inventaire des milieux humides - Coopérative de solidarité forestière

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Forêt habitée de La Doré
Rapport d’inventaire des milieux humides, aquatiques et
particuliers
CORPORATION DE
DÉVELOPPEMENT FORESTIER DE LA DORÉ
(CDFLD)
Novembre 2008
1
Équipe de travail
Supervision des travaux
Guillaume Maziade, biol.
Rédaction
Guillaume Maziade, biol.
Aude Gauthier Martel, tech. for. et faune
Candide Poirier, adj. adm.
Géomatique
Aude Gauthier Martel, tech. for. et faune
Guillaume Maziade, biologiste
Inventaire terrain
Aude Gauthier Martel, tech. for. et faune
Michaël Gauthier, tech. patrimoine et faune
Guillaume Maziade, biol.
CDFLD inc.
4731, rue des Peupliers, c.p.21
La Doré (Québec)
G8J 1E7
Téléphone : 418-256-3293
Fax : (418) 256-8292
www.cdfld.qc.ca
2
TABLE DES MATIÈRES
1. INTRODUCTION .......................................................................................................... 7
2. MILIEUX HUMIDES .................................................................................................... 9
2.1 Mise en contexte ....................................................................................................... 9
2.2 Classification des milieux humides ........................................................................ 11
2.3 Plan de sondage initial ............................................................................................ 14
2.4 Méthode d’échantillonnage..................................................................................... 16
2.4.1 Identification du milieu.................................................................................... 16
2.4.2 La Faune........................................................................................................... 17
2.4.3 La flore............................................................................................................. 17
2.4.4 La physico-chimie............................................................................................ 18
2.5 Résultats et discussion ............................................................................................ 19
2.5.1 Modification du plan de sondage initial........................................................... 19
2.5.2 La Faune........................................................................................................... 24
2.5.3 La flore............................................................................................................. 25
2.5.4 Espèces fauniques et floristiques à statut particulier particulières
(CREDD, 2007) ........................................................................................................ 25
2.5.5 La physico-chimie............................................................................................ 25
2.5.6 Indice de biodiversité...................................................................................... 28
2.5.7 Les types de milieux humides de la Forêt habitée de La Doré ....................... 32
2.6 Conclusion .............................................................................................................. 33
3. MILIEUX AQUATIQUES ........................................................................................... 36
3.1 Mise en contexte ..................................................................................................... 36
3.2 Les tributaires des rivières à ouananiches............................................................... 37
3.2.1 Méthode d’échantillonnage (Annexe 4)........................................................... 39
3.2.1a) Données physico-chimiques ................................................................. 39
3.2.2 Résultat et discussion....................................................................................... 41
3.3 Inventaire des lacs de faille..................................................................................... 43
3.3.1 Méthodologie (Annexe 6) ................................................................................ 45
3.3.1 a) Données physico-chimiques ................................................................. 45
3.1.2 b) Données fauniques................................................................................ 46
3.3.2 Résultat et discussion....................................................................................... 47
4. MILIEUX PARTICULIERS ........................................................................................ 48
4.1.1 Ruisseau du Cran serré......................................................................................... 49
4.1.1a) Méthodologie (Annexe 7)......................................................................... 49
4.1.1b) Résultat et discussion................................................................................ 49
3
4.1.2 Pygargue à tête blanche (Haliaeetus leucocephalus) ....................................... 50
4.1.2a) Méthodologie (Annexe 8) ...................................................................... 50
4.1.2b) Résultat et discussion............................................................................. 51
5. ANNEXES.................................................................................................................... 52
6. RÉFÉRENCES ............................................................................................................. 77
4
LISTE DES TABLEAUX
Tableau 1 Résultat du plan de sondage initial ..........................................................
14
Tableau 2 Synthèse des milieux humides inventoriés en fonctions des classes
du plan de sondage en date du 11 juillet .................................................
19
Tableau 3 Les milieux humides ciblés au plan de sondage en fonction des............
regroupements des milieux humides......................................................
21
Tableau 4 Synthèse finale des milieux humides inventoriés en fonction des
classes du plan de sondage.....................................................................
22
Tableau 5 Fen et marais en relation avec le taux de réussite lors de leur
classification ...........................................................................................
22
Tableau 6 Indice de biodiversité des milieux humides ............................................
28
Tableau 7 Types de milieux humides de la Forêt habitée de La Doré.....................
32
Tableau 8 Poissons capturés dans les tributaires des rivières aux Saumons et
Pémonka..................................................................................................
42
Tableau 9 Poissons capturés dans les lacs de faille .................................................
47
LISTE DES FIGURES
Figure 1 Marécage type tourbière ...........................................................................
30
Figure 2 Marécage type minéral .............................................................................
30
5
LISTE DES CARTES
Carte 1
Situation géographique du territoire à l’étude............................................
8
Carte 2 Classification écologique et bassins versants du territoire à l’étude ..........
13
Carte 3
Plan de sondage initial................................................................................
15
Carte 4
Plan de sondage modifié ............................................................................
23
Carte 5a Répartition de la cassandre caliculée et indice d’abondance selon le
regroupement .............................................................................................
26
Carte 5b Répartition du lédon du Groenland et indice d’abondance selon le
regroupement ............................................................................................
27
Carte 6
Indice de biodiversité exprimé en nombre d’espèces végétales
Par milieux humides .................................................................................
29
Carte 7
Inventaire des tributaires des rivières à Ouananiche.................................
38
Carte 8
Inventaire des lacs de faille .......................................................................
44
6
1. INTRODUCTION
La Corporation de développement forestier de La Doré (CDFLD), anciennement la
Corporation d’aménagement et de développement de La Doré (CADLD), a pour mandat
de réaliser un plan d’affectation ainsi qu’un plan d’aménagement dans le cadre du projet
de la Forêt habitée de La Doré.
Ce projet, délimité par les bassins versants de la rivière aux Saumons et de la rivière
Pémonka (Carte 1), met de l’emphase sur un processus d’acquisition continue de
connaissances sur le territoire. Pour pouvoir bien instaurer un système semblable, des
connaissances exhaustives du territoire se devaient d’être acquises au départ du projet.
C’est dans ce but que la CDFLD a procédé, en 2006 et 2007, à la première étape dans
l’acquisition de connaissances en réalisant un inventaire écoforestier sur le territoire
forestier productif de la forêt habitée de La Doré (CADLD, 2008). Étant donné que les
différents milieux forestiers, dont les milieux boisés, les milieux humides et les milieux
aquatiques, sont interreliés, il est recommandé d’acquérir en parallèle des connaissances
sur tous ces écosystèmes (Joly & al. 2008). C’est donc à l’été 2008, qu’une série
d’inventaires a été réalisée dans le but de mieux connaître les ressources naturelles du
territoire forestier non productif de la Forêt habitée de La Doré. Il s’agit de l’inventaire
des milieux humides, aquatiques et particuliers.
Ces inventaires permettent d’obtenir des informations complémentaires à celles acquises
au cours des dernières années et répondre à l’objectif de mieux connaître la biodiversité
et les écosystèmes présents sur le territoire de la Forêt habitée de La Doré. Ces nouvelles
informations sont nécessaires au processus de gestion intégrée des ressources naturelles,
dont la Forêt habitée est un modèle d’application.
Ce document est divisé en trois sections, c’est-à-dire :
Les milieux humides, les milieux aquatiques et les milieux particuliers
7
8
2. MILIEUX HUMIDES
2.1 Mise en contexte
L’inventaire des milieux humides du territoire de la Forêt habitée de La Doré est un
élément fort important pour mieux comprendre la dynamique du système hydrique et
écosystémique des bassins versants et ce, avec l’idée d’en faire une gestion durable et
respectueuse.
Dans le but d’élaborer des scénarios de conservation des milieux humides et de
considérer leurs différentes fonctions, l’équipe de Joly & al. (2008) suggère de prendre la
problématique dans une perspective hydrologique, donc idéalement par bassins versants.
Le territoire de la Forêt habitée, avec son territoire délimité par les bassins versants de la
rivière aux Saumons et Pémonka, lui donne un avantage certain dans la compréhension
générale des écosystèmes de son territoire.
Les milieux humides représentent 5,46% de la superficie du territoire de la Forêt habitée,
soit 3999 hectares sur 73182 hectares, et sont représentés par les grands types suivants :
les marécages, les tourbières fen (minérotrophe) et les tourbières bog (ombrotrophe).
Avec les milieux humides, il y a 9751 hectares de terre forestière improductive.
Autrement dit, cela signifie que 41 % de ces milieux dits forestiers improductifs, sont des
terres humides. Les autres portions improductives sont les installations hydroélectrique,
les zones agricoles, les bleuetières, certains secteurs de villégiatures, les gravières, les
milieux aquatiques et les dénudés secs.
Les terres humides et les milieux riverains sont les endroits les plus riches et les plus
diversifiés en ce qui concerne la flore et la faune (UQCN 1993) et sont les écosystèmes
les plus productifs sur terre (Environnement Canada 2002; Joly & al. 2008).
Cette grande fertilité des milieux humides provient de leur instabilité indue par les
changements du niveau de l’eau. Cette caractéristique des terres humides a pour effet de
9
créer un processus rapide de décomposition et un apport constant en matières nutritives
provenant d’une sédimentation abondante (Lavoie 1984).
Les milieux humides répondent à une panoplie de valeurs et de fonctions. Les valeurs
sont associées aux besoins des humains, c’est-à-dire tout ce qui concerne les loisirs, la
rétention des eaux de crue, l’amélioration de la qualité de l’eau, la protection contre
l’érosion, les loisirs sans consommation comme l’observation des oiseaux ainsi que la
chasse et la pêche sportive. Les fonctions des milieux humides sont les aspects
fondamentaux que ces milieux représentent dans l’équilibre des écosystèmes : ils
reconstruisent les réserves d’eau souterraine, entretiennent le débit de base des cours
d’eau, emmagasinent des éléments nutritifs (azote, phosphore, carbone et souffre) et
participent au cycle de ces éléments. Ils emmagasinent des sédiments et des
contaminants, font partie de la production et de l’exportation du réseau alimentaire,
participent à la productivité biologique et constituent un habitat pour les plantes, les
poissons et la faune sauvage (Environnement Canada 2002). Ils sont des écosystèmes à
part entière avec leur propre système intégré et où les êtres vivants vivent en
interdépendance les uns avec les autres (UQCN 1993).
Les propriétés multiples de ces écosystèmes sont donc des arguments de poids pour leur
donner une attention particulière et mieux les connaîtres. Les informations recueillies sur
les milieux humides doivent dégager un aspect de leurs fonctionnements, de la diversité
de leurs composantes, de leur rareté et de leur représentativité (Joly & al. 2008). C’est
donc ce que cet inventaire propose.
10
2.2 Classification des milieux humides (Annexe 1)
Pour que l’inventaire des milieux humides se déroule plus rapidement sur le terrain, il est
conseillé de commencer par l’analyse des données cartographiques déjà existantes sur les
milieux humides avec un système d’information géographique (Joly & al. 2008). L’outil
géomatique utilisée pour réaliser cette étape était le logiciel arc GIS 9,2.
Les informations sur les milieux humides provenaient des cartes écoforestières du
ministère des ressources naturelles et de la faune (MRNF) et tous les polygones
écoforestiers représentant un milieu humide, selon la banque du système d'information
écoforestière (SIEF). À l’intérieur de cette nomenclature, les codes DH sur dépôt 7E ou
7T ou dépôt minéral, AL et INO étaient considérés. Cette manière d’utiliser les données
de la banque du SIEF a été inspirée de la méthode de classification des milieux humides
du Québec boréal de Ménard et al. (2006).
Ensuite, dans le but de faire une cartographie plus fine des milieux humides et d’identifier
quel type de milieu humide représentait chacun de ces polygones écoforestiers, une
analyse avec des photographies aériennes était effectuée comme le suggère Joly & al.
(2008). Cette étape était importante parce que les milieux humides sont souvent
représentés sous forme de complexe où plusieurs types de milieux humides se côtoyaient
(Rubec & al. 1997; Joly & al. 2008) et les données cartographiques ne considèrent pas
ces particularités. L’agencement de ces complexes de types de milieux humides est
souvent régi par les microreliefs du terrain (Fleurbec, 1987).
C’est en raison de cette complexité que, pour chaque polygone représentant un milieu
humide, seule la partie dominante était considérée pour la classification dans les
regroupements. Le but était de classer les polygones selon un nombre restreint de
regroupements, car l’élaboration de regroupements en fonction de complexes de milieux
humides aurait été fastidieuse et non efficace. Les regroupements étaient constitués du
type de milieu (bog, fen, marais, marécage), du bassin versant (rivière Pémonka, rivière
aux Saumons, rivière du Cran ou rivière Ashuapmushuan) et de la région écologique (5d,
11
5c, 4e) dans lequel le type de milieu humide se retrouvait. Exemple de regroupement :
(FEN / S / 5d). La légende de ces codes est placée à l’annexe 2. La classification
écologique et les bassins versants du territoire de la Forêt habitée sont illustrés à la carte
2.
Il est à noter que la codominante était aussi identifiée lors de la photo-interprétation, mais
elle n’était pas considérée lors du plan de sondage. Cette information était uniquement
utilisée sur le terrain lors de l’inventaire dans le but d’aider les manipulateurs à visualiser
le milieu humide.
12
13
2.3 Plan de sondage initial
Au total, il y a eu 23 regroupements différents. Ces regroupements étaient constitués de
quatre types de milieux humides, quatre bassins versants et trois régions écologiques. À
partir des regroupements de milieux humides et avec l’aide du logiciel arc GIS 9,2, un
plan de sondage a été effectué de manière à inventorier 24% des milieux humides de
chaque regroupement (Carte 3; Tableau 1).
Tableau 1 : Résultat du plan de sondage initial
#
Parcelle
Type
#
Regroupement Parcelle
Type
#
Regroupement Parcelle
Type
Regroupement
#
Parcelle
Type
Regroupement
1
BOG
BOG_A_4e
32
BOG
BOG_S_5c
63
FEN
FEN_S_5c
94
MAE
MAE_S_5c
2
BOG
BOG_C_5d
33
BOG
BOG_S_5c
64
FEN
FEN_S_5c
95
MAE
MAE_S_5c
3
BOG
BOG_P_4e
34
BOG
BOG_S_5c
65
FEN
FEN_S_5c
96
MAE
MAE_S_5c
4
BOG
BOG_P_5c
35
BOG
BOG_S_5c
66
FEN
FEN_S_5c
97
MAE
MAE_S_5c
5
BOG
BOG_P_5c
36
BOG
BOG_S_5c
67
FEN
FEN_S_5c
98
MAE
MAE_S_5c
6
BOG
BOG_P_5c
37
BOG
BOG_S_5c
68
FEN
FEN_S_5c
99
MAE
MAE_S_5c
7
BOG
BOG_P_5c
38
BOG
BOG_S_5c
69
FEN
FEN_S_5c
100
MAE
MAE_S_5c
8
BOG
BOG_P_5c
39
BOG
BOG_S_5c
70
FEN
FEN_S_5c
101
MAE
MAE_S_5c
9
BOG
BOG_P_5c
40
BOG
BOG_S_5c
71
FEN
FEN_S_5c
102
MAE
MAE_S_5c
10
BOG
BOG_P_5c
41
BOG
BOG_S_5c
72
FEN
FEN_S_5c
103
MAE
MAE_S_5c
11
BOG
BOG_P_5c
42
BOG
BOG_S_5c
73
FEN
FEN_S_5d
104
MAE
MAE_S_5c
12
BOG
BOG_P_5c
43
BOG
BOG_S_5c
74
FEN
FEN_S_5d
105
MAE
MAE_S_5c
13
BOG
BOG_P_5c
44
BOG
BOG_S_5c
75
FEN
FEN_S_5d
106
MAE
MAE_S_5c
14
BOG
BOG_P_5c
45
BOG
BOG_S_5c
76
MAR
MAR_P_5c
107
MAE
MAE_S_5c
15
BOG
BOG_P_5d
46
BOG
BOG_S_5d
77
MAR
MAR_S_5c
108
MAE
MAE_S_5c
16
BOG
BOG_P_5d
47
BOG
BOG_S_5d
78
MAR
MAR_S_5c
109
MAE
MAE_S_5c
17
BOG
BOG_P_5d
48
BOG
BOG_S_5d
79
MAR
MAR_S_5c
110
MAE
MAE_S_5c
18
BOG
BOG_P_5d
49
BOG
BOG_S_5d
80
MAR
MAR_S_5d
111
MAE
MAE_S_5c
19
BOG
BOG_P_5d
50
FEN
FEN_P_5c
81
MAR
MAR_S_5d
112
MAE
MAE_S_5c
20
BOG
BOG_P_5d
51
FEN
FEN_P_5c
82
MAE
MAE_P_4e
113
MAE
MAE_S_5c
21
BOG
BOG_S_4e
52
FEN
FEN_P_5c
83
MAE
MAE_P_5c
114
MAE
MAE_S_5c
22
BOG
BOG_S_5c
53
FEN
FEN_P_5c
84
MAE
MAE_P_5c
115
MAE
MAE_S_5c
23
BOG
BOG_S_5c
54
FEN
FEN_P_5d
85
MAE
MAE_P_5c
116
MAE
MAE_S_5c
24
BOG
BOG_S_5c
55
FEN
FEN_P_5d
86
MAE
MAE_P_5c
117
MAE
MAE_S_5c
25
BOG
BOG_S_5c
56
FEN
FEN_P_5d
87
MAE
MAE_P_5c
118
MAE
MAE_S_5d
26
BOG
BOG_S_5c
57
FEN
FEN_S_4e
88
MAE
MAE_P_5c
119
MAE
MAE_S_5d
27
BOG
BOG_S_5c
58
FEN
FEN_S_5c
89
MAE
MAE_P_5d
120
MAE
MAE_S_5d
28
BOG
BOG_S_5c
59
FEN
FEN_S_5c
90
MAE
MAE_P_5d
121
MAE
MAE_S_5d
29
BOG
BOG_S_5c
60
FEN
FEN_S_5c
91
MAE
MAE_P_5d
122
MAE
MAE_S_5d
30
BOG
BOG_S_5c
61
FEN
FEN_S_5c
92
MAE
MAE_P_5d
123
MAE
MAE_S_5d
31
BOG
BOG_S_5c
62
FEN
FEN_S_5c
93
MAE
MAE_S_4e
* les codes de classement sont à l’annexe 2
124
MAE
MAE_C_5d
14
15
2.4 Méthode d’échantillonnage (Annexe 3)
Comme le suggère l’équipe de Joly & al. (2008), qui a conçu un guide d’élaboration d’un
plan de conservation des milieux humides applicable à l’échelle d’un bassin versant,
d’une municipale ou d’une MRC, la photo-interprétation est utile pour compiler les
données nécessaires à l’élaboration de genre de plan, mais il est par contre nécessaire de
réaliser un inventaire terrain pour affiner l’interprétation, confirmer la typologie du
milieu ainsi que l’exactitude des limites déterminées.
Tout d’abord, il est important de spécifier que sur le terrain, tous les déplacements étaient
représentés sous forme de « virée de cheminement » de la même manière que lors de
l’inventaire écoforestier (CADLD 2006). Dans ces virées, il y avait prise en note de tous
les signes de présence faunique, d’espèces floristiques rares, d’écosystèmes particuliers et
de tous signes de perturbation naturels ou anthropiques. Ces données serviront à préciser
la répartition de la faune sur le territoire et permettront la réalisation d’analyses plus
poussées pour les cas particuliers.
2.4.1 Identification du milieu
Sur le terrain, le type de milieux humides était déterminé avec la clef d’identification
provenant du Système de classification des terres humides du Canada, réalisé par le
Groupe de travail national sur les terres humides (GTNTH) (Rubec & al. 1997). En plus
de déterminer de quel type de milieu humide est la partie dominante, soit bog, fen, marais
ou marécage, les manipulateurs avaient à pousser les clefs du GTNTH spécifiant les
formes et sous-formes de chaque milieu humide. Il s’agissait donc de spécifier l’écologie
du milieu et du coup, de mieux voir la diversité des écosystèmes présents sur le territoire.
16
2.4.2 La Faune
Pour encore mieux connaître les particularités de ces milieux humides, il y avait cueillette
d’informations sur la faune et la flore par la réalisation de parcelles d’échantillonnages.
Ces manipulations ont été réalisées de la même manière que pour l’inventaire écoforestier
(CADLD, 2006) et ce, dans le but d’uniformiser la récolte des données sur le territoire de
la Forêt habitée de La Doré.
Pour la faune, tous les signes (brout, trace, fèce, site d’alimentation, etc.) étaient prélevés
dans un rayon de 5,64 mètres autour du point central de la première des cinq microsplacettes et devaient, si possible, être identifiés à l’espèce. De plus, toutes les roches et
les souches étaient déplacées à l’intérieur de cette parcelle dans le but de trouver des
amphibiens. Le but de ces exercices était d’établir un indice d’abondance de faune sur le
territoire à l’étude. Si des signes de présence faunique ne pouvaient être identifiés sur le
terrain, il était nécessaire de les rapporter ou les photographier et de prendre des notes
explicatives (longueur, largeur, composition, etc.) pour une identification en laboratoire.
2.4.3 La flore
L’échantillonnage de la flore des milieux humides se faisait par grappe de 5 microsplacettes par parcelle. Ces micros-placettes avaient chacune 1,13 mètre de rayon et leur
centre était situé à 5 mètres l’un de l’autre, en direction nord. Toutes les espèces de toutes
les strates (arborescente, arbustive, herbacée et muscinale) étaient identifiées, ainsi que le
pourcentage de recouvrement de chacune des quatre strates.
Étant donné qu’il est recommandé d’effectuer les inventaires des milieux humides dans la
période de floraison ou de feuillaison où il est le plus propice de trouver un maximum
d’espèces végétales en même temps (Joly & al. 2008), la prise de données s’est effectuée
entre le 30 juin et le 6 août. Cette période couvre la floraison d’une grande partie
d’espèces végétales dont plusieurs espèces d’orchidées, souvent considérée comme des
espèces plus rares (Marie-Victorin 1995).
17
2.4.4 La physico-chimie
Les données physico-chimiques des milieux humides ont quant à elles été recueillies
selon le protocole de l’inventaire écologique du bloc de terres publiques intramunicipales
Saint-Félicien-La Doré et des lots appartenant au Centre de la conservation de la
biodiversité boréale (CADLD 2008b). Il s’agissait essentiellement de prendre un
échantillon de tourbe lorsque le milieu humide échantillonné était une tourbière, et ce,
dans le but d’en connaître le pH et donc de confirmer le type de tourbière (Bog ou fen).
18
2.5 Résultats et discussion
2.5.1 Modification du plan de sondage initial
Dans le tableau 2, il y a représentation du cumulatif des inventaires des milieux humides
en date du 11 juillet. À cette date, les bops et les marécages avaient toutes les deux un
pourcentage de 79% de corrélation entre la photo-interprétation et la vérification terrain.
Par contre, les fen et les marais avaient respectivement 25% et 50% de corrélation.
Tableau 2 : Synthèse des milieux humides inventoriés en fonction des classes du plan de sondage en date
du 11 juillet
Milieu dans le plan de
Nombre total
Milieu après classement
sondage
de milieux
BOG
FEN
MARAIS
MARÉCAGE
visités
BOG
FEN
MARAIS
MARÉCAGE
14
8
2
19
11 (79%)
2 (25 %)
2 (11%)
1 (5 %)
3 (37,5 %)
1 (50 %)
1 (5 %)
3 (21 %)
3 (37,5 %)
1 (50 %)
15 (79 %)
La raison principale expliquant une si grande différence entre les résultats lors de la
photo-interprétation et ceux terrains, origine dans la méthode utilisée lors de la photointerprétation pour déterminer le type de milieu. Selon la clef du GTNTH (Rubec & al.
1997), une des différences fondamentales entre un marais et un fen est le substrat sur
lequel il repose. Un fen est sur un substrat organique (40 cm de tourbe minimum) et un
marais repose sur un substrat minéral. Par photo-interprétation, il était très difficile de
faire la différence entre un fen et un marais par la texture des végétaux et encore plus
difficile d’en déterminer le substrat. Les informations de la banque du SIEF sont donc
devenues les outils pour faire la différence entre les deux types de milieux. Dans cette
banque, les codes 7E et 7T signifient un substrat organique.
Pour corriger le tir, et surtout pour répondre à l’objectif de connaître quels étaient les
milieux humides à protéger sur le territoire, l’effort des dernières semaines
d’échantillonnage a été dirigé sur les fen et les marais. Ces milieux étant plus rares sur le
territoire, il devenait important de mieux connaître leurs particularités et de vérifier leur
19
typologie qui, jusqu'à ce moment, correspondait rarement avec celle obtenue lors de la
photo-interprétation.
Pour cette raison, à partir de la semaine du 14 juillet, le plan de sondage a été modifié. À
ce moment, 53 milieux humides, surtout des bogs et des marécages, avaient été éliminés
du plan de sondage.
Les parcelles numéro 63 et 64 ont été éliminées, car elles étaient très difficiles d’accès.
La parcelle numéro 58 a été éliminée parce qu’elle était trop inondée. La parcelle numéro
122 a été éliminée des résultats finaux, car le milieu s’est avéré un dénudé sec. Des 49
autres parcelles éliminées, 16 ont été éliminées en raison de la difficulté de les atteindre
et 33 milieux humides photo-interprétés comme des bogs ou des marécages ont été
échangés pour des marais et des fens.
Même après cette première modification au plan de sondage, trois autres milieux ont été
échangés lors des journées suivantes parce que ces milieux humides étaient difficiles
d’accès.
Finalement, il y a eu 33 nouvelles parcelles de plus que celles qui étaient prévues au plan
de sondage initial. Au total, 104 milieux humides ont été inventoriés (Tableau 3). Ce qui
donne un total de 21,8% de tous les milieux humides du territoire de la Forêt habitée de
La Doré. Le tableau 4 montre la synthèse finale des résultats obtenus sur le terrain en
fonction de la correspondance avec les résultats de l’identification par photointerprétation.
20
Tableau 3 : Les milieux humides ciblés au plan de sondage en fonction des regroupements de milieux humides
REGROUP
BOG_A_4e
BOG_C_5d
BOG_P_4e
BOG_P_5c
BOG_P_5d
BOG_S_4e
BOG_S_5c
BOG_S_5d
FEN_P_5c
FEN_P_5d
FEN_S_4e
21
Nb de
milieux
humides
total sur
Forêt
habitée
5
1
2
46
23
2
99
18
17
11
1
%
échantillonnage
initial pour le
plan de
sondage
24%
100%
50%
24%
24%
50%
24%
24%
24%
24%
100%
Nb de
milieux
prévus
(plan de
sondage
initial)
1
1
1
11
6
1
24
4
4
3
1
Numéro
de
parcelle
pour plan
de
sondage
initial
1
2
3
4 à 14
15 à 20
21
# de parcelle
# de parcelle
réalisée du plan
enlevée du
de sondage
plan de
initial
sondage initial
0
1
0
2
0
3
6-10-12-13-14
4-5-7-8-9-11
16-17-19-20
15-18
0
21
22-23-24-2526-27-28-2930-33-37-3839-40-41-4243-44
─
─
─
─
22 à 45
46 à 49
50 à 53
54 à 56
57
31-32-34-35-3645
46 à 49
50 à 53
54 à 56
57
58-63-64
─
─
─
─
82
84-85
89-90
─
FEN_S_5c
FEN_S_5d
MAR_P_5c
64
12
3
24%
24%
33%
15
3
1
58 à 72
73 à 75
76
59-60-61-62-6566-67-68-69-7071-72
73 à 75
76
MAR_S_5c
MAR_S_5d
MAE_P_4e
MAE_P_5c
MAE_P_5d
MAE_S_4e
12
8
1
27
15
3
24%
24%
100%
24%
24%
33%
3
2
1
6
4
1
77 à 79
80 et 81
82
83 à 88
89 à 92
93
77 à 79
80 et 81
0
83-86-87-88
91-92
93
MAE_S_5c
102
24%
24
94 à 117
95-97-98-101102-105-106107-109-110112-113-114-117
MAE_S_5d
MAE_C_5d
TOTAL
26
1
499
24%
100%
24,8%
6
1
124
118 à 123
124
124
120-121
0
71
94-96-99-100103-104-108111-115-116
118-119-122123
124
-53
# de parcelle ajoutée
au plan de sondage
─
─
─
─
─
─
─
─
134-136-137-146
127-128-138-139
─
Milieux
inventoriés % échantillonnage final
0
0%
0
0%
0
0%
5
11%
4
17%
0
0%
6
4
8
7
1
6%
22%
47%
64%
100%
24
6
1
38%
50%
33%
9
6
0
4
2
1
75%
75%
0%
15%
13%
33%
─
14
14%
─
─
33
2
0
104
8%
0%
21,8%
125-129-132-133-140141-142-143-144-145147-158
130-160-161
─
148-150-151-152-156162
153-154-155-159
─
─
─
─
Tableau 4 : Synthèse finale des milieux humides inventoriés en fonction des classes du plan de sondage
Milieu dans le
plan de
sondage
Total de
milieux visités
Milieu après classement
BOG
19
16 (84 %)
FEN
46
8 (17 %)
21 (46 %)
6 (13 %)
11 (24 %)
MARAIS
16
1 (6 %)
6 (37,5 %)
6 (37,5 %)
3 (19 %)
MARÉCAGE
23
3 (13 %)
2 (9 %)
BOG
FEN
MARAIS
MARÉCAGE
3 (16 %)
18 (78 %)
Après remaniement du plan de sondage, la précision sur les quatre types de milieux
humides a été améliorée ou très peu diminuée. Les fens et les marais ont augmenté le taux
de réussite à la photo-interprétation à respectivement 46% et 37,5%. Ce taux de réussite
reste tout de même trop bas pour pouvoir extrapoler les résultats au reste des milieux sur
la forêt habitée. Étant donné que ces deux types de milieux se faisaient différencier lors
de la photo-interprétation que par le substrat sur lequel ils reposent et qu’ils ont tous les
deux un rôle écologique important (voir section 2.5.6), leur résultat a été jumelé. Ce qui
donne un taux de réussite lors de la classification de 63% (Tableau 5). Ce qui plus
acceptable.
Par contre, les bogs et les marécages ont été photo-interprétés à respectivement 84% et
78%, ce qui est acceptable. La carte 4 montre le plan de sondage final après les quelques
modifications.
Tableau 5 : Fen et marais en relation avec le taux de réussite lors de leur classification
Fen
Marais
Ensemble (Fen et
marais)
Total de milieux visités
46
Total de milieux concordants
21
45,7%
Total de milieux visités
16
Total de milieux concordants
6
37,5%
Total de milieux visités
62
Total de milieux concordants
38
63%
22
23
2.5.2 La Faune
Pour ce qui est de la présence d’espèce faunique à l’intérieur des milieux humides, peu
d’observations ont été signalées. Il est à spécifier que les traces sont souvent difficiles à
apercevoir dans les milieux humides. Les espèces fauniques identifiées étaient
principalement chez les mammifères le castor (14 fois) et l’orignal (5 fois), chez les
amphibiens la grenouille verte (11 fois), chez les oiseaux, l’hirondelle de rivage (4 fois)
et le huard, le butor d’Amérique et la buse à queue rousse (1 fois chacun). De ces données
obtenues, il n’est pas vraiment possible de pouvoir sélectionner des milieux humides
pouvant nécessiter une mesure de protection particulière.
Des stations d’écoutes pourraient être effectuées pour mieux connaître les différentes
espèces présentes, comme dans les milieux à fort potentiel pour la sauvagine identifiés
par Rempal & al. (1997). De plus, des sites de captures pourraient être installés pour
savoir quelles sont les différentes espèces de micromammifères et amphibiens sur le
territoire.
Des 104 milieux humides visités, 38 (37% des milieux) ont été créés ou bien ont été
influencés par les castors, ce qui vient appuyer la littérature expliquant que ces milieux
sont fortement influencés par cette espèce (Environnement Canada, 2002). Il est donc
essentiel, lors de la gestion des milieux humides, de considérer l’importance que ces
animaux et leurs installations ont sur les écosystèmes de la forêt.
Dans cet inventaire, aucune donnée n’a été prise quant aux invertébrés sur le territoire.
Par contre, il semble essentiel de comprendre cette classe d’animaux représentant en fait,
le groupe le plus important en terme de diversité dans les milieux humides riverains et
jouant un rôle critique dans la chaîne alimentaire. Ces derniers sont aussi souvent
analysés pour déterminer la santé des milieux humides (Environnement Canada. 2002).
24
2.5.3 La flore
Les espèces floristiques avec un intérêt économique ont été comptabilisées et illustrées
dans une carte d’indice d’abondance de la manière qu’effectué lors du rapport
d’inventaire écoforestier (CADLD, 2008a). Les deux espèces à avoir été mises en valeur
de cette façon sont la Cassandre (Carte 5a) et le Lédon du Groenland (Carte 5b). Il s’agit
ici que d’exemples de la possibilité d’application des indices d'abondance, mais il est
possible d’effectuer cet exercice pour n’importe quelle espèce faunique ou floristique
inventoriée lors de l’inventaire.
2.5.4 Espèces fauniques et floristiques à statut particulier particulières (CREDD, 2007)
Lors de l’inventaire, aucune espèce à statut n’a été répertoriée. Il est surprenant
qu’aucune de ses espèces n’ait été retrouvée étant donné la richesse de ses milieux, mais
cela ne veut pas dire que le territoire en soit exempt (Joly & al. 2008). Selon l’Union
québécoise de la conservation de la nature (UQCN, 1993) on estime que 50% des plantes
susceptibles d’être désignées menacées ou vulnérables se concentrent à l’intérieur des
milieux humides. Il est par contre à considérer qu’aucun de ces milieux n’a été
exhaustivement analysé, car ce n’était pas le but de cet inventaire. Le protocole
comprenait 5 micro-placettes de données végétales comme dans l’inventaire écoforestier
(CADLD 2006). Par contre, une attention particulière était portée lors de l’entrée et de la
sortie du milieu humide.
2.5.5 La physico-chimie
L’analyse des échantillons de tourbière ne n’a pas été effectuée à ce jour. Il est à
spécifier que cette étape était effectuée dans le but de connaître le pH des tourbières et de
confirmer le type de ces derniers qui avait été préalablement déterminé sur le terrain. Des
analyses ultérieures complétant les informations déjà acquises pourront être effectuées.
25
26
27
2.5.6 Indice de biodiversité
L’indice de biodiversité est le nombre moyen d’espèces végétales retrouvées dans un type
de milieu humide. Cet indice donne une idée sur la richesse de ces écosystèmes et leur
capacité à accueillir différentes espèces vivantes. Même s’il n’y a pas eu d’espèces
particulières retrouvées dans les milieux humides, une diversité biologique intéressante a
tout de moins été observée (Tableau 6; Carte 6). Certaines classes de milieux humides
montrent une biodiversité plus importante. Les marécages étaient les milieux possédant
la diversité floristique la plus élevée.
Tableau 6 : Indice de biodiversité des milieux humides
Type de milieu
Marécage
Marécage (minéral)
Marécage (tourbe)
Bog
Fen
Marais
Indice de
biodiversité
17
19
15
13
11
11
Nb de
milieux
35
18
17
27
25
9
28
29
L’analyse de l’indice de biodiversité fait ressortir deux types marécages. Effectivement,
selon la clef du GTNTH (Rubec & al. 1997), lorsqu’une tourbière est dominée par des
arbres, des plantes arbustives et latifoliées, il s’agit d’un marécage (type tourbière)
(Figure 1). L’autre type de marécage est souvent associé aux zones inondables des cours
d’eau, repose sur un substrat minéral et est souvent caractérisé par des d’arbustes (type
minéral) (Figure 2). Dans le tableau #4, il est possible de voir que les marécages, dit
minéral, ont en moyenne un indice de biodiversité plus élevé, c’est-à-dire une moyenne
de 19 espèces au lieu de 15 pour celles sur substrat de tourbe.
Figure 1 : Marécage type tourbière
Figure 2: Marécage type minéral
30
Par conséquent, ces deux types de marécage devraient être considérés différemment. Les
marécages sur substrat minéral devraient bénéficier d’une attention particulière.
Par contre, pour ce qui est de la biodiversité des fens, rien des résultats obtenus lors des
sorties terrain montre une très grande diversité (indice de biodiversité de 11) (Tableau 4).
Pourtant, selon la littérature, ces milieux sont propices à l’installation de plusieurs
espèces végétales étant donné la circulation d’eau riche en minéraux dissous (Fleurbec,
1987). Pour cette raison, ces milieux doivent tout de même être considérés comme des
endroits où il y a un bon potentiel de retrouver une grande biodiversité et des espèces
floristiques particulières. Il y a donc suggestion de porter une attention particulière à ces
milieux.
Le résultat fut le même pour les marais (Tableau 4). Les marais sont par contre réputés
pour avoir une diversité faunique considérable (Lavoie 1984). Un grand nombre
d’oiseaux utilisent les marais riverains pour la nidification (Environnement Canada
2002). C’est pourquoi une attention particulière doit aussi être apportée aux marais étant
donné leur importante fonction écologique.
Finalement, la diversité floristique a été plus élevée les tourbières de type bogs
(ombrotrophe) que dans les fens et les marais. L’indice de biodiversité était en moyenne
de 13 espèces pour ces milieux (Tableau 4). Pourtant, selon la littérature (UQCN 1993)
ces tourbières auraient peu de biodiversité (UQCN 1993) due entre autres au pH très
acide qui les caractérise (Fleurbec, 1987). Ceci démontre que les milieux humides, en
général, sont des milieux riches et peuvent abriter une biodiversité importante.
31
2.5.7 Les types de milieux humides de la Forêt habitée de La Doré
Les résultats d’inventaires obtenus sur les différents milieux humides, en fonction la clef
du Groupe de travail national sur les milieux humides (Rubec & al. 1997), démontrent
qu’il y a 26 types de milieux humides répartis entre les quatre grands groupes de bases
(fen, marais, marécage, bog). (Tableau 7)
Tableau 7: Types de milieux humides de la Forêt habitée de La Doré
Types de milieux humides
Bog de bassin
Bog de rivage
Bog flottant
Bog plat riparien
Bog en couverture
Bog plat
Fen de chenal
Fen de rivage
Fen de ruisseau
Fen flottant
Fen lacustrien
Marais lacustrien de rivage
Marais riparien de plaine d'inondation
Marais riparien de ruisseau
Marais riverain
Quantité
4
14
4
1
3
2
1
2
20
5
1
2
3
6
1
Types de milieux humides
Marécage de bassin
Marécage de plaine d'inondation
Marécage de rivage
Marécage riparien de ruisseau
Marécage riverain
Marécage lacustrien
Marécage de dépression
Marécage de lagg
Marécage de tourbière surélevé
Marécage incliné sans marge
Marécage plat sans marge
Quantité
1
1
1
1
18
6
1
2
1
1
2
*Les cases en bleu représentent les milieux humides riverains
Au total, il y a 6 différents types bogs, 5 fens, 4 marais et 11 marécages. Des 26 types
de milieux, seuls 7 sont non-riverains ce qui montre clairement le lien étroit entre les
milieux aquatiques et riverains. La connaissance plus précise des différents types de
milieux humides de la Forêt habitée de La Doré, a pour but de s’assurer de conserver leur
biodiversité et de la diversité de leurs écosystèmes.
32
2.6 Conclusion
L’objectif d’accumuler des informations sur les milieux humides du territoire de la forêt
habitée de manière à pouvoir avoir une idée sommaire de leur diversité a été réalisé. Au
total, 21,8% des polygones écoforestiers représentant un milieu humide dans la banque
du SIEF, ont été inventoriés.
Les résultats de la photo-interprétation sont très intéressants, mais ne sont par contre pas
suffisant pour pouvoir généraliser ces résultats sur l’ensemble des milieux humides du
territoire sans qu’il y a ait un système de vérification terrain. Il est donc primordial
d’avoir un protocole efficace et rapide d’inventaire avant aménagement forestier. Dans le
futur, pour rendre plus efficace la photo-interprétation, il serait intéressant de pouvoir
trouver une méthode pour différencier les fens des marais, autrement que par le type de
substrat. La spécialisation d’un photo-interprète sur cette problématique pourrait être une
piste de solution.
Lors de l’inventaire terrain, des difficultés sont survenues quant à l’identification des
milieux humides. La démarcation était rarement claire entre les différents types de
milieux humides se chevauchant dans un même polygone écoforestier. En fait, comme
rapporté par GTNTH (Rubec & al. 1997) et Fleurbec (1987), les milieux sont souvent
représentés sous forme de complexe, c’est-à-dire l’entremêlement de plusieurs milieux
humides. Lors de cet inventaire, les équipes de deux manipulateurs donnaient la chance
de pouvoir avoir une vision plus juste du milieu à évaluer. Dans le futur, il serait
intéressant de pouvoir examiner plus exhaustivement certains milieux humides quant à
leur composition réelle en type de milieux humides. Parce qu’en fait, les complexes sont
généralement considérés comme plus intéressants sur le plan écologique (Joly & al.
2008),
Il est aussi important de souligner que dans les éléments cartographiés, aucun milieu
moins grand que 1 hectare n’est identifié (Joly & al. 2008). Même si les milieux humides
33
de grandes superficies peuvent être considérés avoir une plus grande valeur écologique
(Joly & al. 2008), les plus petits milieux font aussi partis de la mosaïque complexe des
écosystèmes et ne sont donc pas des éléments à négliger. Par conséquent, il serait
intéressant de faire une cartographie plus fine du territoire permettant d’aller chercher
certains détails importants de l’équilibre de ces écosystèmes. Dans cet inventaire, seuls
les milieux humides cartographiés avaient été considérés. Il est aussi à souligner que
l’inventaire forestier du quatrième décennal sera plus performant et plus précis permettant
de distinguer les marais, les marécages, les tourbières ombrotrophes et tourbières
minérotrophes (Joly & al. 2008).
Aucune espèce menacée ou d’intérêt régional selon la liste du CREDD (2007) n’a été
identifiée. Il est possible d’expliquer ce résultat par le fait que les milieux humides n’ont
pas été analysés de manière exhaustive. Même si les manipulateurs avaient pour
indication de bien regarder la végétation à l’entrée et à la sortie du milieu humide visé, il
y a plusieurs plantes qui ont fort probablement échappé à leurs yeux. L’étape d’avoir une
vue d’ensemble des milieux humides de la Forêt habitée était essentielle. Par contre, dans
une étape subséquente, il serait important d’approfondir les connaissances en ciblant
certains milieux démontrant de grands intérêts écologiques.
Pour ce qui est des connaissances sur la faune des milieux humides, peu d’informations
ont été acquises lors de cet inventaire. Des stations d’écoutes pour la faune avienne et
des stations de captures pour les micromammifères et les amphibiens seraient
intéressantes pour mieux en comprendre la dynamique écosystémique et mieux les
protéger. De plus, il serait intéressant de rallier les caractéristiques bio-physiques des
milieux humides avec les besoins de certaines espèces animales trouvant en ces lieux des
éléments essentiels pour compléter leur cycle vital. Comme le suggèrent certaines études,
le but serait donc de donner à ces milieux une importance qui serait relative à la présence
de la faune (Rempal & al. 1997; Houde, 2006; Breton & al. 2005; Joly & al. 2008).
Étant donné le lien étroit qui a été montré entre les milieux aquatiques et riverains, il
devient important de pousser l’idée de l’inter-connectivité de ces milieux. Le
34
positionnement dans le réseau hydrographique (bassin versant) devient donc essentiel à la
compréhension de la dynamique naturelle et à l’élaboration d’objectifs de conservation et
d’exploitation. Les milieux humides répondent à une panoplie de besoins et de valeurs à
l’échelle du territoire et une analyse plus poussée doit être réalisée pour ce qui est de la
conservation, des valeurs économiques, esthétiques et récréatives. Pour ce qui est des
milieux nécessitant une attention particulière, il faudrait favoriser les milieux faiblement
représentés sur le territoire et rares.
35
3. MILIEUX AQUATIQUES
3.1 Mise en contexte
L’inventaire des milieux aquatiques avait pour but de déterminer si certains lacs ou cours
d’eau du territoire de la Forêt habitée pouvaient nécessiter une protection particulière. Les
cibles d’inventaires ont été choisies en fonction des connaissances acquises lors des
inventaires terrains des trois dernières années et par les connaissances des gens du
secteur. Deux objectifs avaient été ciblés :

Vérifier s’il y a présence de ouananiches dans les tributaires des rivières aux
Saumons et Pémonka

Vérifier les autres lacs le long de la même faille que le lac à Côté Sud pour savoir
s’il y a, à ces endroits, de l’Omble chevalier (espèce susceptible d’être menacée
ou vulnérable).
Ces objectifs représentent des analyses très fines des milieux aquatiques du territoire de la
Forêt habitée de La Doré. L’objectif était tout simplement d’obtenir, par mesure
préventive, des informations permettant de protéger des milieux potentiellement fragiles.
Un inventaire, plus général (filtre brut), devrait être réalisé de manière à acquérir de
l’information générale sur l’ensemble des milieux aquatiques du territoire.
36
3.2 Les tributaires des rivières à ouananiches
Peu d’inventaires ont été réalisés dans les tributaires des rivières Pémonka et aux
Saumons. Pourtant dans les années 80, il y a eu capture de ouananiches dans la rivière
Doré. Cette rivière est un tributaire important de la rivière aux Saumons. Pour vérifier si
d’autres tributaires étaient hôtes de cette espèce, un inventaire systématique de tous les
tributaires de ces deux rivières a été réalisé. Le but était d’échantillonner tous les
tributaires compris entre les limites infranchissables pour les ouananiches et la rivière
Ashuapmushuan où ils se déversent. Par contre, le projet de la Forêt habitée de La Doré
ne comprend pas les secteurs privés, donc les tributaires compris dans ces tenures n’ont
pas été échantillonnés (Carte 7).
37
38
3.2.1 Méthode d’échantillonnage (Annexe 4)
Comme pour les milieux humides, lors des déplacements sur le terrain, il y avait prise en
note de tous les signes de présence faunique, des signes de perturbations, ainsi qu’une
identification de toutes les espèces floristiques spéciales et de tous les écosystèmes
particuliers rencontrés. Un point GPS était pris, ainsi que des photographies ou des notes
pertinentes, si nécessaire. Toutes ces données supplémentaires servaient à mieux définir
l’ensemble des caractéristiques écosystémiques, floristiques et fauniques du territoire à
l’étude.
3.2.1a) Données physico-chimiques
Tous les tests physico-chimiques sont réalisés en triplicata et s’effectuent à 50 mètres de
l’embouchure du tributaire. Le sens de l’écoulement de l’eau, ainsi que la vitesse de
l’écoulement sont d’abord pris en note. La vitesse du courant est prise à l’aide d’une
orange et d’un chronomètre. L’orange doit parcourir une distance connue dans un temps
minimum de 20 secondes (Murphy & Willis, 1996). Pour obtenir une vitesse
représentative du milieu, le test est effectué dans un courant dit « moyen », c’est-à-dire
entre le centre du cours d’eau et le bord du cours d’eau.
Le pH, la conductivité, l’oxygène dissous, la température et la transparence sont, quant à
eux, pris au centre du tributaire.
La transparence de l’eau est évaluée à l’aide d’un disque de Secchi. Le manipulateur
devait se placer dos au soleil et utiliser un tuyau de PVC muni d’un plat de Pétri à
l’extrémité pour éliminer la réfraction et donc diminuer le risque d’erreur (Dumont, 1981
cité dans MRNF, 1994).
La couleur de l’eau était obtenue avec un outil mesurant l’unité de couleur (APHA) après
que la turbidité de l’échantillon soit enlevée (MRNF, 1994).
39
Le pH et la conductivité étaient tous les deux pris au même moment. À l’aide d’une
bouteille d’échantillon intégré sur toute la colonne d’eau (MRNF, 1994) pour les cours
d’eau de 3 mètres et plus. Par la suite, l’échantillon devait être transvidé dans un
contenant de plastique inerte style « Nalgen » pour pouvoir ensuite prendre les mesures
de pH et de conductivité avec les appareils appropriés. Pour les plans d’eau de moins de 3
mètres, les électrodes du pH et du conductivimètre étaient directement mises sous la
surface de l’eau. Les détails des procédures sont inscrits dans le guide de normalisation
de méthodes utilisées en faune aquatique du Ministère de l’Environnement et de la Faune
(1994).
La mesure de l’oxygène dissous est prise en milligramme par litre (mg/L). Cette mesure
devait être prise sur toute la colonne d’eau. Elle devait être prise à 0,5 mètre puis, de 1 à
14 mètres, à tous les mètres, de 16 à 20 mètres, à tous les deux mètres et à plus de 20
mètres, à tous les 4 mètres, et ce, jusqu’au fond (MRNF, 1994). Au même moment, la
température était affichée sur l’écran de l’appareil et était être noté. Pour les cours d’eau
de moins de 1 mètre, les électrodes de l’oxymètre étaient directement placées sous la
surface de l’eau.
Données fauniques
Les pièges installés dans les tributaires étaient les trappes à ménés. La première était
installée à 50 mètres de l’embouchure et les quatre autres trappes étaient installées à 50
mètres les unes des autres. Ces pièges étaient installés de manière à rester sur place de 18
à 24 heures et englober la période de 18:00 à 09:00 de manière à avoir un effort d’une
journée qui était comparable entre tous les tributaires.
40
3.2.2 Résultat et discussion
Deux des tributaires n’ont pu être échantillonnées car ils n’étaient pas assez profonds. Au
total, 12 espèces de poissons ont été capturées lors de cet inventaire mais il n’y a eu
aucun spécimen de ouananiche (Tableau 6). Malgré ce fait, il est tout de même difficile
de pouvoir certifier que ces tributaires ne sont pas hôtes de ouananiche. Il doit tout de
même y avoir une attention particulière portée à ces milieux, car ils sont en contacts
directs avec des rivières importantes à ouananiche. Il est primordial d’éviter des
problématiques tant au niveau de l’ensablement des frayères ainsi que le réchauffement
de ces eaux.
41
Tableau 8. Poissons capturés dans les tributaires des rivières aux Saumons et Pémonka
# parcelle Bourrole IDENT
r1
10-JUN-08
r2
10-JUN-08
r3
10-JUN-08
r4
10-JUN-08
r5
10-JUN-08
r6
10-JUN-08
r7
10-JUN-08
r8
10-JUN-08
r9
10-JUN-08
r10
10-JUN-08
r11
10-JUN-08
r12
10-JUN-08
r13
10-JUN-08
r14
10-JUN-08
CUIN
RHAT
CACA
RHC
SAFO
Remarques
1
1
r15
10-JUN-08
r16
10-JUN-08
Pas assez profond pour poser bourroles
r17
10-JUN-08
Pas assez profond pour poser bourroles
r18
10-JUN-08
Pas assez profond pour poser bourroles
r19
10-JUN-08
Pas assez profond pour poser bourroles
r20
10-JUN-08
r21
11-JUN-08
2
r22
11-JUN-08
2
r23
11-JUN-08
1
r24
11-JUN-08
3
r25
11-JUN-08
2
r26
11-JUN-08
r27
11-JUN-08
48
r28
11-JUN-08
10
3
r29
11-JUN-08
2
3
r30
11-JUN-08
1
r31
12-JUN-08
r32
12-JUN-08
r33
12-JUN-08
r34
12-JUN-08
r35
12-JUN-08
r36
12-JUN-08
Pas assez profond pour poser bourroles
r37
12-JUN-08
Pas assez profond pour poser bourroles
r38
12-JUN-08
Pas assez profond pour poser bourroles
r39
12-JUN-08
Pas assez profond pour poser bourroles
r40
12-JUN-08
Pas assez profond pour poser bourroles
Pas assez profond pour poser bourroles
1
1
*Les codes des espèces ichtyologiques sont en annexe (Annexe 5)
42
3.3 Inventaire des lacs de faille
En 1995, des spécimens d’Omble chevalier (Salvelinus Alpinus var. oquassa) ont été
capturés dans le lac à Côté Sud se situant dans la faille géologique entre le contrefort
laurentien et la plaine de la mer de Laflamme. Étant donné, le statut de cette espèce
« Susceptible d’être désignée vulnérable ou menacée », un inventaire des lacs situés le
long de la même faille est réalisé de manière à vérifier si d’autres lacs ont les mêmes
particularités (Carte 8).
43
44
3.3.1 Méthodologie (Annexe 6)
3.3.1 a) Données physico-chimiques
Le profil bathymétrique et la largeur sont des données très importantes, car elles sont
corrélées avec des changements dans la distribution et l’abondance des communautés de
poissons (Vannote & al. 1980; Bozek & Hubert 1992 cité dans Murphy & Willis, 1996).
Le profil bathymétrique détermine aussi la profondeur des cours d’eau, ce qui est un
élément très important pour l’habitat des poissons (Murphy & Willis, 1996). L’appareil
utilisé pour prendre le profil bathymétrique des plans d’eau est un sonar (Murphy &
Willis, 1996). La trajectoire à prendre dans ces plans d’eau, pour le profil bathymétrique,
diffère par rapport à la morphologie du plan d’eau, selon le Guide de normalisation de
méthodes utilisées en faune aquatique au Ministère de l’Environnement et de la Faune
(1994). Le profil bathymétrique permet de trouver le point le plus profond. C’est à cet
endroit que les données physico-chimiques sont prélevées (MRNF, 1994). Pour diminuer
les risques d’erreurs, tous les tests physico-chimiques, c’est-à-dire la couleur, la
transparence, l’oxygène dissous, le pH, la conductivité et la température, sont pris en
triplicata et une moyenne est ensuite calculée.
Donc, au point le plus profond du plan d’eau, la couleur, la transparence, le taux
d’oxygène dissous, le pH et la conductivité doivent être pris de la même manière que
pour l’inventaire des tributaires des rivières à ouananiche.
45
3.1.2 b) Données fauniques
Pour pouvoir capturer l’Omble chevalier, il faut mettre des pressions de pêche aux
endroits où les caractéristiques limnologiques permettent la survie de cette espèce. De
plus, l’utilisation de filets maillants expérimentaux dans d’autres milieux que ceux
propices aux populations de Salvelinus alpinus var. Oquassa risquerait de causer de la
mortalité chez d’autres groupes d’espèces de poissons (Marc Valentine, MRNF,
Communication personnelle).
Les paramètres suivants sont recherchés :

Être dans la partie supérieure de l’hypolimnion

Température de 12°C ou moins

Concentration d’oxygène dissous d’au moins 5 ppm

Ne pas dépasser 20 mètres de profondeur
Lorsque ces paramètres sont obtenus, il s’agissait d’installer les filets maillants
expérimentaux dans la zone recherchée. Un des deux filets maillants est muni de mailles
de ½, ¾, 1 et 1 ½ pouces et est d’une longueur de 48 pieds et l’autre a des mailles de 2, 2
½ et 3 pouces et a une longueur de 36 pieds. Ces deux filets étaient installés bout à bout
de manière à avoir une grosseur de maille croissante.
La pêche devait durer de 18 à 24 heures et devrait englober la période entre 18:00 et 9:00
heure. De cette manière, il y avait une pression de pêche se comptant avec l’unité
comparative nuit/filet (MRNF, 1994).
Tous les lacs visés par cet inventaire devaient aussi être échantillonnés avec un verveux,
des trappes à ménés et une seine de rivage. Ces outils de pêche, contrairement aux filets
maillant expérimentaux, ont la caractéristique de ne pas créer la mort des spécimens
aquatiques. Le but était d’avoir de l’information complémentaire sur la faune
ichtyologique de ces milieux
46
De manière plus détaillée, un verveux est installé de manière à bloquer l’accès au
tributaire avec l’ouverture dirigée vers le lac. À partir du tributaire, il faut installer 10
trappes à ménés à environ deux mètres de la rive et à une distance de 10 mètres entre
chacune d’elles. Finalement, un coup de seine doit être effectué à partir du tributaire.
Cette seine est composée de mailles de ½ pouces est d’une longueur de 20 pieds. S’il
n’est pas possible de passer la seine sur le rivage (en raison de la présence de nombreux
débris ou de milieux riverains trop profonds), les manipulateurs se déplacent, et ce,
jusqu’au moment où il est possible d’effectuer les manœuvres.
Il est à noter que s’il n’y a pas de tributaires, toutes ces manipulations sont reportées à
l’émissaire du plan d’eau.
3.3.2 Résultat et discussion
En réalité, aucun des lacs visités ne présentaient les caractéristiques permettant
l’installation des filets expérimentaux pour la capture d’Omble chevalier. Malgré cela, les
verveux et trappes à ménés ont été installés et ont permis de capturer 7 espèces de
poissons et une espèce d’amphibien (Tableau 9).
Tableau 9. Poissons capturés dans les lacs de faille
# de parcelle Nom du lac
Date
Espèces capturées
CACO_BO CACO_VE SECO_BO SECO_VE MAMA_BO NOVI_BO MAMA_VE SAFO_VE
1
2
3
4
Lac sans nom
11-août-08
lac Vert
19-août-08
1
1
lac Boudreault 20-août-08
74
4
lac Marcelin
13
1
107
1
71
26-août-08
50
* Les codes des espèces ichtyologiques sont mis en annexe (Annexe 5)
47
1
4. MILIEUX PARTICULIERS
Lors de tous les déplacements effectués sur le terrain depuis les trois dernières années,
toutes les particularités rencontrées étaient notées comme, par exemple, les espèces
fauniques ou floristiques et les écosystèmes particuliers. Une photographie représentative
du milieu ou de l’espèce devait être prise et la délimitation devait être effectuée à l’aide
d’un GPS. Toutes les informations fournies par les utilisateurs du territoire concernant
des caractéristiques particulières sur le territoire pouvaient faire l’objet d’inventaires plus
approfondis.
C’est dans cette optique que le plan d’inventaire sur les milieux particuliers a été mis sur
pied. Ce plan se divise donc en deux cas :

Le ruisseau du Cran serré

Nidification du Pygargue à tête blanche
Comme pour les milieux humides et les milieux aquatiques, lors de tous les déplacements
sur le terrain, il y avait prise en note de tous les signes de présence faunique, les signes de
perturbations ainsi qu’une identification de toutes les espèces floristiques spéciales et de
tous les écosystèmes particuliers rencontrés. Un point GPS, des photographies ou des
notes pertinentes étaient prises, si nécessaire. Toutes ces données supplémentaires servent
à toujours mieux définir l’ensemble des caractéristiques écosystémiques, floristiques et
fauniques du territoire à l’étude.
48
4.1.1 Ruisseau du Cran serré
Cet inventaire a été monté dans le but de connaître de manière plus exhaustive le ruisseau
du Cran serré qui semblait avoir des particularités au niveau écosystémique,
principalement en raison de sa conformation géologique. Ceci nous laisse croire qu’il est
possible de trouver à cet endroit des espèces floristiques particulières.
4.1.1a) Méthodologie (Annexe 7)
Pour réaliser l’inventaire, il s’agissait tout simplement de marcher les deux rives du
ruisseau où il y a prise en note de toute les espèces végétales ou écosystèmes particuliers
rencontrés.
4.1.1b) Résultat et discussion
Lors de cette virée, aucune espèce à statut particulier n’a été aperçue. Il est à considérer
que cet inventaire était ponctuel dans le temps et qu’il est par conséquent difficile
d’apercevoir certaines espèces si elles ne sont pas dans leur période de floraison.
49
4.1.2 Pygargue à tête blanche (Haliaeetus leucocephalus)
Cet inventaire a été monté, car depuis les deux dernières années, sur le territoire de la
Forêt de La Doré, plusieurs observations de Pygargue à tête blanche sont survenues
approximativement au même endroit. Le grand nombre d’observations peut laisser
présager que l’oiseau s’y serait installé et non seulement de passage. Il est à noter que
malgré le fait qu’un de ces oiseaux puisse passer du temps sur ce territoire, il peut être
solitaire et ne pas y nicher (Germain Savard, communication personnelle)
Le but est donc de connaître le lieu de nidification de l’oiseau pour pouvoir le protéger.
Le pygargue à tête blanche fait partie de la liste des espèces menacées. Il a le statut
« vulnérable » (CREDD 2007).
4.1.2a) Méthodologie (Annexe 8)
Avant d’aller sur le terrain, le territoire où les observations ont eu lieux doit être observé
par photographie aérienne et carte avec courbes de niveaux de manière à cibler les
endroits où il a un plus gros potentiel de retrouver un nid. Les caractéristiques
recherchées par H. leucocephalus pour la nidification sont (CREDD, 2007):

Généralement l’arbre le plus élevé pour installer le nid

Nid souvent à moins de 200 mètres d’un plan d’eau avec beaucoup de poissons
Une journée complète à partir du lever de soleil est nécessaire pour augmenter les
chances de pouvoir apercevoir l’oiseau. Il est à considérer que les nids de ces espèces
sont immenses et souvent à la cime des plus grands arbres.
Sur les lieux d’observations, le secteur était ratissé et une attention particulière était
portée aux secteurs pré identifiés. Dans le cas où le nid était retrouvé, ce dernier devait
être géoréférencé par un point GPS. Des mesures de protection seraient par la suite prises.
50
4.1.2b) Résultat et discussion
Aucun Pygargue à tête blanche n’a été aperçu. Il est très difficile de pouvoir repérer un
nid de Pygargue dans une forêt dense malgré les indications de départ. D’autres
inventaires, dont une évaluation aérienne devrait être réalisée pour s’assurer qu’il n’y a
pas de couple nicheur à cet endroit.
51
5. ANNEXES
1. Méthode de classification des milieux humides ................................................53
2. Légende de classification des milieux humides.................................................56
3. Protocole des milieux humides ..........................................................................57
4. Protocole des tributaires à ouananiches .............................................................60
5. Codes des espèces ichtyologiques .....................................................................63
6. Protocole des lacs de failles ...............................................................................64
7. Protocole du ruisseau du cran serré ...................................................................70
8. Protocole du Pygargue à tête blanche ................................................................71
9. Glossaire terminologique ...................................................................................73
52
Annexe 1. Démarche de classification des milieux humides et plan de sondage
1. Donner un numéro à chaque polygone écoforestier (et non à chaque milieu, car un
milieu peut être composé de deux polygones ou plus). Exception : pour les
polygones qui sont séparés en deux à cause des limites des feuillets écoforestiers,
les joindre afin d’en faire un seul polygone.
2. Faire un tableau regroupant les polygones du MRNF. Sur ce tableau, inclure la
nomenclature du type de milieu supposé par le MRNF (SIEF). Cette nomenclature
est inspirée, en partie, de la méthode de classification des milieux humides du
Québec boréal de Darveau et al., 2006 : Tourbière=DH sur dépôt 7E ou 7T,
Marais=DH sur dépôt minéral, Marécage=AL et INO. Une classe «Spécial» est
ajoutée pour les milieux non conformes (DH sur dépôt R, par exemple). Cette
fiche doit aussi inclure le dépôt de surface, les polygones qui ont déjà été
inventoriés dans les inventaires précédents (écoforestier et TPI), le numéro du
polygone, un champ pour la classification de la photo-interprétation, un champ
pour les remarques et les commentaires.
3. Faire une carte à échelle rapprochée pour avoir le contour des polygones le plus
fidèlement défini.
4. Repérer le polygone du milieu humide sur la photographie aérienne.
5. Déterminer la dominante du polygone (milieu) selon le contour du polygone du
MRNF et non selon l’apparence sur la photo.
Les classes possibles sont : BOG, FEN, MAE (marécage), MAR (marais).
Si le milieu comprend deux classes ou plus très distinctement (par exemple, une
partie dominante FEN et une partie plus petite, mais très évidente, MAE), noter,
dans le champ des remarques et des commentaires, la ou les codominantes à
l’attention des techniciens et pour le plan de sondage. Les codominantes possibles
sont :

Partie(s) boisées : Indique qu’il y a présence d’arbres et/ou d’arbustes
dans le polygone, mais pas suffisamment, selon la photo, pour que le
milieu soit classifié MAE

Partie(s) MAE : Indique qu’il y a présence, dans le polygone, d’un ou
plusieurs secteurs de marécages distincts de la dominante
53

Partie(s) MAR : Indique qu’il y a présence, dans le polygone, d’un ou
plusieurs secteurs de marais distincts de la dominante

Partie(s) BOG : Indique qu’il y a présence, dans le polygone, d’un ou
plusieurs secteurs de bog distincts de la dominante

Partie(s) FEN : Indique qu’il y a présence, dans le polygone, d’un ou
plusieurs secteurs de fen distincts de la dominante

Partie(s) AQUA : Indique que dans le polygone écoforestier, il y a une
ou plusieurs parties aquatiques pérennes créées par une perturbation
comme le castor, suite au découpage du MRNF.
6. Si un polygone a une dominance d’eau sur la photo, mais pas dans la base de
données écoforestière, évaluer si cette eau est pérenne ou non. Si c’est le cas, lui
donner la classe de «milieu aquatique» et déterminer, si possible, la cause
(barrage de castor ou autre). Ces polygones devenus aquatiques seront exclus de
l’inventaire des milieux humides 2008.
7. Si un milieu a une particularité, la noter pour que les techniciens aient le plus
d’informations possible à leur arrivée sur le terrain.
8. Si un milieu est repéré sur la photographie aérienne, mais ne se trouve pas dans la
carte écoforestière du MRNF, l’interpréter et lui donner un numéro. Il en est de
même pour les polygones représentés par des lacs dans la base SIEF dont l’eau
n’est pas pérenne ou inapparente sur la photographie aérienne. Ces polygones
forestiers ou aquatiques devenus des milieux humides seront exclus de
l’inventaire des milieux humides 2008.
9. Compiler les résultats de la photo-interprétation dans la couche des milieux
humides, sur ArcGIS.
10. Dessiner les nouveaux milieux repérés et les polygones forestiers et aquatiques
devenus humides à l’aide des photographies aériennes géoréférencées. Étant
donné que ces milieux ne seront pas inclus aux plans de sondage, ils doivent être
créés dans une couche à part.
11. Pour le plan de sondage, associer chaque polygone (milieu) au bassin versant dans
lequel il se trouve et à la région écologique. Si un milieu chevauche deux
54
territoires (bassins versants ou région écologique), le classer dans celui où il a la
plus grande superficie.
12. Créer les regroupements que se nommeront ainsi :
(type de milieu)_(bassin versant)_(région écologique).
13. Créer une couche par regroupement.
[Pour notre inventaire : 23 regroupements (4 types de milieux, 4 bassins
versants, 3 régions écologiques).]
14. Déterminer le nombre de semaines et de jours/semaine d’inventaire.
15. Déterminer le nombre moyen de milieux à visiter par jour.
16. Déterminer le taux d’échantillonnage de chaque regroupement pour respecter
l’échéancier.
17. Calculer le nombre de polygones (milieux) à visiter par regroupement selon le
taux d’échantillonnage et le nombre de milieux total dans le regroupement. Les
regroupements comprenant moins de 4 polygones (milieux) auront un taux plus
élevé d’échantillonnage
(un polygone = 100%, 2 polygones = 50%, 3 polygones=33%)
18. Attribuer un numéro de parcelle à chaque polygone (milieu).
19. L’emplacement de la parcelle dans chaque polygone (milieu) se trouve au centre
(le plus possible) de la dominante du polygone.
20. Créer les points de parcelles sur ArcGIS.
21. Ajouter les polygones avec leur numéro dans le GPS.
55
Annexe 2. Légende de classification des milieux humides
Type de milieu humide
Bog
Fen
Marais
Marécage
Bassin versant
Rivière aux Saumons
Rivière Pémonka
Rivière du Cran
Rivière Ashuapmushuan
Région écologique
Collines du haut Saint-Maurice
Plaine du lac Saint-Jean et du
Saguenay
Collines ceinturant le lac SaintJean
56
Code
BOG
FEN
MAR
MAE
Code
S
P
C
A
Code
5c
4e
5d
Annexe 3. Protocole des milieux humides
Avant d’aller sur le terrain

À chaque vendredi, fixer les points de parcelle au centre du milieu humide
dominant de chaque polygone

Prendre connaissance des milieux humides à visiter durant la semaine (à faire les
jeudis ou les vendredis). Bien visualiser le milieu (la dominante et les
codominantes) en fonction de la photo-interprétation réalisée précédemment.
Revisualiser les milieux humides lors des déplacements en véhicule avant chaque
visite de milieu.

Imprimer la photographie aérienne du polygone avec les chemins, les cours d’eau,
les plans d’eau et le point de parcelle, ainsi qu’avec les commentaires fait lors de
la photo-interprétation.
À l’arrivée sur la parcelle

Se rendre au point de parcelle indiqué sur le GPS. Mettre un ruban : initiales des
techniciens, numéro de parcelle, date, type d’inventaire. Prendre une photographie
représentative du milieu humide.

Indiquer si l’observation terrain correspond à celle faite par photo-interprétation et
faire la clef des milieux humides au complet (exemple : bog de bassin)

Faire les cinq micros-placettes de végétation, vers le nord, comme lors de
l’inventaire de la CADLD (2006).

S’il n’y a pas assez de place dans le polygone pour effectuer toutes les cinq
micros-placettes vers le nord, diriger les vers l’est en premier, vers le sud et ce
n’est pas encore possible, vers l’ouest.
Fiche physico-chimique

Noter les perturbations rencontrées sur le terrain : brûlis, chablis, coupe, etc.

Inscrire la classification du type de milieu humide avec l’aide des clés
d’identification.
57

Pour les milieux composés de tourbe, prélever un échantillon d’environ 3 po X 3
po X 3 po (27 po3) et le placer dans un sac «Ziploc». Inscrire sur le sac le numéro
de la parcelle, la date et les initiales des techniciens. Par la suite, placer le sac dans
une glacière avec de la glace (Ice pack).

Creuser un trou de 40 cm dans la tourbe pour déterminer sa composition et l’état
de décomposition (Of, Oh, Om). Inscrire les résultats sur la fiche d’inventaire.

Prendre le pH de l’eau des milieux où la nappe phréatique est visible ou, si elle est
invisible, en faisant un trou suffisant pour prendre un échantillon d’eau avec une
bouteille NALGENE de 500 ml. (Rincer la bouteille avec cette eau avant de
prendre l’échantillon)

Apporter l’échantillon d’eau pour une analyse le SOIR MÊME avec le pH-mètre.
Fiche de relevé de la végétation

Procéder de la même façon que : Inventaires écologiques, (CADLD 2006)

Prendre le recouvrement de chaque strate ainsi que l’absence/présence de chaque
espèce.
Fiche de signes de présence faunique

Signes de présence faunique : procéder de la même façon que : Inventaires
écologiques, (CADLD 2006)
Fiche de rectification des inconnus

Procéder de la même façon que : Inventaires écologiques, (CADLD 2006)
Au retour de la journée

Procéder de la même façon que : Inventaires écologiques, (CADLD 2006).

Mettre les échantillons de tourbe dans une boîte identifiée dans le congélateur.

Effectuer la lecture de pH des échantillons d’eau prélevés dans la journée.
Placer les spécimens floristiques dans un herbier jusqu’au moment de l’identification.
L’inventaire des milieux humides a été réalisé dans le but de connaître leurs
particularités, de repérer les endroits riches en biodiversité ainsi que les espèces fauniques
58
et floristiques particulières dans le but d’affecter adéquatement le territoire. Ces
affectations concernent donc les bandes riveraines des milieux humides étant donné que
le but était d’affecter le territoire forestier productif.
59
Annexe 4 : Protocole des tributaires à ouananiches
À l’arrivée sur la parcelle :

Repérer, à l’aide du GPS, le point où commence l’échantillonnage (C’est-à-dire
50 mètres après le début du tributaire Pémonka ou aux Saumons)

Planter une ou des pancartes (selon besoin) indiquant le projet en cours.

Placer le ruban à mesurer, si possible d’un bord à l’autre du cours d’eau, et le
laisser là.
Fiche de morphologie et de physico-chimie des cours d’eau
- Toutes les données physico-chimiques se réalisent à la hauteur du ruban à mesurer
Vitesse de l’écoulement

La vitesse est déterminée à l’aide d’une balle de hockey ou d’une orange (fruit),
d’un chronomètre et d’une épuisette.

Se mettre entre le bord de l’eau où il n’y a pas de courant et la zone avec le
maximum de courant, dans le COURANT MOYEN.

Un manipulateur laisse la balle dans l’eau au niveau du ruban à mesurer (Il faut
remarquer la distance du bord à laquelle la balle est lâchée). La balle doit être
totalement sous l’eau et effleurer la surface (même densité que l’eau)

L’autre manipulateur (qui recevra la balle ou l’orange) doit être à une distance
prévue pour que la balle prenne au moins 20 secondes à la franchir.

Noter le temps que la balle a pris pour franchir la distance.

Répéter les mêmes manœuvres trois fois et faire une moyenne.
Pour le pH, la conductivité, l’oxygène dissous et la température :
-Les données se prennent à l’endroit où il y a le plus de courant sous le ruban à
mesurer.
60
-Les instructions pour le fonctionnement des appareils pour ces mesures sont décrites
dans le protocole des plans d’eau.
pH, conductivité et température
-Si l’eau est perturbée, effectuer l’échantillonnage du pH et de la conductivité à côté
du point prévu et le noter.
-(Si l’eau est perturbée partout, prendre la donnée tout de même et le noter en
remarque).
-Tremper les électrodes du pH-mètre et du conductivimètre juste sous la surface et
noter. –S’il n’y a pas assez d’eau pour tremper les électrodes, prendre un échantillon
avec une bouteille de style «NALGEN» de 1 L.
-Prendre la température au même moment
Oxygène dissous et température
-Tremper les électrodes juste sous la surface et noter les résultats.
-S’il n’a pas assez d’eau pou tremper les électrodes, prendre un échantillon avec une
bouteille de style «NALGEN» de 1 L.
-Ne pas oublier de noter la mesure de la température en même temps
Couleur
- Référence (protocole des lacs de faille)
Transparence
- Référence (protocole des lacs de faille)
61
Trappe à ménés (coup de seine si possible)
Pour les tributaires, seulement cinq trappes à ménés sont installées. La première se place
à 50 mètres de l’embouchure de la rivière et les quatre autres à 50 mètres les unes des
autres (des points GPS devront être fait au bureau avant le départ)
 La pêche doit durer de 18 à 24 heures et englober la période de 18:00 à 09:00.
 Laisser les pièges toute la nuit. Le lendemain, sortir les trappes à ménés
délicatement de l’eau. Identifiez et comptez le nombre de poissons. Pour tous les
poissons vivants, il faut les identifier et les relâcher. Pour les spécimens morts, les
identifier. Dans le cas de doute, passer une étiquette avec une broche dans la
branchie du poisson avec le nom des coéquipiers, le numéro de la parcelle, le type de
piège, la date. Placer par la suite dans un sac «ziploc» dans une glacière munie de
«Ice packs».
Fiche de photos
Procéder de la même façon que : Inventaires écologiques, (CADLD 2006)
Fiche de rectification des inconnus
Procéder de la même façon que : Inventaires écologiques, (CADLD 2006)
Au retour de la journée
62

Procéder de la même façon que : Inventaires écologiques, (CADLD 2006)

Les filets devront être nettoyés et séchés
Annexe 5 : Code des espèces ichtyologiques
meunier noir
ouitouche
mulet perlé
triton vert
omble de fontaine
épinoche à cinq épines
naseux noir de l'Est
naseux des rapides
meunier rouge
CACO
SECO
MAMA
NOVI
SAFO
CUIN
RHAT
RHCA
CACA
Catostomus
Semotilus
Margariscus
Notophthalmus
Salvelinus
Culaea
Rhinichthys
Rhinichthys
Catostomus
commersonii
corporalis
margarita
viridescens
fontinalis
inconstans
atratulus
cataractae
catostomus
63
Annexe 6. Protocole des lacs de faille
À l’arrivée sur la parcelle

Planter une ou des pancartes (selon les besoins) indiquant le projet en cours.
(Explication du projet et raison)
Fiche de morphologie et de physico-chimie des plans d’eau
Profil

Faire un tracé bathymétrique en fonction de la forme du lac (Guide de
normalisation, MRNF).

À l’aide du sonar, prendre la profondeur toutes les 10 secondes en avançant à
vitesse lente et constante avec la chaloupe (Remarquer où est le point le plus
profond)

Une fois que le point le plus profond est ciblé, y retourner pour prendre le pH, la
conductivité, la température, la couleur et la transparence.
pH, conductivité et température:
-Dans tous les cas, si l’eau est perturbée par la présence de sédiments en suspension,
recommencer l’échantillonnage du pH et de la conductivité à côté et l’inscrire
(Si l’eau est toujours perturbée, faire une remarque)
Pour les plans d’eau de plus de 7 mètres de profondeur
-Prendre un échantillon d’eau intégrée avec une bouteille d’échantillon intégré :
-Rincer la bouteille avec l’eau du plan d’eau.
-Laisser descendre la bouteille à vitesse constante jusqu’à cinq mètres et la remonter à
la même vitesse.
-À son arrivée, la bouteille ne doit pas être pleine. Si elle est pleine, il est possible
qu’une partie de la colonne d’eau ne soit pas intégrée dans l’échantillon. Dans ce cas,
recommencer le processus plus lentement.
64
-Par la suite, tremper les électrodes dans la bouteille. Ne pas oublier de noter la
température en même temps.
Pour les plans d’eau de 3 à 7 mètres
-Prendre un échantillon d’eau intégrée avec une bouteille d’échantillon intégré :
-Rincer la bouteille et laisser descendre à vitesse constante jusqu’à deux mètres du
fond.
-La remonter à la même vitesse.
-À son arrivée, la bouteille ne doit pas être pleine, sinon recommencer le
processus plus lentement.
-Par la suite, tremper les électrodes dans la bouteille. Ne pas oublier de noter la
température en même temps
Pour les plans d’eau de moins de 3 mètres
-Submerger totalement les électrodes et prendre en note les mesures. Ne pas oublier
de noter la température en même temps

Oxygène dissous et température :
Oxymètre :
-Prendre la mesure en (Mg/L).
Pour les cours d’eau de moins de 1,5 mètre de profondeur
- Tremper les électrodes sous la surface (si possible à cinq mètres) et noter les
résultats.
- S’il n’a pas assez d’eau pou tremper les électrodes, prendre un échantillon avec une
bouteille de style «NALGEN».
-Ne pas oublier de noter la température en même temps.
65
Pour les cours d’eau de plus de 1,5 mètre de profondeur
- Avec l’oxymètre, prendre les mesures aux profondeurs suivantes :
- 0,5 mètre
- de 1 à 14 mètres inclusivement : à chaque mètre
- de 16 à 20 mètres inclusivement : à tous les deux mètres
- à partir de 24 mètres inclusivement, et ce, jusqu’au fond du cours d’eau : à tous les
quatre mètres
-Ne pas oublier de noter la température en même temps.
*Si les mesures de températures, d’oxygène dissous et de pH ne sont pas
correspondantes à celles nécessaires pour l’Omble chevalier, il est possible de vérifier
si d’autres endroits sur le lac correspondraient à celles recherchées.
Couleur de l’eau
-Prendre des échantillons d’eau dans les éprouvettes prévues à cet effet
-Selon Unité APHA (couleur apparente)
Transparence
-Avec un disque de Secchi, une corde graduée et un bathyscope maison, se placer dos
au soleil.
-La chaîne doit être maintenue verticalement
-Descendre le disque jusqu’au moment où il disparaît.
-Remonter le disque lentement. Le moment où il réapparaît correspond à la mesure de
transparence.
-Trois mesures doivent être prises dans le but dans faire une moyenne.
66
Installation des pièges pour faune aquatique

Il est essentiel de poser les Filets maillants expérimentaux aux conditions de
température de d’oxygène mentinnées ci-bas :
Filets maillants expérimentaux
Il faut poser les filets dans la partie supérieure de l’hypolimnion. C’est donc la couche
sous la thermocline et la couche la plus froide et plus profonde du lac.
Caractéristiques recherchées : 12ºC ou moins
- Oxygène dissous de 5 ppm ou (5 mg/L) minimum
-Ne pas dépasser 20 mètres de profondeur
Si on ne trouve pas ces caractéristiques, il est théoriquement impossible de trouver le
Salvelinus alpinus. (De plus, on risque de tuer des populations non-ciblées)
DONC, ON NE MET PAS DE FILETS MAILLANTS!!!...
Si le lac correspond aux caractéristiques

Installer les 2 filets bout à bout dans la zone présentant les caractéristiques
recherchées
Seine

Commencer par passer la seine à deux mètres du tributaire. À partir de ce point,
allez vers la droite (la droite lorsque les manipulateurs regardent vers le plan
d’eau).

S’il n’est pas possible de passer la seine en raison d’une grande quantité de débris
ou d’un endroit trop profond, se déplacer vers la droite jusqu’à ce qu’il soit
possible d’effectuer les manœuvres.
67

S’il y a du poisson vivant, il faut l’identifier et le relâcher. Pour les spécimens
morts, les identifier. Dans le cas de doute, passer une étiquette avec une broche
dans la branchie du poisson et inscrire les initiales des coéquipiers, le numéro de
la parcelle, le type de piège et la date. Placer le spécimen dans un sac «Ziploc»
dans une glacière munie de «Ice packs».
Trappe à ménés

À partir de ce point, mettre la première trappe à ménés à 2 mètres du bord (ou au
centre du plan d’eau s’il est plus petit que 2 mètres).

Une roche doit être déposée délicatement au fond de la trappe à ménés et une
bouée doit y être attachée à l’aide d’une corde. Chaque trappe à ménés doit aussi
contenir un appât dans la petite poche refermable (pain).

Les quatre autres trappes à ménés doivent être disposées de la même façon, c’està-dire à deux mètres du bord en allant du côté droit lorsqu’on regarde vers le plan
d’eau. Une distance centre-centre de 10 mètres doit être laissée entre chacune
d’elle (installer les trappes à ménés seulement si l’entrée est submergée).
Verveux
-Le verveux est utilisé. (gros ou petit dépendamment de la largeur de tributaire)
l’ouverture pointant vers le lac.
- Il doit être dans le fond du cours d’eau. Des pieux (bâton de bois ou de fer) le fixe
au fond.
-Les panneaux latéraux (dans le cas du petit verveux = 5 pieds pour chaque panneau)
sont étendus de chaque côté de façon à bloquer la route aux poissons.
Fiche faune aquatique

Inscrire sur la fiche les initiales des techniciens, le numéro de la parcelle, l’heure
de montée et de désinstallation des filets et des trappes à ménés ainsi que la date.
Indiquer l’heure du coup de seine.

Laisser toute une nuit les pièges. Le lendemain, sortir les trappes à ménés
délicatement de l’eau. Identifiez et comptez le nombre de captures. S’il y a des
68
spécimens vivants, il faut les identifier et les relâcher. Pour les spécimens morts, les
identifier sur place. Dans le cas de doute, passer une étiquette avec une broche dans la
branchie du poisson et inscrire les initiales des techniciens, le numéro de la parcelle,
le type de piège et la date. Placer le spécimen dans un sac «Ziploc» dans une glacière
munie de «Ice packs».
Au retour de la journée

Procéder de la même façon que : Inventaires écologiques

Les filets devront être nettoyés et séchés
69
Annexe 7. Protocole du ruisseau du Cran serré
Ce protocole a été monté dans le but de connaître de manière plus exhaustive le ruisseau
du Cran serré qui semblait avoir des particularités au niveau écosystémique
principalement en raison de sa conformation physique.
Ceci nous laisse croire qu’il est possible de trouver à cet endroit des espèces floristiques
particulières.
Une fois arrivée au ruisseau
-Commencer à une extrémité du ruisseau
-Marcher sur le bord du ruisseau (les deux rives) de façon à faire une battue et marquer
d’un point GPS :

toute espèce végétale particulière
-Prendre une photo de l’habitat et décrire les caractéristiques suivantes :

Approximation de la colonie (est-ce qu’elle est seule ?)

Si c’est une grosse colonie, prendre un point GPS au début et la fin de la colonie

Décrire l’habitat avec : le nom du technicien et la date
Au retour de la journée
Identifier les espèces inconnues s’il y a lieu
70
Annexe 8. Protocole pour le Pygargue à tête blanche
Ce protocole a été monté en raison de plusieurs observations de Pygargue à tête blanche
survenues approximativement au même endroit sur le territoire de la Forêt de La Doré
lors des deux dernières années.
Le but est donc de connaître le lieu de nidification de l’oiseau pour pouvoir le protéger.
Habitat préférable pour la nidification du Pygargue

Niche normalement dans l’arbre le plus haut de la canopée

Sinon, peuvent nicher sur les falaises rocheuses

Les nids sont immenses : peuvent aller jusqu'à 6 mètres d’épaisseur et peser
jusqu’à 2 tonnes

Nid normalement à moins de 200 mètres de l’eau (idéalement d’un cours d’eau
rapide ou d’un grand lac)
*Il est aussi possible que ces oiseaux ne soient que de passage
Avant d’aller sur le terrain :

Mettre les points d’observations sur le GPS

Identifier les secteurs potentiels avant d’aller sur le terrain (haut de falaise, cran,
vieux peuplements, milieux aquatiques)

Amener une carte du terrain (lignes topographiques, chemins, milieux aquatiques)

Arriver tôt le matin = lever du soleil
71
Une fois arrivé sur les lieux d’observation :
-Faire une battue en regardant tous les endroits potentiels à partir du lieu des
observations (point GPS) et ce, tranquillement en s’éloignant de ce point (considérer le
domaine vital de l’oiseau)
-S’il y a observation d’un pygargue, prendre un point GPS et tenter de voir le lieu de
nidification
Lieu de nidification
-Si le lieu de nidification est trouvé
-Ne pas déranger les oiseaux
-Prendre un point GPS
-Tenter de voir avec des jumelles s’il y a des jeunes
-Prendre une photo du lieu et du nid (si possible)
72
Annexe 9. Glossaire terminologique
Biodiversité
Diversité des organismes vivants de toutes sources (terre, mer et autres écosystèmes
aquatiques) et des réseaux écologiques dont ils font partie; elle comprend la diversité au
sein des espèces, entre les espèces et dans les écosystèmes (Environnement Canada
2002).
Bog (tourbière ombrotrophe)
Milieu humide avec une accumulation minimale de 40 cm de tourbe. Végétation
dominée par la sphaigne avec arbres et arbustes ou sans arbre. Parfois, il est possible de
trouver des carex mélangés, particulièrement dans les parties plus profondes. Le pH de
l’eau est normalement entre 4.0 et 4.8 ou inférieur. L’eau provient exclusivement de
précipitations, sans l’effet de l’eau souterraine. La nappe phréatique se trouve
généralement au niveau ou près de la surface (Groupe de travail national sur les terres
humides, 1997).
Codominante (milieu humide)
Pour le bien de cet inventaire, le terme « codominante » signifie le type de milieux
humides qui est, en terme de superficie, la deuxième plus importante dans le polygone
écoforestier représentant un milieu humide.
Corridor biologique
L’expression « corridor biologique » (ou biocorridor) désigne un ou des milieux reliant
fonctionnellement entre eux différents habitats vitaux pour une espèce ou un groupe
d’espècesm(habitats; sites de reproduction, de nourrissage, de repos, de migration, etc.).
Ces structures mécopaysagères permettent de « connecter » ou de « reconnecter » entre
elles plusieurs sous-populations. Elles permettent la migration d’individus et la
circulation de gènes (animaux, végétaux ou fongiques) d’une sous-population à une autre
(Joly & al. 2008).
73
Dominante (milieu humide)
Pour le bien de cet inventaire, le terme « codominante » signifie le type de milieux
humides qui est, en terme de superficie, la plus importante dans le polygone écoforestier
représentant un milieu humide.
Écosystème
Entité spatiale constituée d’une partie physique relativement stable qui sert de support à
une partie biologique dynamique et d’échanges de matériel et d’énergie entre les deux
parties, dans l’espace et dans le temps (Joly & al. 2008).
Fen (tourbière minérotrophe)
Milieu humide avec une accumulation minimale de 40 cm de tourbe. Végétation dominée
par les carex, les espèces graminoïdes et les mousses brunes à demi décomposées. Il y a
possibilité de voir des tapis de végétaux de type graminoïde et arbustif. L’eau est riche en
minéraux dissous. La surface se trouve au même niveau que la nappe phréatique avec des
fluctuations au-dessus de la surface. La circulation de surface peut se faire par l’entremise
de chenaux, de mares et d’autres plans d’eau libre (Groupe de travail national sur les
terres humides, 1997).
Marécage
Milieu humide caractérisé par la présence d’eau stagnante ou s’écoulant lentement se
retrouvant de façon saisonnière ou pendant de longues périodes, ce qui donne un sous-sol
continuellement saturé d’eau. La végétation est dominée par des arbres conifères ou
décidus, ou un tapis végétal de grands arbustes. Les grands arbres couvrent généralement
30% de la surface. Le substrat est composé de mélanges de sols minéraux et organiques
ou constitué de tourbe composée de matière ligneuse et de matière organique très
décomposées. Ce tapis végétal est influencé par l’eau souterraine minérotrophe et la
nappe phréatique est au même niveau que la surface, ou au-dessus d’elle (Groupe de
travail national sur les terres humides, 1997).
74
Marais
Milieu humide d’eau calme périodique ou persistante, ou eau de surface bougeant
lentement et habituellement riche en nutriants (substances nutritives). La surface d’eau
peu profonde varie de manière impressionnante. L’eau du sol reste dans la zone
d’enracinement pendant presque toute la durée de la saison de croissance, sauf pendant
les années de grande sécheresse. Les sédiments sont habituellement constitués d’un
mélange
d’éléments
organiques
et
inorganiques
meubles.
La
végétation
est
principalement composée de macrophytes aquatiques émergés, surtout de type
graminoïde, tels les joncs, les roseaux, les graminées et les carex, des arbustes et d’autres
espèces herbacées, tels les macrophytes latifoliées aquatiques, flottantes et partiellement
submergées, et des plantes non vasculaires, telles les mousses brunes, les bryopsidées et
les algues macroscopiques (Groupe de travail national sur les terres humides, 1997).
Milieu humide
Une terre humide, appelée également milieu humide ou zone humide, se définit comme
un terrain où la nappe phréatique est à proximité ou au-dessus de la surface, ou qui est
saturé d’eau assez longtemps pour créer des conditions comme des sols modifiés par
l’eau et une végétation hydrophile (tolérant de longues périodes d’inondation ou du
moins tolérant des inondations périodiques). Les terres humides comprennent les terres
humides organiques ou «tourbière» et les terres humides minérales ou zone de sols
minéraux qui subissent l’influence d’un excès d’eau, mais qui produisent peu ou pas de
tourbe (Groupe de travail national sur les terres humides, 1997).
Polygone écoforestier
Division des cartes écoforestières cartographiés à l’échelle 1:20000 où sont cumulés les
résultats de la photo-interprétation sur les peuplements forestiers et sur les dépôts de
surface (Joly & al. 2008).
75
Type (de milieux humides)
Dans cet inventaire, les types de milieux humides sont : tourbière ombrotrophe (bog,
tourbière minérotrophe (fen), marais et marécage.
Système d’inventaire écoforestier (SIEF)
Système regroupant plusieurs informations permettant de décrire les peuplements
forestiers à l’échelle régionale, telle que les catégories de terrain, les types de couvert, les
groupements d’essences, la densité, la hauteur, l’âge du peuplement et les perturbations
(Joly & al. 2008).
76
6. RÉFÉRENCES
Bernatchez, L. & Giroux, M. 2000. Les poissons d’eau douce du Québec et leur
répartition dans l’est du Canada. Broquet inc. 350 p.
Breton, M.N., Darveau, M. & Beaulieu, J. 2005. Développement d’une méthode de
classification automatisée des milieux humides et des milieux riverains en forêt boréale.
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CADLD, 2006. Plan d’inventaire écoforestier de la Forêt de La Doré. Corporation
d’aménagement et de développement de La Doré. 24 p.
CADLD, 2008a. Rapport d’inventaire écoforestier de la Forêt de La Doré. Corporation
d’aménagement et de développement de La Doré. 27 p.
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Saint-Félicien – La Doré et des lots appartenant au Centre de la biodiversité boréale.
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CREDD, 2007. Site des espèces menacées au Saguenay Lac-St-Jean. Conseil régional de
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Émond, G. 2003. Les Habitats. Plan de cours, cahier de laboratoire et notes théoriques.
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Fleurbec 1987. Plantes sauvages des lacs, rivières et tourbières. Fleurbec éditeur, SaintAugustin (Port-Neuf), Québec. 391 p.
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Joly, M, Primeau, S., Sager M. & Bazoge A. 2008. Guide d’élaboration d’un plan de
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78
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