PBI efficacement. L’utilisation de kairomones peut augmenter
l’attractivité des panneaux chromatiques. De même, l’examen des
plantes et leur frappage sur feuille de papier blanc permet de
détecter les thrips et de déterminer le niveau d’infestation par
comptage des individus. Pour que la lutte biologique soit un succès, elle doit être basée sur des actions combinées et préventives.
Prophylaxie : la pose de plaques bleues engluées est un moyen
pour détecter leur présence au plus tôt afin de mettre en place la
 Autres ravageurs
Psylle de l’Elaeagnus
On observe toujours des individus au stade ‘adulte’
ou ’larve’ ou les 2 sur 3 parcelles du réseau. Les infestations sont faibles. Le tableau suivant montre un
résumé des infestations de psylles sur différentes
cultures d’Elaeagnus x ebbingei suivies par protocoles.
Au niveau des auxiliaires, on peut noter la présence
de punaises prédatrices (probablement Anthocoris
nemoralis), de larves de syrphes (probablement Meliscaeva auricoliis), de coccinelles ou d’hyménoptères
parasitoïdes.
Caractéristiques
Dpt
Niveau d’infestation
Evolution
‘Gilt Edge’, pied-mère,
pleine-terre
85
0%

‘Gilt Edge’, jeune plant,
sous tunnel
85
0%

‘Gilt Edge’, sous serre,
3L
53
0%

0%

49
30% adultes seuls,
50 % larves (+adultes)

49
40% larves (+adultes)

49
30% adultes seuls,

‘Compacta’, extérieur,
10 L
extérieur, 3 L
Evaluation du risque : Les psylles rentrent en diapause en été lorsque les températures avoisines les extérieur, 10 L
30 °C et reprennent leur activité à l’automne. Evolu‘Viveleg’, extérieur, 10 L
tion des températures à suivre.
Observations
d’auxiliaires
Punaises prédatrices
: distançage.
: bassinage des plantes.
hyménoptères parasitoïdes et/ou de la punaise prédatrice Anthocoris nemoralis.
culture en extérieur ou sortir les plantes le plus tôt possible à l'extérieur. L’arrivée spontanée de la coccinelle asiatique
est très efficace.
Otiorhynques adultes
Les adultes d’otiorhynques sont toujours actifs sur différentes
cultures et notamment sur plusieurs parcelles de Photinia.
Evaluation du risque
: les adultes de ce ravageur s’alimentent la
nuit en dévorant l’extrémité des feuilles, laissant des traces de
morsures en demi-lune qui peuvent être particulièrement inesthétiques sur les végétaux d’ornement à feuillage persistant.
Après la ponte des œufs au pied des végétaux, il s’ensuit l’apparition des larves souterraines qui sont préjudiciables. En effet,
leur voracité peut entraîner l’affaiblissement des plantes sensibles et causer de gros dégâts en se nourrissant du système
racinaire, dès leur éclosion et jusqu’à leur nymphose.
Avant l’émergence des adultes, la disposition de plantes-pièges en extérieur comme le
Bergenia cordifolia permet de limiter la ponte
dans la culture et dans une moindre mesure
de limiter les morsures (données issues d'un
projet ASTREDHOR Loire-Bretagne).
Des nématodes entomopathogènes ou bien le champignon Mea
tarhizium anisopliae permettent
de cibler le stade larvaire de ces
coléoptères.
Source : Fiche ECOPHYTO DEPHY Itinéraire innovant pour les cultures sensibles à l’otiorhynque. Y accéder ICI
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 Autres ravageurs en bref
Altises sur saules
Dernière
Altises sur Fuchsia (cf BSV 6)
minute
R
avageurs du réseau de piégeage
 Cossus cossus
Observations : le papillon du Cossus cossus est actuellement suivi
dans la région sur 4 sites de piégeage à phéromones (44, 49, 53).
Le vol est en cours. Le graphique ci-contre illustre les papillons
piégés par site
Lutte mécanique : si des galeries sont détectées, tuer les larves en
enfonçant une tige de cuivre ou un fil de fer souple à l’intérieur.
Mastiquer.
Evaluation du risque : vols à suivre.
Biologie : ce papillon pond ses œufs en paquet dans les crevasses
de l’écorce. Après une incubation de 12 à 15 jours, les chenilles
rosâtres creusent aussitôt leur galerie dans le tronc.
Prophylaxie : maintenir les arbres en bonne vigueur végétative.
Piégeage massif : installer des pièges à phéromones de juin à
septembre.
 Zeuzère (Zeuzera pyrina)
Observations : le réseau de piégeage phéromonal est constitué de
5 sites de suivi des vols dans la région des Pays de la Loire.
Biôcontrôle : Bacillus thuringiensis sur les jeunes larves après
identification du pic de vol.
Le vol est en cours depuis début juin sur le site de Bouguenais.
Lutte mécanique : si des galeries sont détectées, tuer les larves
en enfonçant une tige de cuivre ou un fil de fer souple à l’intérieur.
Mastiquer.
Evaluation du risque : vols à suivre.
Biologie : l’éclosion des jeunes chenilles intervient environ trois
semaines après la ponte. Elles pénètrent d'abord dans les parties
vertes (feuilles, pétioles...) en effectuant plusieurs migrations. Puis
elles creusent des galeries ascendantes dans le bois. Les orifices
de pénétration des larves sont marqués par de petits tas de sciure
et d'excréments (en forme de petits cylindres) accompagnés
d'écoulement de sève, particulièrement visibles sur les grosses
branches, c'est-à-dire à un stade où les dégâts sont déjà fort avancés.
Prophylaxie : maintenir les arbres en bonne vigueur végétative.
Piégeage sexuel massif : installer des pièges à phéromones de
juin à septembre.
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 Mineuse du marronnier (Cameraria ohridella)
Observations : les pièges à phéromones pour le suivi de la mineuse du marronnier ont été installés sur 8 sites de la région.
Les captures des papillons sont à la hausse sur tous les sites de
piégeage. Le second vol est en cours.
Evaluation du risque : Evolution du vol à suivre. Surveiller l’apparition des jeunes larves mineuses de la seconde génération.
Biologie : cet insecte passe l’hiver sous forme de chrysalide dans
les feuilles tombées au sol. Dès l’émergence, les papillons volent
sur le tronc pour s’y accoupler. Les œufs sont pondus sur les
feuilles. L’éclosion a lieu 2 à 3 semaines plus tard. Elle est suivie
par la pénétration, dans les feuilles, des larves qui vont creuser
des galeries. Elles se chrysalident ensuite à l’intérieur de leurs
mines. Les jeunes papillons en sortent 2 semaines plus tard environ. Trois générations se succèdent généralement dans notre région.
 Pyrale du buis (Cydalima/Diaphania perspectalis)
Observations : Le réseau de piégeage phéromonal est constitué de
14 sites de suivi des vols.
Les vols se sont intensifiés. De nouveaux sites enregistrent des
captures. 70% des pièges sont positifs contre 40% il y a 15 jours.
Des pontes et des chenilles fraîchement écloses ont été détectées
en région angevine
Lutte biologique : Trichogrammes (micro-hyménoptères parasitoïdes d’œufs) dès les détections des vols.
©
Laboratoire de biocontrôle, Inra UEFM
Evaluation du risque : surveiller vos pièges et l’apparition des
jeunes chenilles dans les buis.
Biocontrôle : intervenir sur les larves avec un produit à base de
Bacillus thuringiensis var. kurstaki, 1 semaine après le pic de vol
pour tenter de détruire la première génération de chenille. Les
produits à base de Bacillus sont lessivables (à renouveler en cas
de pluie et pas adaptés avec un arrosage par aspersion).
Cycle biologique au laboratoire à 25 °C
Eléments de gestion complémentaire des populations de pyrale du buis (issus des travaux SaveBuxus (programme
coordonné par Plante et Cité et ASTREDHOR) )

Supprimer les feuilles mortes et autres débris présents dans, sur, et autour du buis concerné.

Supprimer manuellement ou mécaniquement (appareil à air ou eau sous pression, souffleur ...) les stades du ravageur en présence
dans le cas d’une faible infestation.

Observer minutieusement tous les nouveaux pieds achetés ou à planter.

Surveiller les buis de manière régulière et avec soin (jusqu’au cœur de la plante) à la recherche de chenilles ou de pontes

Surveiller les vols des papillons avec des pièges à entonnoir associés à la phéromone spécifique de la pyrale d’avril à octobre.
Synthèse 2014, SAVE BUXUS, volet pyrale du buis. Y accéder en cliquant ICI.
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RESEAU DE SURVEILLANCE BIOLOGIQUE DU TERRITOIRE 2016
PAYS DE LA LOIRE
BSV ORNEMENT–N°08 DU 08 JUILLET 2016
 Tordeuse européenne de l’œillet (Cacoecimorpha pronubana)
Observations : la tordeuse européenne de l’œillet est actuellement
suivie sur 7 sites de piégeage à phéromones répartis sur la région
des Pays de la Loire (départements 49, 85, 72).
Les vols sont faibles.
Présence de chenilles sur différents végétaux sensibles.
Evaluation du risque : surveiller les jeunes chenilles. Après la
ponte, les œufs éclosent au bout de 2-3 semaines puis les jeunes
chenilles commencent à décaper des feuilles regroupées par une
toile. (Source : V. Alford D. (2013) Ravageurs des végétaux d’ornement –
Arbres arbustes et fleurs. Deuxième édition, Ed. Quae, 480p.).
Biocontrôle : des produits à base de Bacillus thuringiensis sont
autorisés sur chenille selon la culture concernée.
Lutte mécanique : selon les cultures, les opérations de taille vont
permettre d’éliminer les chenilles positionnées sur les apex.
M
aladies cryptogamiques
Oïdium
Les conditions climatiques des derniers mois ont été propices à
l’oïdium sous abri et en extérieur. Les attaques se sont intensifiées. Différentes cultures sont touchées : chênes, rosiers, Amelanchier, Spiraea thunbergii, Hydrangea macrophylla, Lagerstroemia, Prunus lusitanica, Delphinium.
Evaluation du risque : l’oïdium prolifère avec la rosée due à
l’amplitude thermique entre le jour et la nuit. A surveiller.
Prophylaxie : parmi les mesures de préventions culturales, proscrire l’excès d’engrais azoté, le confinement de végétation et distancer suffisamment les plantations.
Marssonina rosae
La maladie des taches noires a encore progressé sur une culture
de rosier en extérieur. Cette maladie, très fréquente, se développe
sur les feuilles et provoque des taches brun pourpré à noire.
Plomb parasitaire en pépinières fruitières, notamment
sur Prunus avium, pêcher, prunier, abricotier et même
sur rosier
.
Due à Chondrostereum purpureum, cette maladie est caractérisée
par l’aspect gris métallisé des feuilles. Le champignon se développe dans les tissus ligneux et émet des toxines qui provoquent
l’aspect plombé du feuillage.
Evaluation du risque : les périodes humides et pluvieuses sont
favorables au développement des fructifications, à la production
de spores et à leur germination. Le champignon responsable pénètre généralement dans le végétal par des blessures, points de
greffe ou plaies de taille. Le plomb parasitaire entraîne progressivement la mort de l’arbre. Les plants atteints doivent être arrachés.
FREDON PdL
Evaluation du risque : les périodes pluvieuses et les températures
douces à élevées (15°C à 27°C) sont favorables à ce champignon. A surveiller.
Plomb parasitaire sur prunier entraînant une
teinte argentée du feuillage
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BSV ORNEMENT–N°08 DU 08 JUILLET 2016
 Autres maladies en bref
Mildiou sur Basilic.
Dernière
Mildiou sur Coreopsis.
minute
E
cophytoPic, portail de la protection intégrée des cultures
EcophytoPIC a pour objet de sensibiliser les professionnels du secteur agricole au sujet de la Protection Intégrée des Cultures et ainsi
de faire évoluer les pratiques vers une réduction de l’utilisation des
produits phytopharmaceutiques.
tions de surveillance, les outils d’aide à la décision, la formation,
l’innovation et la recherche et enfin et surtout la notion d’approche
système. Il est de plus un point de référence de la réglementation
et des impacts des pratiques.
Constitué d’une plateforme transversale dénommé "Portail" et de
six plateformes filière, ce portail aborde non seulement les méthodes de lutte en protection des cultures mais également les no-
Accéder au portail Ecophytopic en cliquant sur la vignette ci-dessus
Accéder directement à la plate-forme dédiée à la filière Horti-PPAM, en
cliquant sur la vignette ci-dessus
RESEAU DE SURVEILLANCE BIOLOGIQUE DU TERRITOIRE 2016
PAYS DE LA LOIRE
Ce bulletin est produit à partir d’observations ponctuelles. S’il donne une tendance de la situation sanitaire
régionale, celle-ci ne peut être transposée telle quelle à la parcelle. La CRAPL dégage donc toute responsabilité
quant aux décisions prises par les agriculteurs pour la protection de leurs cultures et les invite à prendre ces
décisions sur la base des observations qu’ils auront réalisées sur leurs parcelles.
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