Activités de l’année 2009 Maladie d’Aujeszky Vannier Philippe Agence française de sécurité sanitaire des aliments Laboratoire de recherches et d’études Avicoles, Porcines et Piscicoles Tél.: (+33[0]2) 96.01.62.22, Fax: (+33[0]2) 96.01.62.23 e-mail : [email protected] Résumé des activités générales liées à la maladie 1. Test(s) employés ou disponibles pour cette maladie dans votre laboratoire ; Unité virologieimmunologie porcine : M.F. Le Potier, C. Deblanc Contrôles sérologiques de la Maladie d’Aujeszky (MA): - ELISA gE : détection d’anticorps dirigés contre la protéine gE du virus de la MA à partir de sérums ou de buvards - ELISA gB : détection d’anticorps dirigés contre la protéine gB du virus de la MA à partir de sérums ou de buvards - Neutralisation virale : détection d’anticorps dirigés contre le virus de la MA dans un sérum par la suppression du pouvoir cytophatogène du virus dans un système bien défini virus-cellules sensibles Contrôle virologique de la MA : Isolement viral : mise en évidence du virus en inoculant un homogénat tissulaire à des cellules sensibles puis vérification de la spécificité de l’effet cytopathopatique par séroneutralisation Tous les échantillons soumis étaient prélevés sur carnivores. 2. Test Pour Spécificité Total ELISA Anticorps gE 49 ELISA Anticorps gB 18 NV Anticorps gE/gB 0 Culture sur cellules PK15 Isolement du virus 26 Production, contrôle et distribution des réactifs diagnostiques Nous produisons du sérum sous-étalon ainsi que différents sérums négatifs ou positifs en gE et/ou gB. Nous pouvons également fournir du virus de la MA. A l’échelle nationale, nous avons vendu 61 ml de sous-étalon gE/gB aux laboratoires vétérinaires, et 30 ml aux producteurs de kits français. Nous avons également vendu 2 ml de divers sérums négatifs et positifs aux laboratoires vétérinaires et 197ml à des producteurs de kits français. Rapports annuels des Laboratoires de référence et des Centres collaborateurs de l’OIE, 2009 1 Maladie d’Aujeszky A l’échelle internationale, nous avons fourni 13 ml de sérum sous-étalon à des pays membres de l’OIE (Espagne, Portugal et République Tchèque), 22 ml d’autres sérums (Espagne, Pologne, Belgique, Italie, Lettonie, Pays Bas, Angleterre et République Tchèque). Nous contrôlons également les kits de diagnostic sérologique pour les deux méthodes ELISA (contrôles initiaux et lot par lot) avant leur commercialisation sur le territoire français. En 2009, 10 kits ont été contrôlés. Activités spécifiques découlant du mandat des Laboratoires de référence 3. Normalisation et harmonisation internationales des méthodes de diagnostic, ou de la production et de l’évaluation de vaccins L’Unité Virologie et Immunologie Porcines de l’AFSSA a organisé en 2009 un Essai Inter Laboratoires d’Aptitude (EILA) pour la sérologie par la méthode ELISA gE/gB pour le diagnostic de la Maladie d’Aujeszky. 86 laboratoires y participaient (62 laboratoires français + 21 laboratoires internationaux ou des T.O.M.: Afrique du Sud, Autriche, Belgique, Danemark, Espagne, Estonie, Lettonie, Nouvelle Calédonie, Pays Bas, Pologne, Royaume uni et Suisse + 3 producteurs de kits). Le laboratoire a également participé à 2 EILA organisés par deux autres LNRs européens (Belgique et Suisse). 4. Préparation et fourniture des réactifs de référence internationaux pour les tests de diagnostic et les vaccins Nous avons fourni gratuitement des pays membres de l’OIE en sérums internationaux ADV gIG (2ml), ADV gIQ (5ml) et ADV I (12ml) et en sérum sous-étalon européen, calibré sur l’étalon ADV I. 5. Recherche et développement de nouvelles méthodes de diagnostic et de contrôle des maladies Nous avons travaillé à la validation de kits industriels de diagnostic de la MA par PCR temps réel. Deux kits devraient être mis sur le marché courant 2010. Inluence de la réplication du plasmide sur l’efficacité et la biosécurité d’un vaccin à ADN plasmidique contre la maladie d’Aujeszky (chef de projet : Daniel Dory, Unité de Génétique Virale et de Biosécurité): Classiquement, la vaccination à ADN se réalise avec des plasmides non réplicatifs dans les cellules mammifères. Ici, des plasmides arborant des éléments réplicatifs du circovirus porcin de type 2 (PCV2) ont été construits et caractérisés in vitro. Ces vecteurs sont bien réplicatifs in vitro et ont été utilisés pour préparer un vaccin à ADN contre le virus de la maladie d’Aujeszky. Le gène de la glycoprotéine C du virus de la maladie d’Aujeszky a été inséré dans un de ces plasmides réplicatifs. Un essai a été réalisé afin de mettre en évidence la réplication des plasmides in vivo et d’étudier la distribution du plasmide après l’injection. En raison des limites de la méthode d’évaluation de la réplication qui a fonctionné in vitro, la réplication in vivo n’a pas pu être mise en évidence. Par ailleurs, aucune différence significative de la distribution du plasmide réplicatif comparée à celle du plasmide non réplicatif n’a été décelée. Enfin, l’efficacité vaccinale contre une infection expérimentale du vaccin réplicatif comparée à celle du vaccin à ADN non réplicatif n’a pas montré de différence significative. Biosécurité de la vaccination à ADN contre le virus de la maladie d’Aujeszky: recherche d’évènements d’intégration du plasmide dans le génome de l’hôte (chef de projet : Daniel Dory, Unité de Génétique Virale et de Biosécurité): Une méthode de mise en évidence de l’intégration d’un plasmide non réplicatif codant la glycoprotéine B du virus de la maladie d’Aujeszky a été mise au point in vitro à l’aide de lignées de cellules porcines PK15 qui ont été stablement transformées par ce plasmide. Deux sites distincts d’intégration ont été identifiés sur deux lignées distinctes, montrant que la technique de recherche d’évènements d’intégration fonctionne. L’étape suivante consiste à adapter et à appliquer cette méthode pour la recherche d’évènements d’intégration dans le muscle de porc injecté par ce même plasmide. 2 Rapports annuels des Laboratoires de référence et des Centres collaborateurs de l’OIE, 2009 Maladie d’Aujeszky 6. Recueil, analyse et diffusion des données épizootiologiques significatives pour le contrôle zoosanitaire au niveau international RAS 7. Réalisation d’expertises pour l’OIE ou pour des Membres de l’OIE RAS 8. Formation technique et scientifique du personnel d’autres Membres de l’OIE Visite du laboratoire du laboratoire national de référence OVI de Ondersterpoort en Afrique du Sud le 22 avril 2009 : rencontre de la scientifique responsable du diagnostic : Mme Rahana Dwarka. Discussion et conseil sur les stratégies diagnostic et de lutte en cas d’introduction du virus. 9. Réalisation d’analyses biologiques (test de diagnostic) pour le compte d’autres Membres de l’OIE RAS 10. Organisation de réunions scientifiques internationales au nom de l’OIE ou d’autres organisations internationales RAS 11. Participation à des études scientifiques internationales effectuées en collaboration RAS 12. Publication et diffusion des informations relatives au travail de l’OIE (notamment liste des publications scientifiques, activités de publication sur internet, présentations à des conférences internationales) Présentations à l’occasion du conférences ou de réunions internationales Communications orales Pol, Françoise; Deblanc, Céline and Le Potier, Marie-Frédérique. How to interpret the results of an international proficiency test when no common validation procedure exists for diagnosis kits ?3rd ESVV Veterinary Herpesvirus Symposium, Friedrich-Loeffler-Institut Greifswald-Insel Riems, Germany, April 22 -24 2009. Faurez, Florence; Dory, Daniel and Jestin André. In vitro and in vivo studies of a Porcine Circovirus (PCV) 2derived replicative plasmid. 4th EPIZONE Theme 5 Meeting, Maisons-Alfort, France, 18th-20th November 2009 Communications affichées Faurez, Florence; Dory, Daniel and Jestin André. In vitro characterization of a replicating DNA vaccine against Pseudorabies virus infection in swine. 3rd ESVV Veterinary Herpesvirus Symposium, Riems, Germany, 22-24 April 2009 Rapports annuels des Laboratoires de référence et des Centres collaborateurs de l’OIE, 2009 3 Maladie d’Aujeszky Publications scientifiques D. Dory, M. Rémond, V. Béven, R. Cariolet, M. Backovic, S. Zientara and A. Jestin. Pseudorabies virus glycoprotein B can be used to carry Foot and Mouth Disease antigens in DNA vaccination of pigs. Antiviral Research 2009, 81, 217-25 13. Inscription de kits de diagnostics au registre de l’OIE i) Avez-vous participé à des panels d’experts visant à valider des kits de diagnostic candidats au registre de l’OIE ? Si oui, lesquels ? non ii) Avez-vous soumis à l’OIE la candidature de kits pour leur inscription au registre de l’OIE ? Si oui, lesquels ? non _______________ 4 Rapports annuels des Laboratoires de référence et des Centres collaborateurs de l’OIE, 2009