Diaporama Christophe Clément

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COLLOQUE BIOCONTROLE
BIOCONTROLE >> 8
8 FEVRIER
FEVRIER 2016
2016 >> NANCY
NANCY
Stratégies alternatives de
protection de la vigne contre les
maladies fongiques
Pr Christophe CLÉMENT
Université de Reims Champagne Ardenne
Unité de Recherche Vignes et Vins de Champagne
SFR Condorcet – FR CNRS 3417
BP 1039, 51687 Reims Cedex 02
[email protected]
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Pesticides : un vrai problème
 France
▪ 100 000 tonnes de produits phytosanitaires
▪ 1er pays consommateur en Europe
 Santé des Agriculteurs
▪ maladies induites par l’utilisation des pesticides
▪ évolution des technologies de diffusion
 Exemple de la viticulture
▪ 2 à 3 % des surfaces cultivées en France
▪ 30 à 50 % des pesticides utilisés
▪ pesticides utilisés en viticulture : 50 % fongicides
(35 % herbicides, 10 % insecticides, 5 % anti-limaces, raticides…)
▪ 15 à 25 traitements
 Qualité des eaux
▪ pesticides utilisés il y a 30 ans arrivent dans les nappes phréatiques
▪ qualité de l’eau du robinet
▪ inertie du système (30 ans)
 Directives nationales et européennes
▪ suppression de molécules à utilisation phytosanitaire
▪ décrets Septembre 2006
▪ Grenelle de l’environnement (Ecophytovigne 2018)
 Technologies non acceptées
▪ organismes génétiquement modifiés non acceptés
▪ perte de la confiance en la science
(sang contaminé, hormone de croissance, …)
 Suppression de certains traitements
▪ arsénite de soude interdit (Novembre 2001)
maladies du bois de la vigne
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Stratégies alternatives de lutte contre les maladies des plantes
Stimulation
des défenses des plantes
SDP
Pesticides
Pathogène
 BIOCONTROLE
: 2 approches complémentaires
▪ ELICITATION : utilisation de molécules stimulatrices des défenses
▪ LUTTE BIOLOGIQUE : utilisation de micro-organismes conférant à la
plante un certain niveau de protection
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Réactions de défense des plantes
contre les stress
biotiques et abiotiques
Personnels
50 personnes environ
Permanents
Victime
Colza, blé, orge, tomate, vigne
Arabidopsis
▪ Changement climatique
• 22 Enseignants Chercheurs
(5 PR, 16 MCU, 1 PRAG)
• 1 IgR, 1 ETP IgE
(3 personnes)
• 4 Personnels Techniques
Non permanents
• 3 IgE sous contrat
• 1 Secrétaire (fonds propres)
Maladies
• 6 post doctorants
• 8 doctorants (+ 2 à venir)
• 3 masters 2
Bad boys
Héros
Parasites fongiques
Micro-organismes, éliciteurs
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Utilisation de micro-organismes : LUTTE BIOLOGIQUE
Maladie
-
Pathogènes
-
Antibiotiques
+
Protection
Micro-organismes
bénéfiques
Pénétration dans
la plante et SDP
BIOCONTRÔLE
Sécrétion d’éliciteurs
ELICITATION
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Burkholderia phytofirmans souche PsJN
• isolée de racines d’oignon (Frommel et al. 1991 & 1993)
• associée à de multiples plantes cultivées herbacées
(Frommel et al. 1991 & 1993, Pillay et Nowak 1997, Nowak 1998,
Sessistch et al. 2005, Salles et al. 2006)
• stimulateur de croissance (PGPR)
• protection contre certaines maladies
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Protection
Contournement des défenses
Colonisation des tissus
Pénétration dans les tissus
Colonisation de la surface racinaire
Attraction des bactéries
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Nb bactéries par
capillaire (X 105)
Attraction de la bactérie
7
6
5
4
3
2
1
0
• Exsudats racinaires
Les racines de vigne secrètent des métabolites dans le sol, notamment :
• sucres (glucose, fructose, saccharose, …)
• acides organiques (acide malique, …)
• acides aminés (alanine, leucine, …)
Glucose
0
Nb bactéries par
capillaire (X 105)
1
10
100
Acide malique
7
6
5
4
3
2
1
0
0
1
10
100
Nb bactéries par
capillaire (X 105)
Alanine
14
10
Burkholderia phytofirmans strain PsJN
est attirée par les exsudats racinaires
Identification des métabolites
en cours
6
2
0
0
1
10
Concentrations (mM)
100
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Colonisation de la surface racinaire et pénétration dans la plante
• Colonisation
▪ Multiplication
5 à 6 semaines
▪ Formation de biofilm
Bactéries retrouvées
dans tous les organes
• Pénétration
▪ Secretion d’enzymes
polygalacturonase
• Diffusion
▪ Rejoint le xylème
Gfp
transforme
d bacteria
endoglucanase
Propagation de la bactérie
par les vaisseaux de xylème
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Biostimulation de la croissance
Biomasse
+
Photosynthèse
Poids (g)
2
-
1,5
O2 production
CO2 fixation
0.30a
3.15a
(nmol.min-1.cm-2)
1
Témoin
PsJN
BIOSTIMULANT
contrôle
bactérisées
0,5
control
(26°C)
bacterised
(26°C)
0
biomasse parties tiges
totale aériennes
feuilles racines
0.65c
(mol.m-2.s-1)
3.98c
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Mécanismes de protection
Premiers éléments de compréhension
Antibiose
Bad boy
Botrytis cinerea
Héros
B. phytofirmans
st. PsJN
Stimulation des
défenses
Victime
Vitis vinifera cv. Chardonnay
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Mécanismes de protection
Antibiose directe
Nb bactéries par capillaire
(X 105)
6
5
4
3
2
1
0
b
*
a
Témoin
attraction
Botrytis cinerea
Croissance de B. cinerea (cm²)
35
Botrytis cinerea
B.c./B.p. PsJN 0H
30
B.c./B.p. PsJN 72H
25
Composés actifs
20
mort du mycelium
72 h
sécrétion
15
10
Nature de ces composés ?
5
0
0
24
48
Temps (h)
72
96
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pH extra-cellulaire
Contournement des défenses
1h
5,9
24h
5,6
5,3
PsJN
5
H2O2 rlu
4,7
14000
0
12000
60
120 180 240
300 360
Temps (min)
10000
P.s.pisi
Mort cellulaire (DO 600 nm)
8000
témoin
6000
P. syringae pv. pisi
4000
B. phytofirmans PsJN
2000
E. coli
0,5
0,4
0,3
0
0
100
200
300
400
0,2
Temps (min)
0,1
P. syringae pv. pisi
• alcalinisation du milieu (2 phases)
• burst oxydatif (2 phases)
• mort cellulaire
B. phytofirmans
• alcalinisation du milieu (1 phase)
• pas de burst oxydatif
• pas de mort cellulaire
0
0
5
10
15
20
Temps (min)
25
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activité chitinase
Mécanismes de protection
Stimulation des défenses
mg product/min/g FW
8
7
*
6
control
bacterized
*
5
• protège la plante contre B. cinerea
• effet éliciteur
de la bactérie
4
3
2
*
1
0
racine
tige
feuille
activité β 1,3 glucanase activity
mg hydr. glucose/min/g FW
25
20
*
control
bacterized
15
+
+
+
-
+
10
5
Plants bactérisés
*
Témoins
0
racine
tige
*
feuille
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PR 6 : gène impliqué dans la régulation par l’acide jasmonique
BIG 102 : gène impliqué dans la régulation par la voie de l’acide salycilique
Inflorescences
Facteur d’induction
Facteur d’induction
PR6
30
bactérisation
racinaire
4
20
dans les
inflorescences
3
2
10
1
0
0
boutures
0
1
2
3
4
5
0
6
1
2
3
4
5
6
=> dans les inflorescences, régulation par la voie de l’acide jasmonique (ISR)
% inflo
nécrotiques
100
Racines
Facteur d’induction
témoin
bactérisé
témoin
bacterisé
50
BIG 102
5
Facteur d’induction
PR6
5
BIG 102
20
4
15
3
10
2
0
0
24
48
temps (hpi B. cinerea)
72
1
5
0
0
0
1
2
Temps (dpi)
3
4
0
1
2
3
Temps (dpi)
=> dans les racines, régulation par la voie de l’acide salycilique
4
5
6
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Mécanismes de protection
Stimulation des défenses
Potentialisation
bactérisé
témoin
600
relative gene expression
•
VvSTS
non-bacterisé
bacterisé
500
COR gene
SA pathway
400
300
JA pathway
200
100
PR proteins
0
24 h
48 h
72 h
2 wks
VvCBF4
230
x1,9
435
VvPAL
8,8
x4,7
41,4
VvSTS
151
x3,1
461
VvLox
1,6
x4,8
7,6
VvGluc
3
x2,6
7,7
VvChit4C
13
x3,1
40
VvChit1B
4,7
x2,5
11,7
• effet
potentialisateur de
la bactérie pour
l’induction des défenses
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Mécanismes de protection
Stimulation des défenses
•
Production d’H2O2
H2O2
(µmoles.g-1 MF)
non-bactérisé
bactérisé
10
b
8
c
b
c
b
c
H2O2: oxydant puissant
b
4
composé toxique
2
b
c
6
b
a a
a a
a
a
a a
a a
0
24 h
48 h
72 h
temps d’exposition
1 sem
2 sem
dans les plantes bactérisées :
• l’accumulation d’H2O2 se fait plus rapidement et plus fortement durant les 3
premiers jours => potentialisation du burst oxydatif
• la concentration d’H2O2 diminue après seulement 3 jours =>
potentialisation du processus de détoxification de l’H2O2
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Développement de Botrytis
Résistance induite par les bactéries autochtones
140000
120000
100000
80000
60000
40000
20000
0
Résistance foliaire
Réactions
de défense
12 Jours post-inoculation
Control
Traitement
indice de maladies (%)
Protection
20
Feuilles
a
16
b
12
b
bc
8
b
c
0
12
24
36
48
Accumulation de resvératrol
100
d
4
témoin
bactérisé
80
60
0
40
Au vignoble : 2 mois après application
racinaire, les bactéries sont effectives pour
contrôler B. cinerea au niveau foliaire et
baies.
20
Contamination de baies à maturation
0
Contamination Naturelle
Control
traitement
Baies Infectées (%)
Application des bactéries
au niveau du sol
en mai
10
a
0
Baies
8
2
0
b
b
c
24
36
48
Expression du gène GST
6
4
12
c
d
b
100
80
60
40
20
0
potentialisation
0
3
hpi
6
9
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Conclusions
=> Burkholderia phytofrimans souche PsJN
• stimule la croissance de la vigne (PGPR)
action sur la photosynthèse, potentiellement sur la synthèse d’auxine
• protège la vigne contre Botrytis cinerea par 2 voies différentes
▶
antibiose directe
▶
potentialisation du système de défense
• est capable d’activer des voies de défenses organe-dépendantes*
=> Biocontrôle possible au vignoble et au champ : il faut maintenant passer à la phase « D » de la « R&D »
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2016> >NANCY
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Remerciements
=> Tous les membres du laboratoire
=> Les organisateurs de la journée
=> VOUS pour votre attention !!!
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