Assessment of ova collection with or without centrifugation after ovarian fr

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Évaluation de la collecte d'ovules avec ou sans centrifugation après le découpage
des ovaires pour la fécondation in vitro de spécimens d'abattoir de brebis Awassi
irakiennes.
Article dans Iraqi Journal of Veterinary Sciences - Octobre 2022
DOI: 10.33899/IJVS.2022.132707.2122
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U. D. Université
Naoman de Mossoul
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Revue irakienne des sciences vétérinaires, Vol. 36, No. 4, 2022
(967-972)
Revue irakienne des sciences
vétérinaires
www.vetmedmosul.com
Évaluation de la collecte d'ovules avec ou sans centrifugation après le
découpage des ovaires pour la fécondation in vitro de spécimens d'abattoir
de brebis Awassi irakiennes.
F.F. Mustafa
et U.T. Naoman
Département de chirurgie et de thériogénologie, Collège de médecine vétérinaire, Université de Mossoul, Mossoul, Irak
Informations sur l'article
Historique de l'article :
Reçu le 10 janvier 2022
Accepté le 26 juin 2022
Disponible en ligne le 4 septembre
2022
Mots-clés :
Tranch
er les
ORC
Oocyte
Awassi
Correspondance :
F.F. Mustafa
[email protected]
Résumé
Cette étude vise à déterminer la méthode la plus appropriée pour la collecte d'ovocytes
en fonction de leur qualité et de leur quantité par tranchage avec ou sans centrifugation et
à tester sa capacité à produire des embryons in vitro (IVP). L'ovule a été prélevé dans la
salle d'insémination artificielle.
Laboratoire, Collège de médecine vétérinaire, Université de Mossoul, ville de Mossoul entre
1/9/2020 au 1/11/2020. Au total, vingt femelles dont les organes génitaux ont été abattus
dans un abattoir local ont été collectées. La fécondation in vitro a été réalisée selon les
protocoles d'un laboratoire privé (laboratoire Soran lié à l'hôpital privé Soran pour les
maladies de la fertilité et le transfert d'embryons) dans la ville d'Irbil/Irak. Les résultats de
l'étude ne montrent pas de changements significatifs entre les deux méthodes dans
l'extraction des ovocytes de grade A. Cependant, la méthode de tranchage, qui était
33,60% de la récupération des ovules que la centrifugation techniques ORC 22,73%, la
méthode ORCs en présence de Grade C ovocyte plus élevé que la méthode ORCs qui
étaient 29,09 et 20,00%, respectivement aussi les résultats de la fécondation in vitro
montrent que la méthode de tranchage produit embryon en pourcentage élevé 45,4% que
la méthode ORCs 25,0%. Nous pouvons conclure que la meilleure méthode de collecte
d'ovocytes était la méthode de tranchage et que cette méthode aboutit à la meilleure
production d'embryons lors de la fécondation in vitro par rapport à la méthode ORCs.
DOI : 10.33899/IJVS.2022.132707.2122, ©Auteurs, 2022, Collège de médecine vétérinaire, Université de Mossoul.
Il s'agit d'un article en libre accès sous licence CC BY 4.0 (http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/).
espèces sauvages menacées meurent soudainement, il est vital
d'avoir recours à l'utilisation post mortem des ovocytes (4).
Introduction
L'insémination artificielle a été la première grande
biotechnologie utilisée pour améliorer la reproduction et la
génétique des animaux d'élevage, et elle a ouvert la voie à
des innovations ultérieures telles que la cryoconservation,
le sexage des spermatozoïdes, la gestion du cycle œstral et
la synchronisation des ovules, la récolte d'embryons et le
clonage (1,2). Les ovocytes générés à partir d'ovaires
d'abattoirs constituent une source peu coûteuse de gamètes
animaux qui peuvent être utilisés pour développer des
embryons à grande échelle (3). Lorsque les gamètes
animaux ne sont pas disponibles, par exemple lorsque des
animaux d'élevage génétiquement importants ou des
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des perturbations physiologiques telles que des
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anomalies de la voie génitale (5), le moment de
l'ovulation (6), des questions de santé publique (7), qui
représentent un autre type de défis en matière de
collecte de gamètes (8,9). Le prélèvement d'ovules
(OPU) ou la collecte d'ovules chez les ovins a été
réalisé de différentes manières, bien que le tranchage
soit l'approche la plus efficace pour la collecte
d'ovocytes à partir d'échantillons d'abattoir (10).
Plusieurs facteurs influencent l'estimation des ovules
collectés, notamment les quantités d'ovocytes, leur
qualité, le temps écoulé après l'abattage, la présence du
corps jaune CL et l'indice de maturation in vitro (IVI).
Des recherches antérieures ont montré que la procédure
de tranchage produit plus d'ovocytes de meilleure
qualité que les autres méthodes (11). État de fertilité de
l'animal, stimulation par des gonadotrophines
exogènes, matériel de collecte, milieux de culture pour
la collecte et la maturation pendant la manipulation in
vitro, et additifs aux milieux de manipulation.
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suspendu dans un milieu de Becker contenant du PBS avec des
traitements antifongiques et antibiotiques à température
ambiante. Chaque ovaire a été saisi ou arraché avec une pince
artérielle légèrement au-dessus de la préparation de la solution
de Becker. Les ovaires enlevés sont coupés plusieurs fois,
principalement au-dessus des follicules, pour inclure les
ovocytes dans le liquide folliculaire,
En conséquence, certains chercheurs pensent que la
centrifugation après le tranchage permet d'obtenir des
ovules de meilleure qualité avec un taux efficace de clivage
et de développement des blastocystes, alors qu'aucune
différence n'a été enregistrée en ce qui concerne le taux de
reprise méiotique (14). Un autre chercheur qui a soutenu
cette notion suggère que la centrifugation après le tranchage
lors de la collecte d'ovules de brebis en contre-saison donne
les meilleurs résultats pour la collecte d'ovules (15).
L'objectif de cette étude est de déterminer la méthode la
plus appropriée pour la collecte d'ovocytes en fonction de
leur qualité et de leur quantité par la méthode du tranchage
avec ou sans centrifugation et de tester son aptitude à la
production d'embryons in vitro (PIV).
Matériels et méthodes
Lieu de l'étude
L'ovule a été collecté et traité dans le laboratoire
d'insémination artificielle, Collège de médecine vétérinaire,
Université de Mossoul, ville de Mossoul (les coordonnées
de la ville s'étendent entre 2°36′ de longitude et 43°7′ de
latitude) entre le 1/9/2020 et le 1/11/2020, Les organes
génitaux des brebis abattues dans un abattoir local ont été
collectés dans les deux heures suivant l'abattage, les
échantillons ont été lavés avec une solution saline normale
et des antibiotiques et transférés dans une boîte réfrigérée.
La fécondation in vitro a été réalisée dans la ville
d'Irbil/Irak, conformément aux directives d'un laboratoire
privé (laboratoire Soran de l'hôpital privé Soran pour les
maladies de la fertilité et le transfert d'embryons).
Prélèvement d'ovocytes
Des ciseaux propres ayant été rincés plusieurs fois avec
de l'eau distillée puis de la solution saline normale ont été
utilisés pour retirer fermement et doucement les
échantillons ovariens des tissus environnants, comme décrit
dans Abdul hafedh (15). Water puis avec une solution
saline normale ont été utilisés pour retirer fermement et en
douceur les échantillons ovariens des tissus environnants,
comme décrit dans Abdul hafedh (15). Avant le traitement,
les échantillons ont été séparés en deux séries de 20 ovaires,
avec un processus de collecte d'ovocytes effectué dans des
circonstances aseptiques dans un Becker contenant une
solution saline de tampon phosphate (PBS) avec une
solution antibiotique pendant 5-10 minutes à température
ambiante (RT). L'opération a été réalisée dans des
conditions aseptiques, sous une hotte bien stérilisée, afin
d'éviter la pollution de l'air ou d'autres environnements
pollués qui auraient pu influencer les résultats finaux. La
procédure suivante a été utilisée pour récupérer les
ovocytes.
Tranchage des ovaires pour le prélèvement d'ovocytes
L'échantillon d'ovaire a été nettoyé avec de l'eau
distillée et une solution saline normale avant d'être
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36, No. 4,de
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avantVol.
l'utilisation
l'héparine dans une boîte de Pétri
puis trempé dans Becker pour s'assurer que tout le
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spéciale.
Les
spermatozoïdes
dilués doivent donner 1-2*106
matériel a été déversé dans le milieu (16).
spermatozoïdes (17). Les gamètes ont été mélangés et
infectés. Les échantillons ont été incubés pendant 28 à 30
Récupération des ovules par centrifugation (ORC) après
heures à 5 % de CO2 à 38,5 °C et 90 % d'humidité relative.
tranchage
Les milieux de fécondation comprenaient de la LH, de la
Les ovaires ont été découpés en tranches, et des
FSH, de la BSA, des antibiotiques et des antifongiques.
tranches supplémentaires et plus profondes ont été
réalisées pour obtenir plus d'ovocytes (post-découpage)
(14). Le liquide total dans une boîte de Pétri a ensuite
été filtré à travers un filtre en polypropylène et
centrifugé à 1500 C/ minute pendant deux minutes, en
jetant le surnageant et en examinant le précipité à la
recherche d'œufs (17).
Évaluation des ovocytes
En ce qui concerne la disposition des cellules
cumulus entourant les ovocytes et l'état du cytoplasme,
les méthodes de collecte des ovocytes ont été soumises
à un contrôle de qualité tel que décrit par Rahman et al.
(18). Les ovocytes reçoivent une excellente note ou
une note A lorsqu'ils présentent de nombreuses
couches de cellules cumulus et un cytoplasme
translucide, homogène et uniforme. Les ovocytes
reçoivent une note passable ou grade B lorsqu'ils
présentent des cellules cumulus moins compactes,
transparentes, moins homogènes (quelques granules
peuvent être présents) et uniformes. Les ovocytes
présentant un cumulus peu compact ou absent (dénudé)
et un cytoplasme noir et granuleux sont classés comme
médiocres ou de grade C. Après avoir classé et évalué
la qualité des ovocytes collectés, les ovocytes ont été
transférés dans une autre boîte de Pétri contenant du
milieu PBS tel que préparé, en réexaminant les boîtes
après ces transports d'ovules, et en confirmant que tous
les ovules sélectifs ont été transportés par aspiration à
l'aide d'une micropipette automatisée. Les ovules ont
été classés sur des papiers et leur nombre a été noté
(figure 1).
Maturation des ovocytes
La procédure de maturation a été réalisée
uniquement sur des ovocytes de bonne qualité (grade
A), et le milieu de maturation a été créé selon les
protocoles du laboratoire. Le milieu de maturation
(MM) a été équilibré dans un incubateur à CO2 pendant
deux heures avant d'ajouter les ovocytes ; 5-6 ml de la
solution précédente ont été placés dans une boîte de
Pétri en verre, et les ovocytes ont été ajoutés plus tard.
Les ovocytes maturés ont été observés au microscope
inversé et le degré de maturation a été mesuré comme
indiqué par Wani et al. (19). Le même milieu de
maturation a été utilisé pour laver plusieurs fois les
ovocytes classés et choisis, et le nombre d'ovocytes
maturés a été compté et enregistré.
Fécondation in vitro et production d'embryons
La combinaison initiale des spermatozoïdes de
bélier épididymaire capacités provenant d'échantillons
abattus avec la boîte de Pétri contenant les ovocytes
développés a été manipulée et capacitée deux heures
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les préparations. Les embryons développés doivent être
inspectés et examinés toutes les 24 heures jusqu'à 72 heures
d'incubation ; les embryons qui ne montrent aucun signe de
progrès doivent être retirés, et tous les embryons développés
doivent être évalués, tous les résultats étant consignés.
L'étude montre qu'il n'y a pas de changements significatifs
entre les deux méthodes dans l'extraction des ovocytes de
grade A, mais la méthode de tranchage a enregistré un
pourcentage plus élevé de données qui étaient 33,60% que
les techniques ORCs 22,73%, les ovocytes de grade C
ORCs plus élevés que la méthode de tranchage qui étaient
29,09 et 20,00% respectivement.
Fécondation in vitro
Un total (n=11) d'ovules matures a été choisi en
fonction de leur degré et de leur bonne maturation (Grade
A) à partir de la méthode de tranchage, et huit ovules
choisis à partir des ORC (n=8) matures ont été fécondés.
Les résultats de la fécondation in vitro ont été résumés dans
le tableau 2, qui déclare que la méthode de tranchage
produit des embryons dans un pourcentage élevé de 45,4%
par rapport à la méthode ORCs, 25% (Figure 2).
Figure 1 : (A) ovocyte de bon grade (grade A) ; (B) ovocyte
de grade moyen (grade B) ; (C) ovocyte de mauvais grade
(grade C) au microscope inversé ICSI X40.
Analyse statistique
Les résultats des expériences ont été exprimés en
moyenne + pourcentage. L'ANOVA a été utilisée pour
comparer les données distribuées (analyse de variance à une
voie). Le test de gamme multiple de Duncan a été utilisé
pour trouver des variances significatives. Sigma Stat a été
utilisé pour effectuer l'analyse statistique (18).
Résultats
Figure 2 : Rétrospective de la manipulation et de la maturation
des ovocytes :
(A) ovules entourés de spermatozoïdes ; (B) embryon après
30 heures de maturation montrent la première division de la
méiose et la présence de cellules de blastocystes.
Méthodes de collecte des ovules
Les données de comparaison entre les méthodes
d'extraction des ovules, qui étaient les méthodes de
tranchage et les méthodes ORC (tableau 1). Les données
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Tableau 1 : Classement des deux méthodes de collecte des ovules
TraitementsGradation de l'ovule
Méthode
Nombre total
Grade A
%
Note B
%
d'ovules
Trancher
155
52
33.60a
72
46.45a
a
CCO
220
50
22.73
106
48.18a
Les lettres différentes dans les mêmes colonnes renvoient à des différences significatives (P<0,005).
Grade C
%
31
64
20.00a
29.09b
Tableau 2 : Pourcentage de développement embryonnaire après fécondation et maturation des ovules avec deux méthodes de
collecte
Méthod
Ovule évalué (n)
e
d'incubation
(Grades)
Trancher
22
CCO
20
ovule fécondé et maturé (n)
11
8
TraitementsDéveloppement embryonnaire
A (n)
%
B (n)
%
C (n)
5
2
45.4
25.0
0
0
0
0
0
1
72
%
0
12.5
la force de centrifugation peut être contrôlée pour minimiser
l'effet nocif des ORC (800 cycles/minute pendant trois minutes
dans la centrifugation de refroidissement.
Les données de la présente étude font état d'un pourcentage
significativement plus élevé de production d'embryons après 3072 heures d'incubation pour les méthodes de tranchage. Ces
résultats sont en accord avec les rapports précédents (25) et cet
accord peut être lié aux similitudes des conditions in vitro,
comme les procédures,
Discussion
L'objectif principal de cette étude était d'évaluer la
méthode du tranchage et la collecte d'ovules après
tranchage par centrifugation (ORC) et de les comparer afin
de déterminer la meilleure méthode de fécondation in vitro
des spécimens d'abattoir pour les brebis Awassi irakiennes,
sur la base de stratégies simples de fécondation, de
maturation et de production d'embryons. Les résultats de
cette enquête ont démontré que le tranchage, plutôt que les
ORC, était l'approche optimale pour obtenir des ovocytes
de bonne qualité (grade A). La raison de la supériorité de la
méthode du tranchage peut être liée à la facilité de la
technique, qui n'a pas conduit à un jugement final erroné
des ovules collectés (3,19-21).
Cette étude a montré que la récupération des ovules par
centrifugation selon la méthode ORCs montre un nombre
plus faible d'ovocytes de grade A et un nombre élevé
d'ovocytes de grade B et de grade C. Ces données étaient en
accord avec des études antérieures (12,22), tandis que la
présente étude était en désaccord avec une autre étude de
Dadashpour et al. Ces données étaient en accord avec des
études antérieures (12,22), alors que la présente étude était
en désaccord avec une autre étude de Dadashpour et al. (23)
qui suggère que la méthode ORCs peut collecter le meilleur
nombre d'ovules et de grades, en particulier chez les
animaux non saisonniers. Cette incongruité peut s'expliquer
par le fait que la technique ORCs comporte une
centrifugation. Ce processus a des effets néfastes sur
l'ovule. Il entraîne également la perte des cellules de la
granulosa qui entourent l'ovule et qui sont considérées
comme le meilleur indicateur d'un bon ovule (grade A),
ainsi que l'allongement de la cellule de l'ovule et la
déformation de sa forme standard. Ces deux changements
principaux affectent l'efficacité de l'ovule et influencent la
capacité des ovules à la méiose pendant la fécondation in
vitro (24). D'autre part, un autre article (12) a suggéré que
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La FIV est liée à la saisonnalité
et aux circonstances
d'incubation, mais nous ne sommes pas d'accord avec
d'autres articles (26). L'efficacité de la FIV liée aux
techniques de collecte des ovocytes, dans le cas de
l'ORC, selon Rahman et al. (27) qui expliquent que
même si l'ORC peut présenter certains inconvénients
comme l'élimination des cellules en colonnes autour de
l'ovule et les lésions des ovocytes en ce qui concerne la
fécondation in vitro, seul l'ovocyte de grade A est
utilisé pour la fécondation. Nous ne sommes pas
d'accord avec ces explorations car la technique ORCs
cause de graves dommages au niveau cellulaire ou un
choc aux ovocytes et aux cellules allongées de l'ovule.
Le fait qu'ils ne soient pas visibles au microscope ne
signifie pas qu'ils ne sont pas là, d'autre part : l'action
du métabolisme et des facteurs de croissance libérés
par les cellules du cumulus ont un impact significatif
sur les ovocytes et leur capacité à se développer
jusqu'aux stades embryonnaires ultérieurs. En outre, le
processus de fécondation entre les ovules et les
spermatozoïdes organise l'attraction cellulaire ou
l'attraction réciproque Abdulhafedh (15), Hashimoto et
al. (28)
Conclusion
Chez les brebis Awassi, la meilleure méthode de
collecte des ovocytes était la méthode du tranchage et
cette méthode aboutit à la meilleure production
d'embryons lors de la fécondation in vitro par rapport à
la méthode ORCs.
Remerciements
Les auteurs sont très reconnaissants à l'Université
de Mossoul / Collège de médecine vétérinaire pour les
installations mises à leur disposition, qui ont permis
d'améliorer la qualité de ce travail. Ils remercient
également le Dr Khalida Younis pour son travail
d'assistante dans la préparation des spermatozoïdes.
Conflit d'intérêts
Il n'y a pas eu de conflit d'intérêts.
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20. Hernández P, Ortiz JE, Rodríguez F, Ducolomb JL, Reyes Y,
Betancourt F, Casas M, Heuze E, Kjelland Y, Romo S. Use of IVF
and ET in Mexican Criollo Sheep (Ovis aries) : Transfert d'embryons
immédiat et différé. Adv Reprod Sci. 2016;4:8-16. DOI :
10.4236/arsci.2016.41002
21. SigmaStat Jandel scientific software V3.1. Logiciels statistiques.
2005.
22. Pawshe CH, Totey SM, Jain SK. A comparison of three methods of
recovery of goat oocytes for in vitro maturation and fertilization.
Theriogenol.
1994;42(1):117-125.
DOI
:
10.1016/0093691x(94)90668-9
23. Wang Z, Yu S, Xu Z. Effects of collection methods on recovery
efficiency, maturation rate and subsequent embryonic developmental
competence of oocytes in cow. Asian Aust J Anim Sci.
2007;20(4):496500. DOI : 10.5713/ajas.2007.496
24. Horne R, Bishop CJ, Reeves G, Wood C, Kovaces GT. Aspiration
d'ovocytes pour la fécondation in vitro. Human Reprod. 1996;2(1):7785. DOI : 10.1093/humupd/2.1.77
25. Abd Al-Hafedh SO, Mohmmed TR, Al-Timimi H. Effet des méthodes
de récupération des ovocytes bovins sur la maturation in vitro. AlAnbar J Vet Sci. 2017;10(1):21-24. [disponible à l'adresse]
26. Dadashpour N, Zeinoaldini S, Kohram H. A novel ovine oocyte
recovery method from slaughterhouse material. Small Ruminant Res.
2012;106(2-3):168-172. DOI: 10.1016/j.smallrumres.2012.02.005.
27. Shimada M, Yanai Y, Okazaki T, Noma N, Kawashima T, Mori T,
Richards JS. Les fragments de hyaluronane générés par la
hyaluronidase sécrétée par les spermatozoïdes stimulent la production
de cytokines/chimiokines via les voies TLR2 et TLR4 dans les
cellules du cumulus des COC ovulés, ce qui peut favoriser la
fécondation.
Devel.
2008;135(11):2001-2011.
DOI
:
10.1242/dev.020461
28. Hashimoto S, Saeki K, Nagao Y, Minami N, Yamada M, Utsumi K.
Effects of cumulus cell density during in vitro maturation on the
developmental competence of bovine oocytes. Theriogenol,
1998;49(8):1451-1463. 10.1016/S0093-691X(98)00091-0.
Références
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
10.
11.
12.
13.
14.
15.
16.
17.
18.
19.
Vishwananath R. Insémination artificielle : l'état de l'art. Theriogenol.
2003;59(2):71-48. DOI: 10.1016/S0093-691X(02)01241-4
Foote RH. L'histoire de l'insémination artificielle : notes sélectionnées
et
notables.
J
Anim
Sci.
2008;80(2):1-10.
DOI:
10.2527/animalsci2002.80E-Suppl_21a
Sianturi RG, Thein M, Wahed H, Rosnina Y. Effect of collection
technique on yield of bovine oocytes and the development potential of
o o c y t e s from different grades of oocytes. JITV. 2002;7(3):188193. DOI : 10.14334/jitv.v7i3.293
Jyotsana B, Krishnappa B, Bahire B, Meena AS, Kumar D, Naqvi S,
Kumar S. In vitro fertilization of sheep oocyte with Patanwadi Ram
semen. Indian J Small Ruminant. 2019;25(1):41-44. DOI:
10.5958/0973-9718.2019.00002.3
Mohamed ZA. Une étude des anomalies pathologiques des organes
génitaux chez les brebis à Duhok, Irak. Iraqi J Vet Sci.
2021;35(3):421-427. DOI: 10.33899/ijvs.2020.126939.1421
Hasson TA, Rahaway MA. Prédiction de la période d'ovulation chez
les juments en œstrus par différentes méthodes. Iraqi J Vet Sci.
2022;36(3):621-626. DOI: 10.33899/ijvs.2021.131093.1922
Alameen EK, Dahi MO. Abortion in ewes in Nineveh governorate,
Iraq : A systematic review and meta-analysis. Iraqi J Vet Sci.
2022;36(3):681-688. DOI: 10.33899/ijvs.2021.131343.1942
Ahmadi E, Nazari H, Davoodian N, Kadivar A. Feasibility of longterm ovine epidymal spermatozoa preservation in a simple extender
containing egg yolk. J Livestock Sci Technol. 2020;8(1):60-67. DOI:
10.22103/JLST.2020.14524.1284
Naoman UT, Taha MB. Effet de l'hémi-castration sur la croissance
testiculaire et les caractéristiques séminales des chèvres mâles
irakiennes. Iraqi J Vet Sci. 2010;24(2):71-74. DOI :
10.33899/ijvs.2010.5589
Mahdi SW. Évaluation de différentes méthodes de collecte d'ovocytes
bovins, de maturation et de fécondation in vitro de spécimens
d'abattoir. Iraqi J Vet Sci. 2017;31(1):55-65. DOI :
10.33899/ijvs.2017.126711
Mahdi SW, Al-shamary MS, Jaafir ZS. Rôle des spermatozoïdes dans
la stabilité du PH de l'environnement de l'épididyme caudal. Iraqi J
Vet Sci. 2019;33(1):111-116. DOI: 10.33899/ijvs.2019.125511.1033
Wall RJ, Pursel VG, Hammer RE, Brinster RL. Développement d'ovules
de porc qui ont été centrifugés pour permettre la visualisation des
pronucléi et des noyaux. Biol Reprod. 1985;32:645-651. DOI:
10.1095/biolreprod32.3.645
Rodriguez C, Anel L, Alvarez M, Anel E, Perez-holanda JC,
Chamorrow CA, Paulina D. Ovum pick-up in sheep : A comparison
between different aspiration devices for optimal oocyte retrieval. Rep
Dom. 2006;41(2):106-13. DOI: 10.1111/j.1439-0531.2006.00648.x
Davachi ND, Shahneh AZ, Kohram H, Zhandi M, Dashti S, Shamsi H,
Moghdam R. In vitro ovine embryo production : The study of seasonal
and oocyte recovery method effects. Iran Red Crescent Med J.
2014;16(9):1-6. DOI : 10.5812/ircmj.20749
Abd Al-Hafedh SO. Fécondation in vitro d'ovocytes bovins [mémoire
de maîtrise]. Anbar : Collège d'agriculture ; Université d'Anbar, Irak ;
2017. [disponible à l'adresse].
Abid M, Muhammad A, Sayed M, Muhammad A, Syed M.
Maturation in vitro et fertilisation des ovocytes de buffle : l'effet de la
récupération et des méthodes de maturation. Turk Jet Anim Sci.
2011;35(6):381-386. DOI : 10.3906/vet-0812-17
Mustafa FF, Naoman UT. Étude comparative de l'utilisation de quatre
types de jaune d'œuf aviaire sur le stockage réfrigéré des
spermatozoïdes épididymaires chez les béliers awassi (Ovis aries). J
App Vet Sci. 20211;4(6):46:50. DOI: 10.21608/javs.2021.88532.1096
Rahman AA, Abdullah RB, Wan-Khadijah WE. Maturation in vitro
des ovocytes, en particulier chez la chèvre : A Review. Biotechnol.
2008;7:599-611. DOI: 10.3923/biotech.2008.599.611
Wani AR, Khan MZ, Sofi KA, Malik AA, Lones FA, Bhat FA. Effet
de la taille folliculaire sur la maturation in vitro, la fertilisation et la
culture des embryons de moutons. Iranian J Vet Res. 2013;14(4):299304. [disponible à l'adresse].
‫تقييم جمع البويضات مع الطرد المركزي أو بدونه بعد تقطيع المبيض‬
‫ألغراض التلقيح في المختبر لعينات المجزرة المذبوحة للنعاج العواسية‬
‫العراقية‬
‫فاتن فاضل مصطفى وعدي طلعت نعمان‬
‫ جامعة‬،‫ كلية الطب البيطري‬،‫ف ر ع ا ل ج راحة وعلم تناسل الحيوان‬
‫ العراق‬،‫ الموصل‬،‫الموصل‬
‫الخالصة‬
‫الهدف من هذه الدراسة األنسب لجمع البويضات اعتمادا على نوعيتها وكميتها عن طريق‬
‫تم جمع البويضات في مختبر‬. ‫طريقة مع أو بدون الطرد وإثبات قدرتها على األجنة في المختبر‬
‫التلقيح الصناعي بكلية الطب البيطري جامعة‬
‫ تم جمع ما‬.2020/11/1 ‫ الى‬2020/9/1 ‫الموصل مدينة الموصل خالل الفترة من‬
‫مجموعه عشرين جهاز تناسلي انثوي ذبحت في مسلخ محلي وتم إجراء اإلخصاب خارج‬
‫الجسم وفق بروتوكوالت المختبر الخاص (مختبر سوران التابع لمستشفى سوران الخاص‬
‫قأظهرت نتائج الدراسة‬. ‫العرا‬. ‫ألمراض الخصوبة ونقل )األجنة في مدينة أربيل‬
‫عدم وجود تغييرات معنوية بين طريقتين في استخراج من الدرجة أ ولكن طريقة التقطيع كانت‬
‫ من استخالص البويضات بالطرد‬٪6033. ‫اعلى‬
974
‫‪Revue irakienne des sciences vétérinaires, Vol. 36, No. 4, 2022‬‬
‫)‪(967-972‬‬
‫جمع البويضات بالطرد المركزي والتي بلغت ‪ %25.0 %12.5‬على التوالي ‪.‬يمكن‬
‫أن نستنتج ان أفضل طرق جمع البويضات هي طريقة التقطيع وهذه الطريقة إلى إنتاج أفضل‬
‫أللجنة أثناء اإلخصاب في‬
‫المختبر عند مقارنتها بطريقة استحصال البيوض بالطرد ‪.‬المركزي‬
‫المركزي ‪ ،٪7322.‬البويضات من الدرجة ج كانت أعلى في طريقة‬
‫جمع البويضات بالطرد المركزي من طريقة التقطيع حيث كانت ‪ 29.59‬و ‪20.00٪‬على‬
‫التوالي ووجدت الدراسة أيضا فيما يخص األجنة في المختبر أن طريقة تنتج أجنة بنسبة اعلى‬
‫‪ ٪445.‬من طريقة‬
‫‪975‬‬
‫‪Voir les statistiques de‬‬
‫‪publication‬‬